曾秀引, 周冬梅, 徐 軍, 楊 彬
(廣東東陽光藥業(yè)有限公司, 東莞 523867)
BLI技術(shù)高通量測定抗體濃度的方法學建立
曾秀引, 周冬梅, 徐 軍, 楊 彬
(廣東東陽光藥業(yè)有限公司, 東莞 523867)
驗證了一種采用生物膜干涉技術(shù)(Bio-layer interferometry, BLI)快速高效高通量檢測抗體濃度的分析方法。主要采用Protein A生物傳感器,在溫度為30 ℃、樣品盤震搖速度為400 r/min、結(jié)合時間為2 min的條件下檢測,可以達到最佳的測定效果,并對專屬性、重復性、線性、準確度進行了驗證。結(jié)果表明:抗體濃度在0.781~400 μg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,精密度(包括分析重復性、中間精密度和日間精密度)相對偏差均小于2.5%,準確度范圍在94.46%~114.00%之間,檢測限為0.781 μg/mL,定量限為1 μg/mL,檢測結(jié)果表明該方法可靠。此方法檢測速度快、通量高,特別適合用于單克隆抗體細胞株篩選階段大批量樣品的檢測與評估。
生物膜干涉技術(shù);單克隆抗體; 高通量篩選
AbstractThis research focused on the high throughout method for developing of antibody concentration detection based on the Bio-layer interferometry (BLI). The method gained the optimum efficiency with a 2 minutes binding on protein A sensor at a temperature of 30℃ and a shake speed of 400 r/min. The validation includes specificity, repeatability, accuracy and durability. The results showed that it fit a good linear relationship within an antibody concentration range of 0.781-400 μg/mL; relative deviations of repeatability including precision, intermediate precision and inter-day precision were below 2.5%. The accuracy ranged from 94.46% to 114.00%, the detection limit was 0.781 μg/mL and the limit of quantification was 1 μg/mL. The results certified the reliability of the method. The method can be used for detection of samples with a large scale benefitt from its high speed and throughout.
Keywordsbio-film interferometry(BLI); monoclonal antibody; high throughput
單克隆抗體藥物因具有生物靶向性、給藥周期長、頻率低、毒副作用相對低等特點,成了理想的治療藥物[1]。單抗藥物在疾病治療上具有廣闊的應(yīng)用前景,成功用于治療腫瘤、自身免疫性疾病、感染性疾病和移植排斥反應(yīng)等多種疾病[2],近年來成為各大制藥公司的研究熱點。單抗藥物進行質(zhì)量控制是研發(fā)和生產(chǎn)環(huán)節(jié)不可忽視的部分,單抗的質(zhì)量控制項目主要包括一般項目、理化項目、含量、鑒別、純度、活性和安全性等幾個方面[3-4]。
藥物含量測定,是質(zhì)量控制中的一個重要環(huán)節(jié)。對于單克隆抗體藥物而言,含量的測定方法主要有幾種:紫外吸收法、ELISA法、protein A-HPLC法等。其中,紫外吸收法檢測快速、靈敏,但需要蛋白純度較高,線性范圍窄,雜蛋白和核酸會干擾檢測結(jié)果[5]。目前,蛋白A親和色譜法是常用的方法,該方法是通過Protein A結(jié)合抗體Fc端,在低pH值或者高pH值條件下洗脫,從而獲得抗體濃度[6-7]。此方法可特異性檢測抗體含量,結(jié)果準確,線性范圍寬,認知度高,但檢測用時長,對樣品基質(zhì)要求較高,較適合用于抗體純化樣品和制劑樣品的含量檢測。ELISA法定量檢測抗體時,靈敏度高,對儀器要求低,但其實驗用時較長,操作復雜,方法誤差大,線性范圍窄,適合用于微量抗體樣品檢測[1]。
生物膜干涉技術(shù)(Bio-layer interaction, BLI)是近年來出現(xiàn)的一種分子相互作用技術(shù)。原理是通過在光纖制成的生物傳感器底端覆蓋生物分子相容層,固定相互作用分子中的一種,形成新的具有反應(yīng)特異性的生物膜層。當與另一種分子接觸時,生物層厚度增加,反射光干涉光譜曲線產(chǎn)生可測量的漂移[8]。通過檢測這種位移變化來反映蛋白分子的濃度。該技術(shù)通量高、操作簡便、檢測快速、靈敏度高、結(jié)果準確[1,7]。該技術(shù)除廣泛應(yīng)用于抗體蛋白定量[1]、蛋白與蛋白[9]、蛋白與核酸[10]等間的相互作用,還應(yīng)用于多肽[11]、脂質(zhì)體[12]、病毒[13-14]和小分子[15]等方面的檢測。
抗PD-1單克隆抗體標準品和供試品(廣東東陽藥業(yè)有限公司);鹽酸、氫氧化鈉(成都科龍試劑有限公司,分析純)、甘氨酸(AMRESCO,分析純);超純水由Millipore超純水儀制備。
Octet Qke生物分子相互作用儀、分析軟件及Protein A生物傳感器購自PALL公司;sevenMultiS40 pH計購自梅特勒托利多公司;單通道移液器購自Eppendorf公司;萬分之一分析天平購自梅特勒托利多公司;離心機購自SIGMA公司;96孔黑板購自NUNC公司。
BLI方法條件:儀器溫度設(shè)為30 ℃,震搖速度設(shè)為400 r/min,結(jié)合時間為120 s。實驗前將傳感器置于10 mmol/L甘氨酸溶液中浸泡5 s,基質(zhì)溶液中浸泡5 s,重復3次,用于再生和平衡傳感器。在此基礎(chǔ)上對方法進行優(yōu)化,包括甘氨酸pH值、儀器溫度(30±2)℃、搖速(400±40)r/min和結(jié)合時間(2±1)min等方面。
1.3.1 專屬性考察
抗PD-1抗體稀釋至20 μg/mL,將抗體溶液和基質(zhì)溶液分別加入96孔黑板中,按照建立的方法進行檢測分析。考察生物傳感器對于基質(zhì)溶液是否存在非特異性吸附,是否對抗體含量檢測產(chǎn)生干擾。
1.3.2 線性范圍
取抗PD-1抗體稀釋至400 μg/mL,依次倍比稀釋至0.781 μg/mL,加入96孔黑板中,每個濃度設(shè)定復孔,按照建立的方法進行檢測分析。以抗PD-1抗體濃度(μg/mL)為橫坐標,結(jié)合率(Binding Rate)為縱坐標,繪制標準曲線,確定線性范圍和最低檢測限。
1.3.3 精密度
1)分析重復性
取抗PD-1單抗稀釋至20 μg/mL,平行配制8份,加入96孔黑板中,設(shè)定復孔,按照建立的方法進行檢測分析。根據(jù)1.3.2項下所得標準曲線,計算樣品平均濃度,計算8份重復性樣品平均濃度RSD值。
2)日間精密度
同一實驗人員在不同時間按上述1)項下平行配制8份精密度溶液,加入96孔黑板中,設(shè)定復孔,按照建立的方法進行檢測分析。根據(jù)1.3.2項下所得標準曲線,計算樣品平均濃度,計算8份重復性樣品平均濃度RSD值。
3)中間精密度
由另一實驗人員操作, 按上述1)項下平行配制8份精密度溶液,加入96孔黑板中,設(shè)定復孔,按照建立的方法進行檢測分析。根據(jù)標準曲線,計算樣品平均濃度,計算8份精密度樣品平均濃度RSD值。
1.3.4 準確度
分別取抗PD-1單抗標準品溶液和供試品溶液,分別稀釋成低(1 μg/mL)、中(20 μg/mL)、高(400 μg/mL)3個濃度,并取對應(yīng)濃度按1∶1的體積比進行混勻配制成準確度溶液,每個濃度平行配制3份,按照建立的方法進行檢測分析。根據(jù)1.3.2項下所得標準曲線,計算每個準確度溶液濃度和回收率。
甘氨酸的pH 1.70時,無法完全洗脫高濃度(200 μg/mL以上)抗體,導致檢測復孔中同一濃度抗體時結(jié)合率降低,見圖1。當將甘氨酸pH值調(diào)節(jié)降低至1.20時,其對傳感器的洗脫能力明顯提高,檢測復孔同一濃度抗體的結(jié)合率高度一致,見圖2。因此實驗選用pH 1.20的甘氨酸對傳感器進行再生洗脫。
圖1 甘氨酸溶液pH 1.70時對傳感器的洗脫效果
圖2 甘氨酸溶液pH 1.20時對傳感器的洗脫效果
表1結(jié)果顯示,通過改變結(jié)合時間(2±1)min,所得3份平均濃度RSD為1.94%,結(jié)合時間對檢測無干擾,但為了保證不同濃度抗體與傳感器充分結(jié)合,實驗選擇2 min為宜。通過改變儀器檢測溫度(30±2)℃,所得3份平均濃度RSD為17.57%,儀器溫度小于30℃時,樣品與傳感器生物膜層protein A結(jié)合率降低,所得濃度偏低,為了保持樣品的活性,實驗選擇30℃作為檢測溫度;通過考察樣品盤震搖速度:(400±40)r/min,所得3份平均濃度RSD為9.18%,儀器搖速設(shè)置低于400 r/min時,樣品與傳感器無法充分接觸,使得檢測結(jié)果偏低,但為避免搖速過高會使孔中樣品外溢,因此實驗選擇震搖速度為400 r/min。
表1其他條件優(yōu)化結(jié)果
單抗溶液產(chǎn)生結(jié)合信號,基質(zhì)溶液無結(jié)合信號,見圖3所示。表明基質(zhì)溶液與生物傳感器不存在非特異性吸附,因此對樣品檢測無干擾。
圖3 專屬性測定結(jié)果
實驗結(jié)果表明,抗體濃度在0.781~400 μg/mL范圍內(nèi)其結(jié)合信號與濃度(concentration,μg/mL)顯示出良好的線性擬合,擬合R2大于0.99,見圖4,檢測限為0.781 μg/mL。
圖4 Protein A傳感器與抗體結(jié)合的線性范圍
如表2所示,樣品分析重復性考察所得RSD為2.12%,中間精密度RSD為2.01%,日間精密度RSD為1.89%,表明此方法重復效果好。
表2 重復性檢測結(jié)果
如表3所示,3個濃度點的平均回收率分別為114.00%、98.51%和94.46%,9份回收率RSD為8.90%,該方法加標回收率好,準確度較高,定量限為1 μg/mL。
表3 準確度測定結(jié)果
運用此法檢測單克隆抗體濃度,結(jié)果可靠,重復效果好(CV<2.5%),準確度高。在實驗條件優(yōu)化考察時發(fā)現(xiàn),結(jié)合時間和pH值的微小改變不影響檢測結(jié)果;而儀器溫度和樣品盤震蕩速度的微小改變可能影響抗體活性及抗體蛋白分子與傳感器的充分接觸。因此利用此技術(shù)時應(yīng)根據(jù)實際條件選擇實驗參數(shù),以保護抗體活性,保證樣品與傳感器充分結(jié)合,提高檢測的準確度。
本實驗利用生物膜干涉技術(shù),對抗體濃度進行快速準確定量。儀器一次性可檢測8個樣品,用時僅3 min,檢測1000個樣品僅需7~8 h,檢測效率高,結(jié)果可靠,特別適用于樣品高通量篩選。從樣品處理方式對比,BLI技術(shù)對樣品基質(zhì)要求極低,相較于HPLC法和ELISA法更加簡便,無干擾[1]。另外,protein A傳感器經(jīng)適當?shù)脑偕捅4妫梢远啻沃貜褪褂?,實驗考察發(fā)現(xiàn)可至少重復使用120次,平均計算檢測一個樣品所需成本低于0.5元,從源頭上大大降低了實驗成本??傮w比較,該方法給抗體藥物的研發(fā)和生產(chǎn)帶來了更多的選擇和便利。
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曾秀引,研究方向為生物制藥,E-mail: zengxiuyin@hecpharm.com
楊 彬,碩士,研究方向為生物制藥,E-mail: YangBin@hecpharm.com
doi∶10.3969/j.issn.2095-1736.2017.05.105