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    IL-2聯(lián)合肝細胞生長因子體外誘導(dǎo)大鼠骨髓間充質(zhì)干細胞向肝細胞分化的效果觀察

    2017-10-10 03:14:12潘麗娟蔣玉鳳李強
    山東醫(yī)藥 2017年34期
    關(guān)鍵詞:甲胎蛋白充質(zhì)生長因子

    潘麗娟,蔣玉鳳,李強

    (西南醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院,四川瀘州646000)

    IL-2聯(lián)合肝細胞生長因子體外誘導(dǎo)大鼠骨髓間充質(zhì)干細胞向肝細胞分化的效果觀察

    潘麗娟,蔣玉鳳,李強

    (西南醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院,四川瀘州646000)

    目的觀察白細胞介素2(IL-2)聯(lián)合肝細胞生長因子(HGF)體外誘導(dǎo)大鼠骨髓間充質(zhì)干細胞(BMSCs)分化為肝細胞的效果。方法將大鼠P3代BMSCs隨機分為5組,M0組不處理,M1組加20 μg/L HGF,M2、M3、M4組分別加5、10、20 μg/L IL-2和20 μg/L HGF。于第7、14、21天倒置相差顯微鏡下觀察各組細胞形態(tài)變化,用免疫細胞化學(xué)方法檢測細胞中的白蛋白及甲胎蛋白。結(jié)果M0組細胞呈長梭形,在誘導(dǎo)過程中細胞形態(tài)沒有發(fā)生改變;而M1~M4組由長梭形細胞逐漸向三角形、類圓形轉(zhuǎn)化,隨著時間延長逐漸增多,類似肝細胞。M0組細胞各時點均未檢測到甲胎蛋白和白蛋白;M1~M4組隨誘導(dǎo)時間延長甲胎蛋白表達逐漸減少(P均<0.05)而白蛋白表達逐漸增加(P均<0.05),且同一時間點甲胎蛋白、白蛋白表達 M1~M4組逐漸增加 (P均<0.05)。結(jié)論IL-2聯(lián)合HGF可體外誘導(dǎo)大鼠BMSCs分化為肝細胞,IL-2濃度越高誘導(dǎo)生成的肝細胞越多。

    骨髓間充質(zhì)干細胞;白細胞介素2;肝細胞生長因子;肝細胞;甲胎蛋白;白蛋白

    肝臟是人體重要的合成及代謝器官,一旦發(fā)生病變將嚴(yán)重影響人們的生活。肝移植是治療終末期肝衰竭最有效的療法,但存在肝源難求、花費高昂、免疫排斥反應(yīng)及終身服藥等缺點;然而,成熟的肝細胞移植后活性低,不能再生,存活時間短。因此,干細胞移植由此產(chǎn)生。骨髓間充質(zhì)干細胞(BMSCs)屬于多能干細胞,具有自我復(fù)制、多向分化潛能,沒有免疫排斥和倫理沖突,且研究證實體內(nèi)外能夠被誘導(dǎo)分化為肝細胞,故被認為是細胞移植最有前途的干細胞[1]。但是,BMSCs向肝細胞分化的最佳誘導(dǎo)試劑及誘導(dǎo)條件目前尚不清楚。大量研究證明,肝細胞生長因子(HGF)能夠誘導(dǎo)BMSCs分化為肝細胞[2]。李偉等[3]實驗研究證明,瘀膽血清中含有的白細胞介素2(IL-2)能在肝細胞受到嚴(yán)重損傷時代償性產(chǎn)生,其能促進肝細胞再生以及肝干細胞分化。目前,尚無將IL-2用于誘導(dǎo)BMSCs向肝細胞分化的研究。2015年3~12月,我們采用不同濃度IL-2和HGF聯(lián)合誘導(dǎo)BMSCs分化為肝細胞,為干細胞移植進一步尋找適宜的誘導(dǎo)方案。

    1 材料與方法

    1.1 材料 健康清潔級SD大鼠6只,雄性,4周齡,體質(zhì)量80~100 g,西南醫(yī)科大學(xué)動物實驗中心提供。DMEM低糖培養(yǎng)基(美國Hyclone公司),胎牛血清(杭州四季青公司),重組鼠HGF(美國R&D公司),BMSCs鑒定表型兔抗大鼠CD45、CD90、CD29抗體 (武漢博士德公司),IL-2(Peprotech公司),小鼠抗大鼠白蛋白(成熟肝細胞表面標(biāo)志蛋白)及甲胎蛋白(不成熟肝細胞表面標(biāo)志蛋白)單克隆抗體(武漢博士德公司)

    1.2 方法

    1.2.1 BMSCs分離培養(yǎng)及傳代 脫頸處死大鼠,無菌條件下獲得股骨和脛骨,然后反復(fù)沖洗骨髓腔,收集細胞懸液。接種細胞懸液于含有10%胎牛血清的DMEM低糖培養(yǎng)基的培養(yǎng)瓶,72 h后首次換液,第10~14 天細胞融合80%~90%時按1∶3傳代。

    1.2.2 BMSCs的鑒定 將P3代的BMSCs用0.25%的胰蛋白酶和0.02% EDTA按1∶1混合消化,用PBS洗滌后制成1.5×106/mL單細胞懸液;分為4組試管,每管20 μL,其中3組為實驗組,另一組為對照組;試驗組中依次加入一抗抗體CD29、CD45、CD90,對照組中加入PBS,同時設(shè)立陰性對照;室溫下避光孵育30 min,PBS洗滌3次;各組試管中分別加入PE標(biāo)記二抗IgG(1∶40)混勻;4 ℃下避光孵育30 min;PBS洗滌2次,調(diào)整細胞濃度為1.5×106/mL;上采用流式細胞儀計數(shù)細胞。結(jié)果實驗組CD29、CD45、CD90陽性細胞比例分別為95.25%、1.95%、96.21%,符合BMSCs表型。

    1.2.3 BMSCs的誘導(dǎo)分化及形態(tài)觀察 取P3代BMSCs,以1×105/孔接種于6孔板 (孔中預(yù)先放置細胞爬片),加入含10%胎牛血清低糖培養(yǎng)基,24 h后隨機分為5組。M0組不處理,M1組加20 μg/L HGF,M2、M3、M4組分別加5、10、20 μg/L IL-2和20 μg/L HGF。每組設(shè)5個復(fù)孔,每3天換液1次,于第7、14、21天在倒置相差顯微鏡下觀察細胞形態(tài)變化。

    1.2.4 細胞中甲胎蛋白及白蛋白檢測 采用免疫細胞化學(xué)SP法。于誘導(dǎo)培養(yǎng)第7、14、21 天取出細胞爬片,10%中性甲醛固定15 min,PBS液沖洗3次。3% H2O2溶液滅活內(nèi)源性過氧化物酶后PBS沖洗。然后用0.25% Triton X-100處理10 min后再次用PBS液沖洗。非免疫動物血清室溫下封閉30 min,然后加入甲胎蛋白、白蛋白一抗(甲胎蛋白1∶200稀釋;白蛋白1∶200稀釋);37 ℃孵育1 h,PBS沖洗3次,滴加辣根過氧化物酶標(biāo)記二抗,37 ℃孵育30 min,PBS液沖洗3次。DAB顯色,3~10 min后用自來水沖洗,蘇木素復(fù)染5~10 min。充分水洗3 min后用鹽酸乙醇分化,自來水沖洗至細胞核變藍。用不同梯度乙醇脫水后封片。鏡下計數(shù)陽性細胞所占比例。胞質(zhì)含有棕黃色(甲胎蛋白)、黃色(白蛋白)顆粒為陽性細胞,隨機選取5個非重復(fù)視野計算陽性細胞所占百分比。

    2 結(jié)果

    2.1 各組細胞形態(tài)學(xué)變化 M0組細胞呈長梭形,在誘導(dǎo)過程中細胞形態(tài)沒有發(fā)生改變。而M1~M4組加入各種誘導(dǎo)因子后,長梭形細胞逐漸向三角形、類圓形轉(zhuǎn)化;隨著時間延長,類圓形或三角形細胞逐漸增多,類似肝細胞。

    2.2 各組細胞甲胎蛋白和白蛋白表達比較 M0組細胞各時點均未檢測到甲胎蛋白和白蛋白。M1~M4組隨誘導(dǎo)時間的延長甲胎蛋白表達逐漸降低(P均<0.05)而白蛋白表達逐漸增高 (P均<0.05),且同一時間點甲胎蛋白、白蛋白表達 M1~M4組逐漸增加 (P均<0.05)。見表1。

    表1 各組細胞中甲胎蛋白、白蛋白表達比較

    注:與 M0組比較,AP<0.05;與 M1組比較,BP<0.05;與 M2組比較,CP<0.05;與 M3組比較,DP<0.05;與同組第7天比較,aP<0.05;與同組第14天比較,bP<0.05。

    3 討論

    自從Friedenstein等[4]首次成功地分離、培養(yǎng)出BMSCs并證實在一定條件下具有多向分化能力后,BMSCs的研究備受關(guān)注。BMSCs在骨髓中含量很少,因此如何分離培養(yǎng)純化BMSCs是主要問題。目前,獲得BMSCs的方法有貼壁培養(yǎng)法、免疫磁珠法、密度梯度離心法及流式細胞儀分離法,后3種分離法對BMSCs的活性都有一定影響。因此,我們采取全骨髓貼壁法獲得純化的BMSCs,流式細胞結(jié)果顯示BMSCs高表達CD29、CD90,不表達或低表達CD45,表型標(biāo)志符合BMSCs特點。Erices等[5]研究報道,BMSCs表面有堿性成纖維細胞生長因子、IL-2、IL-3、IL-6等多種細胞因子受體。BMSCs誘導(dǎo)分化為肝細胞機制復(fù)雜且不明確,但是通過加用影響肝臟生長的細胞因子例如HGF、表皮生長因子、IL-6、制瘤素M等,可顯著誘導(dǎo)BMSCs向肝細胞分化[6,7]。

    白蛋白和甲胎蛋白均為肝細胞較特異的標(biāo)志蛋白。本實驗研究中,BMSCs經(jīng)誘導(dǎo)后生成的細胞表達白蛋白及甲胎蛋白,證明誘導(dǎo)生成的細胞為肝細胞。其中,白蛋白是成熟肝細胞分泌的,隨著肝細胞的成熟分泌逐漸增加,是肝細胞合成、分泌最多的蛋白質(zhì)類型;其他細胞很少分泌白蛋白,用免疫細胞化學(xué)的方法基本測不到[8]。甲胎蛋白為胚胎時期分泌的一種特殊的糖蛋白,在肝細胞成熟的時候少量合成,屬于不成熟肝細胞表面標(biāo)志蛋白。本研究第7天時處于胚肝時期,甲胎蛋白分泌較多;其后隨著肝細胞不斷成熟,甲胎蛋白表達逐漸減少,而白蛋白表達逐漸增加。

    HGF是正常肝細胞最強的促有絲分裂劑,它在BMSCs分化為肝細胞所起的作用是研究的熱點和難點。參考陳鵬飛等[9]的實驗,5~100 μg/L的HGF有促進肝細胞增殖的作用,在低至1 μg/L時HGF仍存在促進細胞有絲分裂的能力。因此,本實驗選用20 ng/mL的HGF作為干預(yù)基礎(chǔ)[10]。1976年,Morgant等首先在人脾淋巴細胞培養(yǎng)上清中發(fā)現(xiàn)IL-2。范寶晶[11]研究發(fā)現(xiàn),肝硬化患者血清中與肝臟發(fā)育和再生密切相關(guān)的因子如HGF、TNF、IL-2及NO等均高于正常值。Wang等[12]將HGF用于大鼠BMSCs的誘導(dǎo)分化,成功分化為肝細胞。Ishikawa等[13]證明,成纖維生長因子2能促進小鼠BMSCs成功向肝細胞分化并促進白蛋白的分泌。目前,尚未有實驗將IL-2用于BMSCs誘導(dǎo)分化為肝細胞的研究,因此本實驗選用不同濃度IL-2聯(lián)合HGF誘導(dǎo)分化。結(jié)果發(fā)現(xiàn),IL-2能夠加強HGF的誘導(dǎo)效果,并且隨著濃度的增加誘導(dǎo)效果加強。然而,兩者聯(lián)合的誘導(dǎo)作用究竟是相加作用還是協(xié)同作用,需要我們下一步進行深入研究。

    目前,BMSCs分化的肝細胞已經(jīng)移植入動物體內(nèi),取得良好的療效。但是,移植入人體內(nèi)還需要大量實驗證明,還有很多問題需要解決。首先,BMSCs缺乏特異監(jiān)測標(biāo)志,如何獲得活性度好的BMSCs;其次,目前對于BMSCs誘導(dǎo)分化為肝細胞具體機制仍不明確,需要進一步研究;最后,BMSCs分化的肝細胞移植入人體內(nèi)是否會癌變尚不清楚[14,15]。上述問題需要進一步的研究解決,以為今后肝衰竭的治療提供新的方法。

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    [3] 李偉,汪林,曾杰,等.瘀膽血清誘導(dǎo)骨髓間充質(zhì)干細胞向肝細胞的分化[J].中國組織工程研究,2016,20(6):771-776.

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    10.3969/j.issn.1002-266X.2017.34.009

    R575

    A

    1002-266X(2017)34-0030-03

    2017-03-12)

    四川省衛(wèi)生廳科研項目(110358)。

    蔣玉鳳(E-mail: jyf872@126.com); 李強(E-mail: 1583269597@qq.com)

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