楊慧慧 張衡 蘇虹
CD4+CD25+FOXP3+調(diào)節(jié)性 T 細(xì)胞在哮喘小鼠發(fā)病中的作用*
楊慧慧 張衡 蘇虹
目的 探討CD4+CD25+FOXP3+調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(CD4+CD25+FOXP3+Treg)百分比的改變在哮喘小鼠發(fā)病中的作用。方法 將雌性SPF級Balb/c 小鼠20只隨機分為哮喘模型組、正常對照組,哮喘模型組以雞卵白蛋白(OVA)致敏,建立模型;正常對照組以生理鹽水代替OVA。分別檢測小鼠外周血(PB)與肺泡灌洗液(BALF)中嗜酸性粒細(xì)胞的數(shù)量及脾臟中CD4+CD25+FOXP3+Treg的比例。結(jié)果 哮喘組與對照組小鼠脾臟中CD4+CD25+/CD4+(%)、CD4+FOXP3+/ CD4+(%)、CD4+CD25+FOXP3+/CD4+(%)分別為2.50±0.12與16.64±2.11、3.92±1.23與27.72±0.15、1.34±0.25與15.60±0.62,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。哮喘小鼠脾臟CD4+CD25+FOXP3+Treg占比較正常對照組明顯減少。結(jié)論研究提示CD4+CD25+FOXP3+Treg參與哮喘發(fā)病。
哮喘 調(diào)節(jié)性T細(xì)胞 FOXP3
1 材料 雞卵白蛋白(OVA,GradeV,Sigma),氫氧化鋁干粉(北京化工廠),0.9%生理鹽水(南通凱恒生物科技發(fā)展有限公司),小鼠CD4+CD25+Treg 細(xì)胞分選試劑盒、CD4–APC、CD25–PE、 FOXP3–FITC 單克隆抗體及同型對照、破膜劑、固定劑購自BioLegend 公司、RPMI1640培養(yǎng)液(北京達(dá)科為生物技術(shù)有限公司),超聲波霧化器 WH 2000型(廣東粵華醫(yī)療器械有限公司),流式細(xì)胞儀(森西科技有限公司)。
2 方法
2.1 動物分組與模型制備
2.1.1 動物分組:20只SPF 級雌性 Balb/ c小鼠6~8 周,平均體重20 g,由安徽醫(yī)科大學(xué)實驗動物中心提供,在SPF級實驗室(安徽省立醫(yī)院動物實驗中心)普通飼料喂養(yǎng)。將20只小鼠隨機分為2組,每組各10只。
2.1.2 配制OVA混懸液和霧化液:稱取500 μg OVA 和0.5 g Al(OH)3粉末,溶于5 ml生理鹽水,配制OVA 混懸液 (pH :7.4);另稱取0.8 g OVA 粉末,溶于40 ml生理鹽水,配成 2% OVA生理鹽水溶液。
2.1.3 建模過程
2.1.3.1 Balb/c 小鼠哮喘組:參照文獻[10,11],將Balb/c鼠在第 0(實驗開始當(dāng)天)、7、14天分別進行腹腔內(nèi)注射OVA混懸液 0.2 ml,此為抗原致敏階段;在第15~20天,將小鼠放入霧化吸入箱,通過超聲波霧化器霧化吸入 2% OVA生理鹽水溶液(1次/d,每次20 min,共 6 d),此為霧化激發(fā)階段(霧化動力為 5 L/min 的壓縮空氣)。
2.1.3.2 Balb/c小鼠對照組:在相應(yīng)的時間,以生理鹽水代替OVA混懸液及2%OVA生理鹽水溶液,按照同樣方法分別進行腹腔注射及霧化吸入。
2.2 外周血(PB)、支氣管肺泡灌洗液(BALF)中嗜酸性粒細(xì)胞(EOS)計數(shù)
2.2.1 Balb/c鼠眼球放血1 ml,取20 μl抗凝血加入l ml白細(xì)胞計數(shù)液混勻,顯微鏡下計數(shù)白細(xì)胞;余下的以4℃、2 000 r/min,離心10 min,沉淀
物涂片備瑞氏-吉姆薩染色行嗜酸細(xì)胞(EOS)計數(shù),所有細(xì)胞計數(shù)均由一名研究者完成,采用單盲法。
2.2.2 于主支氣管下段約1 cm進行右肺肺泡灌洗后收集液體,4℃、1 500 r/min 離心10 min。將重懸液于血細(xì)胞計數(shù)板,計算細(xì)胞總數(shù);取余下重懸液直接涂片,瑞氏-吉姆薩染色行EOS計數(shù)。
2.3 肺組織病理切片:采集肺組織標(biāo)本用10%甲醛固定、切片、HE染色,顯微鏡下觀察組織病理變化。
2.4 小鼠脾臟中Treg細(xì)胞百分比的檢測
2.4.1 采用頸椎脫臼法處死小鼠,無菌條件下取出脾臟,用 200 目篩網(wǎng)研磨,用RPMI1640培養(yǎng)液過濾收集細(xì)胞懸液。取1 ml細(xì)胞懸液,加于2 ml淋巴細(xì)胞分離液,離心。收集第二層細(xì)胞,即環(huán)狀乳白色層,以PBS 洗滌2次,每次均以1 600 r/ min,離心10 min,取沉淀物進行細(xì)胞計數(shù)。
2.4.2 取1.0×106個/ml分離的小鼠脾臟淋巴細(xì)胞置于試管中;每管加入20 μl CD4 APC/CD25 PE混合液,震蕩混勻,室溫避光孵育20 min;加入細(xì)胞染色液1 ml,250 g、5 min離心,棄上清;在染色前準(zhǔn)備好濃度為(1×)的FOXP3 Fix/Perm buffer和 FOXP3 Perm buffer工作液;每個試管中加入1 ml(1×)FOXP3 Fix/Perm,震蕩混勻,室溫下避光孵育20 min,靜置,棄上清液;加入細(xì)胞染色緩沖液1 ml,250 g、5 min離心,棄上清液;加入1 ml FOXP3 Perm buffer洗滌細(xì)胞;在殘余液體中重懸細(xì)胞,加入1 ml FOXP3 Perm buffer,室溫避光孵育15 min,靜置,棄上清;加入100 μl 1×FOXP3 Perm buffer,加入5 μl Alexa Fluor ?488 anti-mouse FOXP3 抗體或5 μl Alexa Fluor ?488 anti-mouse IgG1,K同型對照置試管中,室溫避光孵育30 min;用細(xì)胞染色液洗滌2次,并將細(xì)胞重懸置0.5 ml細(xì)胞染色緩沖液中,置 FACS 檢測管,上機檢測 CD4、CD25和FOXP3的表達(dá)情況。3 統(tǒng)計學(xué)處理 應(yīng)用 SPSS17.0軟件,計量資料以±s表示,兩組間比較采用t檢驗,P<0.05表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。采用Flow-jo 7.6軟件對流式細(xì)胞檢測數(shù)據(jù)進行分析。
1 各組小鼠行為學(xué)改變 哮喘組小鼠出現(xiàn)明顯的煩躁不安,呼吸急促,腹肌抽搐,毛發(fā)豎起,大小便失禁;而生理鹽水對照組小鼠無明顯異常表現(xiàn)。
表1 PB與BALF 中細(xì)胞總數(shù)和分類細(xì)胞的比較
2 PB、BALF中EOS% 哮喘組PB、BALF中細(xì)胞總數(shù)和中性粒細(xì)胞、嗜酸性粒細(xì)胞、淋巴細(xì)胞百分率均高于對照組(見表1)。
3 小鼠肺組織病理改變 與對照組比較,哮喘組肺組織結(jié)構(gòu)遭到破壞,肺泡壁變粗,且可見大量炎性細(xì)胞(中性粒細(xì)胞、嗜酸性粒細(xì)胞和淋巴細(xì)胞)浸潤;對照組肺組織結(jié)構(gòu)完整清晰,周圍無炎性細(xì)胞浸潤,肺泡壁結(jié)構(gòu)完整,無明顯的炎癥改變(見圖1)。
圖1 小鼠肺組織病理學(xué)改變HE染色(400×)
4 小鼠脾臟中Treg細(xì)胞百分比的檢測 哮喘組CD4+CD25+FOXP3+/CD4+為2.49%,對照組CD4+CD25+FOXP3+/CD4+為16.40%,兩組小鼠脾臟中Treg細(xì)胞的百分比檢測結(jié)果見圖2。哮喘模型組小鼠脾臟中CD4+CD25+/CD4+、CD4+FOXP3+/ CD4+、CD4+CD25+FOXP3+/CD4+均較正常對照組減少,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),見表2。
圖2 兩組小鼠脾臟組織Treg細(xì)胞的流式檢測結(jié)果
表2 兩組小鼠脾臟中Treg細(xì)胞的比較
支氣管哮喘是多種細(xì)胞(包括炎性細(xì)胞、呼吸道結(jié)構(gòu)細(xì)胞)和細(xì)胞組參與的、一種以呼吸道高反應(yīng)性和慢性過敏性炎癥為主要特征的變態(tài)反應(yīng)性疾病[1]。本研究發(fā)現(xiàn),哮喘小鼠脾臟中CD4+CD25+、CD4+FOXP3+、CD4+CD25+FOXP3+占C D 4+細(xì)胞比例均明顯下降,表明哮喘小鼠CD4+CD25+FOXP3+Treg 細(xì)胞占比降低在哮喘氣道炎癥的發(fā)生發(fā)展過程中發(fā)揮重要作用。
調(diào)節(jié)性T細(xì)胞最初表達(dá)為CD4+CD25+T細(xì)胞,維持體內(nèi)平衡和自我免疫的耐受性[12]。已有研究發(fā)現(xiàn),CD4+CD25+T細(xì)胞不一定提示免疫抑制作用,敲除小鼠FOXP3基因后的 CD4+CD25+T細(xì)胞并沒有免疫活性,僅是細(xì)胞激活的標(biāo)志[6]。
FOXP3特異性表達(dá)于CD4+CD25+Treg細(xì)胞表面,與人類和鼠科動物的T細(xì)胞群的抑制功能密切相關(guān),反映CD4+CD25+Treg細(xì)胞的水平和功能[13,14]。CD4+CD25+FOXP3+Treg具有的免疫耐受功能,可以通過細(xì)胞間接觸和分泌細(xì)胞因子介導(dǎo)免疫抑制,抑制其他活化T 細(xì)胞對抗原發(fā)生活化增殖反應(yīng),也可以通過接觸抑制和分泌 IL-10、轉(zhuǎn)化生長因子-β (TGF-β) 等抑制性細(xì)胞因子及調(diào)節(jié)樹突狀細(xì)胞 (DC) 功能來維持機體的免疫耐受[15,16],本研究所獲結(jié)果提示CD4+CD25+FOXP3+Treg在哮喘發(fā)病中發(fā)揮關(guān)鍵作用。
1 Kay AB.Allergy and allergic diseases.First of two parts[J].N Engl J Med,2001,344(1):30-37.
2 Dechene L.TH1/TH2 immune response[J].J Allergy Clin Immunol,2002,110(3):539-540.
3 方雪暉,蘇虹.CD4+CD25+調(diào)節(jié)性T細(xì)胞的研究進展[J].臨床輸血與檢驗,2007,9(4):378-381.
4 Durrant DM,Metzger DW.Emerging roles of T helper subsets in the pathogenesis of asthma[J].Immunol Invest,2010,39(4-5):526-549.
5 Borges MC,Narayanan V,Iozzo RV,et al. Deficiency of decorin induces expression of Foxp3 in CD4+CD25+T cells in a murine model of allergic asthma[J].Respirology,2015,20(6):904-911. 6 Kasprow icz DJ,Smallw ood PS,T yznik AJ,et al.Scurfin ( Foxp3) controls T-dependent imm une responses in vivo through regulation of CD+ T cell effector function[J].J Immunol,2003,171(3) :1216 -1223.
7 Lambrecht BN,Hammad H.Asthma:the importance of dysregulated barrier immunity[J].Eur J Immunol,2013,43(12):3125-3137.
8 Lu CH,Wu CJ,Chan CC,et al. DNA Methyl t r a n s f e r a s e i n h i b i t o r p r o m o t e s h u m a n CD4+CD25hFOXP3+ regulatory T lymphocyte induction under suboptimal TCR stimulation[J].Front Immunol,2016,7:488.
9 Pyzik M,Piccirillo CA.TGF-β1 modulates Foxp3 expression and regulatory activity in distinct CD4+T cell subsets[J].J Leukoc Biol,2007,82(2):335-346.
10 Palomares O,Ruckert B,Jartti T,et al.Induction and maintenance of allergen-specific FOXP3? Treg cells in human tonsils as potential first-line organs of oral tolerance[J].J Allergy Clin Immunol,2012,129(2):510-520,520 e1-9.
11 周敏,郭雪君,楊敏.支氣管哮喘 BALB /c小鼠肺組織及肺 T細(xì)胞中 Notch1的表達(dá)[J].上海交通大學(xué)學(xué)報(醫(yī)學(xué)版),2007,27(2):161-164.
12 Yang S,F(xiàn)ujikado N,Kolodin D,et al.Immune tolerance.Regulatory T cells generated early in life play a distinct role in maintaining self-tolerance[J]. Science,2015,348(6234):589-594.
13 Wang LL,Tang HP,Shi GC,et al.CD39/CD73 and the imbalance of Th17 cells and regulatory T cells in allergic asthma[J].Mol Med Rep,2013,8(5):1432-1438.
14 Sakaguchi S,Yamaguchi T,Nomura T,et al.Regulatory T cells and immune tolerance[J]. Cell,2008,133(5):775-787.
15 Provoost S,Maes T,van Durme YM,et al.Decreased FOXP3 protein expression in patients with asthma[J]. Allergy,2009,64(10):1539-1546.
16 Yagi H,Nomura T,Nakamura K,et al.Crucial role of FOXP3 in the development and function of human CD25+CD4+ regulatory T cells[J].Int Immunol,2004,16(11):1643-1656.
(本文編輯:王虹)
CD4+CD25+FOXP3+ Regulatory T cells in Asthmatic Mice
YANG Hui-hui,ZHANG Hen,SU Hong.
Department of Epidemiology and Health Statistics,School of Public Health,Anhui Medical University,Hefei 230032
Objective To observe the change of CD4+CD25+FOXP3+ regulatory T cells (Tregs) in mouse model of asthma.Methods A total of 20 Balb/c female SPF-class mice were randomly divided into normal control group(n=10) and asthma model group (n=10).The asthma model group was sensitized with 2% ovalbumin (OVA) by a combination of intraperitoneal injection to induce asthma.Mice of normal control group received normal salineinstead of OVAin equal volume.The counts of eosinophils in peripheral blood (PB)and bronchoalveolar lavage fluid (BALF)weredetected.The number of Tregs in mouse spleens was analyzed.Results The numbers of CD4+CD25+/CD4+(%),CD4+FOXP3+/CD4+(%),and CD4+CD25+FOXP3+/CD4+(%) in mouse spleens in asthma and normal control groups were 2.50±0.12 vs.16.64±2.11,3.92±1.23 vs.27.72±0.15,and 1.34±0.25 vs.15.60±0.62,respectively,showing significant differences (P<0.05).Conclusion The proportion of CD4+CD25+FOXP3+ cells in asthma mice was decreased compared to controls,suggesting that tregsmay be involved in asthma pathogenesis.
Asthma Regulatory T Cell FOXP3
R562.2+5 R392.11
A
1671-2587(2017)04-0317-04
10.3969/j.issn.1671-2587.2017.04.002
*本課題受安徽省自然科學(xué)基金(No.1408085MH159)資助
230032 合肥,安徽醫(yī)科大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院流行病與衛(wèi)生統(tǒng)計學(xué)系
楊慧慧(1989–),女,安徽淮南人,碩士,主要從事慢性病分子流行病學(xué)研究,(Tel)15256926304(E-mail)yhh20130528@163.cm。
蘇虹,女,教授,(E-mail)suhong5151@sina. com。究應(yīng)用雞卵白蛋白(OVA)誘導(dǎo)建立小鼠哮喘模型的方法,旨在探討CD4+CD25+FOXP3+Treg細(xì)胞在哮喘發(fā)病機制中的作用。
2017-03-19)
支氣管哮喘是由免疫功能紊亂引起的一種慢性疾病,其發(fā)病機制復(fù)雜[1]。先前研究主要認(rèn)為Th2占優(yōu)勢的 Th1/Th2 失衡是哮喘發(fā)病的一個重要機制,并且成為治療和預(yù)防哮喘的關(guān)注熱點[2],但這一理論并不能完全解釋哮喘的發(fā)病。近年來發(fā)現(xiàn)的調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(regulatory T cell,Treg)對哮喘發(fā)病機制進行了完善和補充,其可能通過抑制 Th2 型反應(yīng)及嗜酸粒細(xì)胞增多而發(fā)揮效應(yīng)[3]。Treg作為一類具有負(fù)免疫調(diào)節(jié)作用的T細(xì)胞亞群,細(xì)胞表面標(biāo)志物CD4+CD25+為主要細(xì)胞群[4]。CD4+CD25+T細(xì)胞是一種天然Treg,具有免疫無反應(yīng)性和免疫抑制性。但是,有研究提示CD4+CD25+T并非一定在哮喘鼠中發(fā)揮免疫抑制效應(yīng)[5]。有研究發(fā)現(xiàn),來源于脊椎動物叉狀頭轉(zhuǎn)錄因子家族(forkhead box,F(xiàn)OX)的FOXP3,其缺陷的 Scurfy 小鼠不能產(chǎn)生有功能的Treg細(xì)胞,提示FOXP3是Tregs 發(fā)育所必需的[6]。FOXP3被認(rèn)為是Treg細(xì)胞中最具特異性的表面標(biāo)志分子,對Treg細(xì)胞的分化及功能發(fā)揮起到?jīng)Q定性作用[7-9]。本研