曾凱宏,王 元,鄧 波,余雪梅,宋 怡,周 雪,黃璐嬌
(1.四川省醫(yī)學(xué)科學(xué)院.四川省人民醫(yī)院臨床營養(yǎng)科,四川 成都610072;2.電子科技大學(xué)醫(yī)學(xué)院,四川 成都610054)
白藜蘆醇調(diào)節(jié)微小RNA-29b表達(dá)抑制高糖誘導(dǎo)的大鼠視網(wǎng)膜muller細(xì)胞凋亡
曾凱宏1,2,王 元2,鄧 波1,余雪梅1,宋 怡1,周 雪1,黃璐嬌1
(1.四川省醫(yī)學(xué)科學(xué)院.四川省人民醫(yī)院臨床營養(yǎng)科,四川 成都610072;2.電子科技大學(xué)醫(yī)學(xué)院,四川 成都610054)
目的 研究白藜蘆醇(RSV)防護(hù)糖尿病早期視損傷的分子機(jī)制。方法通過建立視網(wǎng)膜muller細(xì)胞(RMCs)體外高糖模型,采用免疫熒光雙標(biāo)、qRT-PCR、western blot、Annexin V/PI流式細(xì)胞技術(shù)檢測(cè)高糖和RSV對(duì)微小RNA-29b(miR-29b)、特異蛋白1(SP1)表達(dá)及RMCs凋亡的影響。結(jié)果高糖培養(yǎng)后,miR-29b和SP1表達(dá)明顯改變,RMCs凋亡率明顯增加,RSV干預(yù)可明顯抑制高糖誘導(dǎo)的miR-29b和SP1異常表達(dá)和RMCs凋亡;通過預(yù)先在RMCs中轉(zhuǎn)染miR-29b類似物和miR-29b抑制劑研究發(fā)現(xiàn),RSV抑制凋亡作用受明顯影響(P<0.05)。結(jié)論RSV通過調(diào)節(jié)miR-29b表達(dá)發(fā)揮抗糖尿病早期視損傷作用。
白藜蘆醇;微小RNA-29b;特異蛋白1;糖尿病視網(wǎng)膜病變;凋亡,
糖尿病視網(wǎng)膜病變(diabetic retinopathy,DR)是糖尿病最為常見的并發(fā)癥之一,是世界范圍內(nèi)致盲的主要眼病,國內(nèi)外目前尚無有效治療措施[1,2]。大量研究表明,在DR早期視網(wǎng)膜微血管病變之前即可檢測(cè)到視網(wǎng)膜muller細(xì)胞(retinal muller cells,RMCs)凋亡[3~5]。Silva 等[6]研究 DR 早期神經(jīng)細(xì)胞微小RNA(MicroRNA,miRNA)表達(dá)時(shí)發(fā)現(xiàn),miR-29b在DR早期RMCs凋亡中起重要作用。miR-29b通過調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)錄因子特異蛋白1(Specificity protein 1,SP1)表達(dá)參與 DR早期 RMCs凋亡。白藜蘆醇(resveratrol,RSV)是葡萄、花生、決明子和虎杖等天然植物中的一種有效成分,具有廣泛的生物學(xué)和藥理學(xué)作用[7]。近年研究發(fā)現(xiàn),RSV不僅能降低 DR大鼠血糖水平,抑制胰島β細(xì)胞凋亡,還能增加DR大鼠肌細(xì)胞、肝細(xì)胞及脂肪細(xì)胞對(duì)葡萄糖的攝取能力,增加肝細(xì)胞的糖原合成能力等[8,9]。RSV對(duì)DR早期RMCs凋亡有無作用,尚不清楚。
本研究通過建立體外培養(yǎng)的 RMCs高糖模型,觀察高糖和RSV對(duì)miR-29b、SP1表達(dá)和RMCs凋亡的影響。本研究旨在揭示RSV防護(hù)DR早期病變的分子機(jī)制,為指導(dǎo)人們通過膳食途徑防治DR提供科學(xué)依據(jù)。
1.1 材料2013年1月至2015年12月,出生后3~5 d的Sprague Dawley(SD)大鼠10只,由四川省醫(yī)學(xué)科學(xué)院·四川省人民醫(yī)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物研究所提供;白藜蘆醇、各種抗體、熒光定量PCR試劑、Western blot試劑及各種試劑盒購于美國Sigma公司。
1.2 方法
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng) 出生后3~5 d的新生SD大鼠,用750 ml/L酒精浸泡消毒同時(shí)麻醉,無菌條件下取眼球,雙抗PBS漂洗數(shù)遍,小心剝離視網(wǎng)膜,加入5 g/L胰蛋白酶,37℃消化20~30 min,充分吹打,加入含200 ml/L血清的培養(yǎng)基終止消化,不銹鋼網(wǎng)過濾,1000 r/min離心3~5 min,培養(yǎng)基重懸,離心,反復(fù)2次。去上清后加入含200 ml/L血清的培養(yǎng)基制細(xì)胞懸液,調(diào)細(xì)胞密度為3×108個(gè)/L,接種于25cm2培養(yǎng)瓶中。3d換培養(yǎng)基,9 d后,將培養(yǎng)瓶密封,放入恒溫?fù)u床,200 r/min搖24 h進(jìn)行RMCs純化。細(xì)胞形態(tài)一致后,1:2傳代分瓶,第2/3代細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。細(xì)胞傳代后接種于預(yù)置蓋玻片的24孔培養(yǎng)板中,24 h完全伸展后進(jìn)行鑒定。用RMCs標(biāo)志物谷氨酰胺合成酶GS、谷氨酸轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白GLAST和波形蛋白 vimentin聯(lián)合,免疫細(xì)胞熒光雙標(biāo)鑒定RMCs。
1.2.2 細(xì)胞鑒定 細(xì)胞爬片以40 g/L多聚甲醛固定30 min,PBS 漂洗5 min×3次,用含10 g/L BSA、5 ml/L TritonX-100的PBS緩沖液孵育30 min,同前漂洗后,用含50~100 ml/L正常羊血清的PBS緩沖液孵育10 min,加1:2000稀釋的 Anti-GS和Anti-GLAST,4℃過夜(同時(shí)設(shè)PBS替代一抗的空白對(duì)照和正常羊血清替代一抗的替代對(duì)照),PBS漂洗后與羅丹明標(biāo)記的熒光二抗37℃孵育30 min,PBS漂洗后加1 ∶200稀釋的 Anti-vimentin,37℃,2 h,PBS漂洗后與FITC標(biāo)記的熒光二抗37℃孵育30 min,PBS漂洗后加Hoechst于37℃孵育5 min,PBS緩沖液漂洗后,900 ml/L甘油封片,激光共聚焦顯微鏡觀察照相。第3代的RMCs用于試驗(yàn)。
1.2.3 高糖模型建立及實(shí)驗(yàn)分組 高糖模型建立參照我們以往方法[3-5],待細(xì)胞達(dá)80%融合時(shí),棄掉含血清的培養(yǎng)液,換無血清的培養(yǎng)液培養(yǎng)24 h后,再換成含不同濃度葡萄糖的培養(yǎng)液,分別為:5、10、15、20、25、30、35、40 mM,通過 12、24、36、48、72 h 觀察后,確立RMCs高糖模型的最適葡萄糖濃度為25 mM。實(shí)驗(yàn)分10組,分別是:正常對(duì)照組(CON)(普通培養(yǎng)基培養(yǎng)的細(xì)胞,不含葡萄糖和RSV);10、20、30 mM RSV干預(yù)正常對(duì)照組(CON+10 mM RSV,CON+20 mM RSV,CON+30 mM RSV);高糖組(HG)(25 mM葡萄糖的培養(yǎng)基培養(yǎng)的細(xì)胞);10、20、30 mM RSV 干預(yù)高糖組(HG+10 mM RSV,HG+20 mM RSV,HG+30 mM RSV)以及甘露醇高滲對(duì)照組(CON+mannitol,HG+mannitol)。
1.2.4 MiR-29b類似物和miR-29b抑制劑轉(zhuǎn)染細(xì)胞 根據(jù)miR-29b序列合成miR-29b抑制劑和miR-29b類似物,然后轉(zhuǎn)染入細(xì)胞。取對(duì)數(shù)期細(xì)胞,待細(xì)胞融合至80%后進(jìn)行轉(zhuǎn)染,將0.4 μg質(zhì)粒DNA加入50 μl無血清培養(yǎng)基中(動(dòng)作輕柔)。再把2 μl lipofectamine TM 2000 脂質(zhì)體稀釋至 50 μl,室溫放置5 min,二者輕輕混合,室溫放置20 min。吸出培養(yǎng)板中原液,輕柔加入配制好的含質(zhì)粒DNA和脂質(zhì)體復(fù)合物的轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基,總體積500 μl。放置于飽和濕度,37℃,5%CO2孵箱孵育4~6 h,再換新鮮培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h。
1.2.5 QRT-PCR檢測(cè)miR-29b和SP1 mRNA表達(dá)采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR法(qRT-PCR)檢測(cè)微小RNA-29b(miR-29b)和特異蛋白1(SP1)基因表達(dá),分別設(shè)計(jì)微小RNA-29b(miR-29b)和特異蛋白1(SP1)基因引物以及TaqMan熒光探針(由大連寶生物公司合成)。引物序列為:微小RNA-29b(miR-29b):5'-CGTAGCACCATTTGAAATCAGTGTT-3',5'-GTGCAGGGTCCGAGGT-3';特異蛋白 1(SP1):5'-AGG TGC ACC AGC TTC CAG GCC TG-3',5'-CCA GGT CCA TGA AGG CCA AGT TG-3';核糖體蛋白L13 A(RPL13 A):5'-AAGCCTACAAGAAAGTTTGCCTATC-3',5'-TGTTTCCGTAGCCTCATGAGC-3'。 用常規(guī)酚/氯仿法提取大鼠 RMCs的 mRNA,進(jìn)行qPCR 反應(yīng),反應(yīng)體系 25 μl:2×TaqMan University PCR 混合液 12.5 μl,10 μmol/L 正反向引物各 0.5 μl,10 μmol/L TaqMan 探 針 0.3 μl,100 ng/ μl DNA0.2 μl,同時(shí)設(shè)立內(nèi)對(duì)照核糖體蛋白 L13 A(RPL13 A)基因,反應(yīng)在ABI Prism 7000熒光定量PCR儀上進(jìn)行。反應(yīng)條件為:93°C 2 min,93°C 1 min,55°C 1 min,共40個(gè)循環(huán)。采用低循環(huán)數(shù)(Ct)比較法計(jì)算目的基因的相對(duì)拷貝數(shù)與表達(dá)量。
1.2.6 Western blot檢測(cè)特異蛋白1(SP1)蛋白表達(dá) 常規(guī)提取細(xì)胞總蛋白,Lowry法利用核酸蛋白檢測(cè)儀測(cè)定蛋白濃度,各取蛋白樣品30 μg上樣,12%十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠(SDS-PAGE)電泳,轉(zhuǎn)移至PVDF膜,1%BSA的TBST封閉,加相應(yīng)各抗體4℃孵育過夜;加1∶20稀釋SP-9002試劑盒中的二抗及三抗孵育,37℃振搖1 h;DAB避光顯色3~5 min,至理想條帶出現(xiàn),對(duì)PVDF膜掃描存盤。
1.2.7 Annexin V/PI雙標(biāo)記法凋亡檢測(cè)細(xì)胞凋亡以Annexin V/PI凋亡試劑盒檢測(cè)細(xì)胞凋亡,細(xì)胞處理后,用4℃預(yù)冷的 PBS洗細(xì)胞2次,再用250 μl稀釋的binding緩沖液重新懸浮細(xì)胞,并使其濃度為1×106/ml,取 100 μl的細(xì)胞懸液于 5 ml流式管中,加 5 μl Annexin V/FITC 溶液和 10 μl 20 μg/ml的 PI溶液,混勻后于室溫避光放置15 min,在反應(yīng)管中加400 μl PBS,流式細(xì)胞儀上機(jī)檢測(cè)。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法統(tǒng)計(jì)分析采用SPSS 19.0軟件。計(jì)量資料采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,兩組數(shù)據(jù)間的比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),多組數(shù)據(jù)間的比較采用單因素方差分析,相關(guān)性用雙變量分析,計(jì)數(shù)資料采用χ2檢驗(yàn),Logistic回歸分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 SD大鼠RMCs體外原代培養(yǎng)及鑒定取出生3~5天的新生SD大鼠視網(wǎng)膜進(jìn)行原代視網(wǎng)膜細(xì)胞培養(yǎng),培養(yǎng)9天后后,細(xì)胞達(dá)80%以上融合,胞體呈長纖維形,胞漿豐富,胞膜清晰,單核或多核,核呈橢圓形,位于細(xì)胞中央,整個(gè)視野可見典型的神經(jīng)細(xì)胞、RMCs和神經(jīng)節(jié)細(xì)胞,此時(shí)可進(jìn)行RMCs純化培養(yǎng)。純化24 h后,細(xì)胞分布均勻,形態(tài)基本一致,生長情況良好,可見清晰的長梭形RMCs。以RMCs特征性標(biāo)志物GS、Vimentin和GLAST對(duì)細(xì)胞進(jìn)行鑒定,Hoechst 33342復(fù)染核,觀察發(fā)現(xiàn)98%以上的細(xì)胞三種抗體染色呈陽性(圖1)。
圖1 谷氨酰胺合成酶、谷氨酸轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白及波形蛋白聯(lián)合鑒定大鼠視網(wǎng)膜muller細(xì)胞 a:谷氨酰胺合成酶鑒定大鼠視網(wǎng)膜 muller細(xì)胞;b:波形蛋白鑒定大鼠視網(wǎng)膜muller細(xì)胞;c:Hoechst 33342復(fù)染核;d:谷氨酰胺合成酶、波形蛋白及Hoechst 33342聯(lián)合鑒定大鼠視網(wǎng)膜muller細(xì)胞;e:谷氨酸轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白鑒定大鼠視網(wǎng)膜muller細(xì)胞;f:Hoechst 33342復(fù)染核;g:谷氨酸轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白聯(lián)合Hoechst 33342鑒定大鼠視網(wǎng)膜 muller細(xì)胞
2.2 RSV對(duì)高糖培養(yǎng)的大鼠RMCs miR-29b表達(dá)的影響qRT-PCR結(jié)果顯示,與正常對(duì)照組(CON)相比,25 mM高糖培養(yǎng)組(HG)RMCs中miR-29b mRNA表達(dá)量明顯降低(P<0.05),10、20和30 mM RSV(HG+10 mM RSV,HG+20 mM RSV,HG+30 mM RSV)干預(yù)明顯增加高糖組(HG)miR-29b mRNA表達(dá)量,呈劑量依賴關(guān)系,10、20和30 mM RSV(HG+10 mM RSV,HG+20 mM RSV,HG+30 mM RSV)干預(yù)高糖組miR-29b mRNA表達(dá)量分別比未干預(yù)組增加了2.4倍、3.3倍和3.4倍(P<0.05)。10、20和30 mM RSV干預(yù)對(duì)正常組(CON+10 mM RSV,CON+20 mM RSV,CON+30 mM RSV)對(duì)miR-29b mRNA表達(dá)量無明顯影響(P>0.05)。甘露醇高滲對(duì)照對(duì)miR-29b mRNA表達(dá)量無明顯影響(P> 0.05),見圖2。
2.3 RSV對(duì)高糖培養(yǎng)的大鼠RMCs SP1表達(dá)的影響高糖培養(yǎng)RMCs 72小時(shí)后,SP1 mRNA表達(dá)量明顯增加,10、20和30 mM RSV干預(yù)明顯降低高糖組SP1 mRNA表達(dá)量(P<0.05)。同樣,高糖培養(yǎng)組(HG)SP1蛋白表達(dá)量也明顯高于正常對(duì)照組(CON)(P < 0.05)。10、20和 30 mM RSV(HG+10 mM RSV,HG+20 mM RSV,HG+30 mM RSV)干預(yù)明顯降低高糖組(HG)SP1蛋白表達(dá)量(P<0.05)。正常對(duì)照組(CON)SP1 mRNA和蛋白表達(dá)量與10、20和30 mM RSV干預(yù)正常對(duì)照組(CON+10 mM RSV,CON+20 mM RSV,CON+30 mM RSV)無明顯差異(P>0.05)。甘露醇高滲對(duì)照對(duì)SP1 mRNA和蛋白表達(dá)量無明顯影響(P>0.05),見圖3。
圖2 白藜蘆醇對(duì)大鼠視網(wǎng)膜muller細(xì)胞(RMCs)miR-29b mRNA表達(dá)的影響 與CON比較,***P<0.001;與HG比較,##P<0.01,###P <0.001
2.4 RSV經(jīng)調(diào)節(jié)miR-29b表達(dá)抑制高糖誘導(dǎo)的RMCs凋亡通過Annexin V/PI染色流式細(xì)胞分析發(fā)現(xiàn),HG培養(yǎng)后,大鼠視網(wǎng)膜RMCs凋亡率明顯高于正常對(duì)照組(CON),20 mM RSV(HG+20 mMRSV)干預(yù)可明顯降低HG組RMCs凋亡率。為了研究miR-29b在RSV抗凋亡中的作用,我們預(yù)先在細(xì)胞中轉(zhuǎn)染了miR-29b類似物和miR-29b抑制劑,如圖4所示,當(dāng)細(xì)胞中轉(zhuǎn)染了miR-29b抑制劑時(shí),RSV抗高糖誘導(dǎo)的RMCs凋亡作用被逆轉(zhuǎn);當(dāng)細(xì)胞中轉(zhuǎn)染了miR-29b類似物后,RSV抗凋亡作用增加,表明RSV可能通過miR-29b發(fā)揮抗高糖誘導(dǎo)的RMCs凋亡。
圖3 白藜蘆醇對(duì)大鼠視網(wǎng)膜muller細(xì)胞(RMCs)SP1 mRNA和蛋白表達(dá)的影響 a:QRT-PCR檢測(cè)大鼠視網(wǎng)膜 muller細(xì)胞(RMCs)SP1 mRNA表達(dá)量;b:Western blot檢測(cè)大鼠視網(wǎng)膜muller細(xì)胞(RMCs)SP1蛋白表達(dá)量(代表圖像);c:SP1與GAPDH蛋白表達(dá)量相對(duì)密度比值,與CON比較,***P<0.001;與HG比較,##P <0.01,###P <0.001
圖4 白藜蘆醇通過調(diào)節(jié)miR-29b表達(dá)抑制高糖誘導(dǎo)的大鼠視網(wǎng)膜muller細(xì)胞凋亡 a:Annexin V/PI雙標(biāo)流式細(xì)胞技術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡(代表圖像);b:大鼠視網(wǎng)膜 muller細(xì)胞凋亡比率 與CON比較,***P<0.001,###P<0.001&P<0.05,與HG+20mM RSV比較,&&&P<0.001 versus
糖尿病發(fā)展成DR是一個(gè)緩慢的過程,一般需要5~6年的時(shí)間。糖尿病明確診斷、眼底出現(xiàn)改變之前的階段被稱作DR的臨床前期。研究發(fā)現(xiàn),DR的臨床前期是先有視網(wǎng)膜神經(jīng)的損害,然后才是組織學(xué)或是檢眼鏡下可見的血管異常[1,3-5]。我們前期研究也證實(shí),DR早期RMCs結(jié)構(gòu)和功能均發(fā)生異常改變,主要表現(xiàn)為膠質(zhì)反應(yīng)性增生、谷氨酸代謝異常、血管內(nèi)皮細(xì)胞生長因子(VEGF)上調(diào)表達(dá)及RMCs凋亡。通過抑制DR早期RMCs損傷,將能阻止 DR 微血管病變,從而避免致盲[3~5]。
目前,國內(nèi)外關(guān)于DR防護(hù)的研究不勝枚舉,多數(shù)研究證明,高級(jí)糖基化終產(chǎn)物抑制劑、蛋白激酶C抑制劑、腎素-血管緊張素系統(tǒng)抑制劑及一些抗氧化劑等對(duì)DR有防護(hù)效應(yīng),但對(duì)DR早期視損傷防護(hù)效果不明顯[7~9]。我們采用抗氧劑?;撬釋?duì)DR早期RMCs損傷干預(yù)后發(fā)現(xiàn),低濃度的牛磺酸干預(yù)對(duì)RMCs損傷基本沒有防護(hù)效應(yīng),高濃度?;撬岣深A(yù)對(duì)RMCs損傷雖有一定防護(hù)效應(yīng),但?;撬岣深A(yù)后DR早期患者視功能改善情況并不理想[4]??赡艽嬖谝韵聝蓚€(gè)原因:①作用效力不夠;②作用時(shí)間滯后。因而尋找更有效、更早期的抗RMCs損傷的DR早期防治措施十分必要。
本研究我們通過體外建立RMCs高糖模型,通過不同劑量RSV干預(yù)發(fā)現(xiàn),高糖培養(yǎng)后,miR-29b和SP1表達(dá)明顯改變,RMCs凋亡率明顯增加,RSV干預(yù)可明顯抑制高糖誘導(dǎo)的miR-29b和SP1異常表達(dá)和RMCs凋亡。通過預(yù)先在細(xì)胞中轉(zhuǎn)染了miR-29b類似物和miR-29b抑制劑發(fā)現(xiàn),RSV抑制凋亡作用受明顯影響,初步提示RSV通過miR-29b發(fā)揮抗糖尿病早期視損傷作用。
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Resveratrol inhibits the apoptosis of rats retinal muller cells induced by high glucose via regulating miRNA-29b expression
ZENG Kai-hong1,2,WANG Yuan2,DENG Bo1,YU Xue-mei1,SONG Yi1,ZHOU Xue1,HUANG Lu-jiao1(1.Department of Clinical Nutrition,Sichuan Academy of Medical Sciences &Sichuan Provincial People's Hospital,Chengdu 610072,China.2.School of Medicine,Chengdu University of E-lectronic Science and Technology,Chengdu 610054,China)
Objective To investigate the molecular mechanisms of protecting early diabetic retinopathy by resvertrol(RSV).MethodsThe effects of RSV on expressions of miRNA-29b(miR-29b)and specificity protein 1(SP1)as well as apoptosis of retinal muller cells(RMCs)were investigated through development of rat RMCs hyperglucose model in vito,and mothods of immunofluorescence,qRT-PCR,western blot and Annexin V/PI flow-cytometry.ResultsHigh glucose induced down-regulation of miR-29b and upregulation of SP1 and increased the apoptosis of RMCs.The effects could be reversed by RSV in vitro.Moreover,the anti-apoptosis effect of RSV could be reversed by transfection of miR-29b analogues to RMCs and miR-29b inhibitor(P < 0.05).ConclusionResveratrol can inhibit diabetic retinopathy in early stage by regulation of miR-29b expression.
Resveratrol;miRNA-29b;Specificity protein 1;Diabetic retinopathy;Apoptosis
Q5
A
1672-6170(2017)04-0022-05
2017-03-12;
2017-05-31)
國家自然科學(xué)基金項(xiàng)目資助(編號(hào):81202206);四川省衛(wèi)生計(jì)生委項(xiàng)目資助(編號(hào):150216)