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    大方臭豆腐中高產(chǎn)納豆激酶菌株的分離鑒定

    2017-07-31 23:58:10高澤鑫何臘平劉亞兵高冰李翠芹劉涵玉
    中國釀造 2017年7期
    關(guān)鍵詞:高產(chǎn)

    高澤鑫,何臘平,2*,劉亞兵,高冰,李翠芹,劉涵玉

    (1.貴州大學(xué)釀酒與食品工程學(xué)院,貴州貴陽550025;2.貴州省農(nóng)畜產(chǎn)品貯藏與加工重點實驗室,貴州貴陽550025;3.湖北工業(yè)大學(xué)生物工程與食品學(xué)院,湖北武漢430068;4.貴州大學(xué)化學(xué)與化工學(xué)院,貴州貴陽550025)

    大方臭豆腐中高產(chǎn)納豆激酶菌株的分離鑒定

    高澤鑫1,何臘平1,2*,劉亞兵1,高冰3,李翠芹4,劉涵玉1

    (1.貴州大學(xué)釀酒與食品工程學(xué)院,貴州貴陽550025;2.貴州省農(nóng)畜產(chǎn)品貯藏與加工重點實驗室,貴州貴陽550025;3.湖北工業(yè)大學(xué)生物工程與食品學(xué)院,湖北武漢430068;4.貴州大學(xué)化學(xué)與化工學(xué)院,貴州貴陽550025)

    該實驗對從大方臭豆腐中分離純化得到的8株產(chǎn)納豆激酶菌株進(jìn)行了研究,通過纖維蛋白平板法對其產(chǎn)納豆激酶能力的測試,篩選出一株酶活力達(dá)到5 435.39 IU/g的高產(chǎn)納豆激酶菌株GUYR02。對該菌株的菌株形態(tài)、生理生化特征、16S rDNA序列分析以及系統(tǒng)發(fā)育樹分析,鑒定菌株GUYR02為解淀粉芽孢桿菌(Bacillus amyloliquefaciens)。

    大方豆腐;納豆激酶;篩選;鑒定;解淀粉芽孢桿菌

    納豆起源于中國的秦漢時期,是傳統(tǒng)的發(fā)酵食品,唐朝時期傳入日本,食用歷史已有1 000年以上[1]。納豆類似中國的發(fā)酵豆和豆豉,主要經(jīng)枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)發(fā)酵而來,日本將納豆作為調(diào)味品和營養(yǎng)食品,國人把豆豉用鍋蒸后或炒后作為調(diào)味料[2]。日本學(xué)者SUMI H等[3]于1987年首次對納豆及其提取物首次作了系統(tǒng)研究,最初將酶的提取物添加到纖維蛋白平板上,發(fā)現(xiàn)有明顯的溶栓作用,并確定其屬于具有纖溶活性的激酶。

    人類的健康常年受到血栓疾病的威脅,全球每年因患血栓類疾病死亡的人數(shù)多達(dá)1 200萬,其中中國約占總數(shù)的1/5[4],因此溶栓藥物的開發(fā)成為了研究的熱點。由于納豆激酶具有高效溶栓作用,因此受到了廣泛的關(guān)注[5]。納豆激酶的來源有很多,如日本納豆食品[6]、一些海洋生物[7]、韓國醬油[8]、臺灣的土壤[9]、中國的豆豉[10]和亞洲發(fā)酵蝦醬等[11]。據(jù)報道納豆激酶可以降低纖維蛋白原、促進(jìn)催化血纖維蛋白溶酶原轉(zhuǎn)化為血纖維蛋白溶酶、增加體內(nèi)血栓溶解因子的合成的作用[12]。目前,許多研究人員的重點在對高產(chǎn)納豆激酶菌株的分離篩選、納豆激酶的純化和鑒定新發(fā)現(xiàn)的纖溶酶[13-15]。本研究從我國傳統(tǒng)食品臭豆腐中篩選出一株高產(chǎn)納豆激酶菌株,并采用菌株形態(tài)特征、生理生化實驗和16SrDNA測序?qū)赀M(jìn)行鑒定,為納豆激酶的生產(chǎn)奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    1.1.1 實驗材料

    臭豆腐:貴州省大方縣市售;黃豆:市售有機(jī)黃豆(非轉(zhuǎn)基因)。

    1.1.2 試劑

    牛凝血酶、牛纖維蛋白原:沈陽拜英生物技術(shù)有限公司;尿激酶(1 240 IU/瓶):中國藥品生物制品檢定所;溶菌酶:北京索萊寶科技有限公司;細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒:天根生化科技有限公司;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

    1.1.3 培養(yǎng)基

    初篩培養(yǎng)基(酪蛋白平板):5 g/L干酪素,1 g/L葡萄糖,1 g/L酵母膏,1 g/L K2HPO4,0.5 g/L KH2PO4,0.1 g/L MgSO4,20 g/L瓊脂,pH 7.0~7.5,121℃滅菌20 min。

    斜面培養(yǎng)基(LB培養(yǎng)基):10g/L蛋白胨,5g/L酵母提取物,10g/LNaCl,20g/L瓊脂,pH7.0~7.5,121℃滅菌20min。

    液體種子培養(yǎng)基:10 g/L葡萄糖,5 g/L酵母提取物,10 g/L牛肉膏,5 g/L NaCl,pH 7.0~7.5,121℃滅菌20 min。

    固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基:黃豆清洗干凈,加入3倍體積的去離子水浸泡,常溫浸泡14~18 h,121℃滅菌20 min。

    1.2 儀器與設(shè)備

    SW-CJ-10超凈工作臺:蘇州凈化有限公司;LS-B75L立式壓力蒸汽滅菌器:江陰濱江醫(yī)療設(shè)備有限公司;101-1ASB電熱鼓風(fēng)干燥箱:北京科偉永興儀器有限公司;DW-86L286立式超低溫保存箱:青島海爾特種電器有限公司;CX21SF1奧林巴斯生物顯微鏡:上海新苗醫(yī)療器械制造有限公司;pHS-3CpH計:成都世紀(jì)方舟科技有限公司;SPX生化培養(yǎng)箱:上??坪銓崢I(yè)發(fā)展有限公司;HYG-A全溫?fù)u瓶柜:太倉市實驗設(shè)備廠;S1000TM聚合酶鏈反應(yīng)(polymerase chain reaction,PCR)儀:德國Thermal Cycler公司;Gel Doc XR凝膠成像儀:美國Bio-Rad公司;Micro 17R微量高速冷凍離心機(jī):美國Thermo Electron公司。

    1.3 實驗方法

    1.3.1 產(chǎn)納豆激酶菌株的分離與初篩

    將臭豆腐切碎制成樣品懸液用8.5%的生理鹽水10倍梯度稀釋,取10-7、10-8、10-9三個稀釋度涂布于酪蛋白平板上。納豆激酶是一種堿性絲氨酸蛋白酶,可水解酪蛋白平板形成透明圈,根據(jù)這一特性在37℃條件下倒置培養(yǎng)24 h后挑取出8株形態(tài)不同且有明顯透明圈的菌落,在新的酪蛋白平板上進(jìn)行劃線,純化3代后,接種到斜面培養(yǎng)基上于4℃冰箱保存?zhèn)溆?。用接種環(huán)挑選2~3環(huán)斜面培養(yǎng)基上的菌苔接種到液體種子培養(yǎng)基中,于37℃、180r/min的條件下培養(yǎng)24 h。培養(yǎng)完成后于4℃、10 000×g離心10 min,即得粗酶液。用直徑為2 mm的無菌膠頭吸管在酪蛋白培養(yǎng)基上均勻打孔,每平板均勻打3孔,取10μL離心后粗酶液注入平板孔(三孔為一組平行),平板放于37℃恒溫培養(yǎng)18 h,培養(yǎng)結(jié)束后測量平板孔水解透明圈面積(mm2),選取水解透明圈面積最大的3株菌種進(jìn)行復(fù)篩。

    1.3.2 原料預(yù)處理與固態(tài)發(fā)酵粗酶液的制備

    挑選顆粒飽滿、無蟲咬、無霉?fàn)€、無畸形、色澤淡黃的市售有機(jī)黃豆,去離子水沖洗,直至無雜物,豆水質(zhì)量比1∶3浸泡14~18 h后,分裝入三角瓶各25 g放在高壓蒸汽滅菌鍋中蒸煮20min,隨即取出放入無菌操作臺內(nèi)進(jìn)行冷卻。挑取初篩得到的3株菌種2~3環(huán)菌苔接種到液體種子培養(yǎng)基中,于37℃、180 r/min的條件下培養(yǎng)18 h,然后按4%的接種量接種到滅菌的固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)上,在37℃條件下培養(yǎng)36 h,每12 h攪拌一次。稱取2 g發(fā)酵完成的納豆溶于4 mL無菌的生理鹽水中,4℃條件下浸提24 h,用玻璃棒搗碎經(jīng)12 000×g離心10 min,再向離心管加入2 mL生理鹽水搗碎離心,上清液即為固態(tài)發(fā)酵粗酶液。

    1.3.3 高產(chǎn)納豆激酶菌株的復(fù)篩

    (1)纖維蛋白原平板的制作

    納豆激酶活性的測定采用瓊脂糖-纖維蛋白原平板法[16]。首先將1%的瓊脂糖溶于0.05mol/L的Tris-HCl(pH 7.8)緩沖溶液中,加熱至完全溶解后,取出18 mL置于大試管中,待其冷卻至55℃左右,迅速倒入2 mL的牛血纖維蛋白原溶液(1.5 mg/100 mL),不斷振蕩使其完全混合均勻,注入直徑9 cm的培養(yǎng)皿中,再迅速加入1 mL牛凝血酶溶液(1 000 U溶于100mL生理鹽水),不斷晃動平皿使三者混合均勻,靜置1h后,用直徑為2mm的無菌膠頭吸管在平板上均勻打4孔。

    (2)尿激酶標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作

    參照楊明等[17]對瓊脂糖-纖維蛋白原平板法測定納豆激酶活力方法進(jìn)行的改進(jìn)。尿激酶標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作:將尿激酶標(biāo)準(zhǔn)品分別配制為248 IU/mL、496 IU/mL、744 IU/mL、992 IU/mL和1 240 IU/mL,各取10 μL點樣于新配制的纖維蛋白原平板孔中(四孔為一組平行),放置10 min,37℃培養(yǎng)16 h后取出,測定溶解圈的直徑,計算各溶解圈面積。以溶解圈的面積(x,mm2)為橫坐標(biāo),以尿激酶酶活(y,IU/mL)為縱坐標(biāo),繪制尿激酶標(biāo)準(zhǔn)曲線。

    (3)納豆激酶酶活力測定

    取納豆激酶固態(tài)發(fā)酵粗酶液10 μL點樣于纖維蛋白平板上(四孔為一組平行),放置10 min,移入37℃培養(yǎng)箱,保溫16 h后取出,用游標(biāo)卡尺測定溶解圈的直徑并計算各溶解圈面積,根據(jù)尿激酶標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程計算樣品納豆激酶酶活。

    1.3.4 高產(chǎn)納豆激酶菌株的鑒定

    (1)菌種形態(tài)鑒定

    將復(fù)篩得到的納豆激酶酶活最高的一株菌,在酪蛋白平板上畫線,37℃培養(yǎng)24 h,觀察單菌落形態(tài),對該菌株進(jìn)行革蘭氏染色,觀察菌體形態(tài)。

    (2)生理生化鑒定

    根據(jù)第八版《伯杰細(xì)菌鑒定手冊》[18]對菌株進(jìn)行生理生化鑒定。將菌株接入細(xì)菌微量生化反應(yīng)管,37℃條件下培養(yǎng)12 h,考察對色氨酸、丙酮酸鹽、Kohn明膠、葡萄糖、甘露醇、肌醇、山梨醇、鼠李糖、蔗糖、密二糖、苦杏仁苷、阿拉伯糖的利用情況。

    (3)樣品中DNA提取

    將復(fù)篩得到的納豆激酶酶活最高菌株接種于液體種子培養(yǎng)基,于37℃、180 r/min的條件下培養(yǎng)18 h。將培養(yǎng)液置于2 mL離心管,10 000×g離心6 min,重復(fù)兩次收集沉淀,取上述沉淀加入300 μL溶菌酶(質(zhì)量濃度50 mg/mL),置于37℃水浴1h,后使用細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒進(jìn)行提取。

    (4)16S rDNA序列鑒定

    擴(kuò)增使用的上游引物為27F(AGAGTTTGATCCTGGTCAGAACGAACGCT),下游引物為1492R(TACGGCTACCTTGTTACGACTTCACCCC)。25 μL聚合酶鏈反應(yīng)(polymerase chain reaction,PCR)體系為模板DNA 2 μL;27F 2.5 μL;1492R 2.5 μL;GoTaqGreen Master Mix(2×)12.5 μL;去離子水5.5 μL。反應(yīng)條件為94℃預(yù)變性5 min,94℃變性1 min,退火溫度從65℃降至55℃,每個循環(huán)降低0.5℃,退火時間為3 s,72℃延伸1 min,35個循環(huán);恒定退火溫度下進(jìn)行94℃變性1min,55℃退火30 s,72℃延伸1 min。將PCR產(chǎn)物送上海生工公司測序,登錄美國國家生物技術(shù)信息中心(National Center of Biotechnology Information,NCBI)將所得序列結(jié)果與數(shù)據(jù)庫中的已知序列進(jìn)行相似性比對,采用MEGA 5.0軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 產(chǎn)納豆激酶菌株的分離與初篩結(jié)果

    通過在酪蛋白平板上稀釋涂布分離出8株菌落形態(tài)不同且具有明顯水解酪蛋白能力的菌株,分別編號為GUYR01、GUYR02、GUYR03、GUYR04、GUYR05、GUYR06、GUYR07、GUYR08。

    在已經(jīng)完成菌株分離純化的基礎(chǔ)上,將菌種進(jìn)行初篩實驗,測量透明圈直徑計算水解透明圈面積,初篩結(jié)果見表1。

    表1 產(chǎn)納豆激酶菌株初篩結(jié)果Table 1 Results of preliminary screening of nattokinase-producing strains

    由表1可知,8株菌種溶解蛋白能力從高到低依次是:菌株GUYR02、GUYR05、GUYR04、GUYR01、GUYR07、GUYR06、GUYR03、GUYR08。其中菌株GUYR02、GUYR05、GUYR04的水解透明圈面積分別為(198±14.7)mm2、(190±12.6)mm2、(176±17.3)mm2明顯高于其他5株菌,所以選取水解透明圈面積最大的這3株菌種進(jìn)行復(fù)篩。

    2.2 高產(chǎn)納豆激酶菌株的復(fù)篩結(jié)果

    2.2.1 尿激酶標(biāo)準(zhǔn)曲線

    以溶解圈的面積(x,mm2)為橫坐標(biāo),以尿激酶酶活(y,IU/mL)為縱坐標(biāo)作尿激酶標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果見圖1。

    圖1 尿激酶標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 Standard curve of urokinase

    由圖1可知,尿激酶標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程為y=4.201 6x-10.874,相關(guān)系數(shù)為R2為0.999 4。結(jié)果表明,二者線性關(guān)系良好。

    2.2.2 產(chǎn)納豆激酶活力結(jié)果

    將酪蛋白平板初篩得到的菌株GUYR02、GUYR05、GUYR04進(jìn)行納豆固態(tài)發(fā)酵,離心取上清液10 μL點樣于纖維蛋白平板上,37℃條件下培養(yǎng)16 h后用游標(biāo)卡尺測量溶解圈直徑,得出溶解圈面積并放入尿激酶標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程進(jìn)行計算,結(jié)果如表2所示。

    表2 復(fù)篩菌株納豆激酶活力Table 2 Nattokinase activities of secondary screening strains

    由表2可知,通過瓊脂糖-纖維蛋白原平板法得到的3株納豆芽孢桿菌的納豆激酶活力分別為5 435.39 IU/g、4 813.55 IU/g和4 578.26 IU/g。國內(nèi)外有關(guān)篩選產(chǎn)納豆激酶菌株酶活力的報道多數(shù)為100~3 000 IU/g,還有部分較高納豆激酶酶活力的報道為3000~5000IU/mL[19-23]。另外,夏麗等[24]經(jīng)過紫外誘變篩選的高產(chǎn)菌株U-5納豆激酶活力均穩(wěn)定在5 440.37 IU/mL以上。董艷山等[25]以豆粕粉為氮源優(yōu)化搖瓶發(fā)酵再通過7 L發(fā)酵罐使納豆激酶活性達(dá)到6 717 IU/mL。與國內(nèi)文獻(xiàn)報道的酶活比較,本試驗所分離篩選菌株GUYR02的納豆激酶活力高達(dá)5 435.39 IU/g,屬于高產(chǎn)納豆激酶菌株。

    2.2.3 高產(chǎn)納豆激酶菌株GUYR02的鑒定

    (1)形態(tài)鑒定

    菌株GYYR02在酪蛋白平板的單菌落形態(tài)和革蘭氏染色菌體形態(tài)見圖2。由圖2A可知,菌株GUYR02菌落在酪蛋白平板上形成圓形、扁平、有黏性的小菌落,其顏色為乳白色,邊緣規(guī)則,較濕潤,稍隆起,不透明。由圖2B可知,該菌株革蘭氏染色菌體紫色,為革蘭氏陽性菌,桿狀。

    圖2 菌株GUYR02的菌落形態(tài)(A)及細(xì)胞形態(tài)(B)Fig.2 Colonial morphology(A)and cell morphology(B)of strain GUYR02

    (2)生理生化鑒定

    對篩選出菌株GUYR02進(jìn)行了部分生理生化特征試驗,結(jié)果見表3。

    表3 菌株GUYR02生理生化特性Table 3 Physiological and biochemical characteristics of strain GUYR02

    由表3可知,菌株GUYR02能發(fā)酵丙酮酸鹽、Kohn明膠、葡萄糖、甘露醇、山梨醇、蔗糖,不能發(fā)酵色氨酸、肌醇、鼠李糖、蜜二糖、苦杏仁苷和阿拉伯糖。

    (3)16S rDNA序列分析及基因系統(tǒng)發(fā)育分析

    菌株GUYR02PCR產(chǎn)物擴(kuò)增電泳圖見圖3,通過MEGA 5.0軟件進(jìn)行系統(tǒng)進(jìn)化樹的構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹結(jié)果見圖4。

    由圖3可知,PCR產(chǎn)物擴(kuò)增片段送上海生工基因公司測序,測序結(jié)果顯示菌株GUYR0216SrDNA全長1476bp。

    由圖4可知,BLAST分析結(jié)果顯示該基因同解淀粉芽孢桿菌(Bacillus amyloliquefaciens)的16S rDNA基因相似度達(dá)到99%。該系統(tǒng)樹以萊西式菌(Laceyella tengchongensis)(FJ426598)作為一個單獨的外群種,其中GUYR02菌株與解淀粉芽孢桿菌(Bacillus amyloliquefaciens)菌株在同一分支,結(jié)合前面的形態(tài)學(xué)和生理生化鑒定結(jié)果,最后鑒定菌株GUYR02為解淀粉芽孢桿菌(Bacillus amyloliquefaciens)。

    圖3 瓊脂糖凝膠電泳鑒定PCR擴(kuò)增產(chǎn)物Fig.3 PCR amplification products identified by agarose gel electrophoresis

    圖4 菌株GUYR02的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.4 Phylogenetic tree of strain GUYR02

    3 結(jié)論

    本研究從貴州大方縣臭豆腐中分離篩選出一株高產(chǎn)納豆激酶菌株GUYR02,其在37℃、pH 7.0、培養(yǎng)36 h的固態(tài)發(fā)酵條件下,其納豆激酶產(chǎn)量可高達(dá)5 435.39 IU/g。通過對該菌株的細(xì)胞形態(tài)、菌落形態(tài)、生理生化特征、16SrDNA序列分析以及系統(tǒng)發(fā)育分析,可以鑒定菌株GUYR02為解淀粉芽孢桿菌(Bacillusamyloliquefaciens)。由于菌株GUYR02為野生菌未做培養(yǎng)優(yōu)化,相對其他工程菌有更大的上升空間。若對其發(fā)酵原料和工藝進(jìn)行優(yōu)化,提高其產(chǎn)納豆激酶的發(fā)酵性能,這將能明顯改善現(xiàn)在國內(nèi)工程菌生產(chǎn)納豆激酶的產(chǎn)量不足和產(chǎn)納豆激酶菌株種類過于單一的研究現(xiàn)狀。有利于可持續(xù)發(fā)展和溶栓藥物產(chǎn)業(yè)體系的構(gòu)建,對擴(kuò)大納豆激酶產(chǎn)能和解淀粉芽孢桿菌的綜合利用范圍具有積極意義。

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    Screening and identification of strains with high yield nattokinase form Dafang stinky tofu

    GAO Zexin1,HE Laping1,2*,LIU Yabing1,GAO Bing3,LI Cuiqin4,LIU Hanyu1
    (1.School of Liquor and Food Engineering,Guizhou University,Guiyang 550025,China;2.Key Laboratory of Agricultural and Animal Products Store&Processing of Guizhou Province,Guizhou University,Guiyang 550025,China;3.College of Bioengineering and Food Science,Hubei University of Technology,Wuhan 430068,China;4.School of Chemistry and Chemical Engineering,Guizhou University, Guiyang 550025,China)

    Eight nattokinase-producing strains separated from Dafang stinky tofu were investigated in the study.The ability to produce natto kinase of the strains was determined by fibrinogen plate method,and a high yield nattokinase strain GUYR02 with enzyme activity of 5 435.39 IU/g was screened.By morphology,physiological and biochemical characteristics,16S rDNA sequence and phylogenetic tree analysis,the strain GUYR02 was identified asBacillus amyloliquefaciens.

    Dafang stinky tofu;nattokinase;screening;identification;Bacillus amyloliquefaciens

    Q939.97

    0254-5071(2017)07-0058-05

    10.11882/j.issn.0254-5071.2017.07.013

    2017-05-01

    貴州省重大專項(黔科合重大專項字[2015]6004-5號);貴州省農(nóng)業(yè)攻關(guān)項目(黔科合支撐[2016]2580號)

    高澤鑫(1993-),男,碩士研究生,研究方向為食品微生物。

    *通訊作者:何臘平(1972-),男,教授,博士,研究方向為發(fā)酵工程、生物催化與生物轉(zhuǎn)化。

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