李曉樓
(四川職業(yè)技術(shù)學院 建筑與環(huán)境工程系,四川 遂寧 629000)
不同降解菌對甲基毒死蜱及3,5,6-三氯-2-吡啶酚的降解能力比較
李曉樓
(四川職業(yè)技術(shù)學院 建筑與環(huán)境工程系,四川 遂寧 629000)
為掌握微生物降解甲基毒死蜱的特性與機制,首先從土壤中分離不同的甲基毒死蜱降解菌,然后對其降解效率、降解過程中中間產(chǎn)物3,5,6-三氯-2-吡啶酚(TCP)的質(zhì)量濃度變化、對TCP與其他6種有機磷農(nóng)藥的降解能力以及磷酸酯酶活性進行了測試分析。結(jié)果表明,分離到2株能高效降解甲基毒死蜱的菌株,經(jīng)鑒定命名為地衣芽孢桿菌ZL-7與熒光假單胞菌ZHLXL-2,其降解甲基毒死蜱的5 d降解率分別為90.6%和99.4%;在菌株ZL-7降解甲基毒死蜱的過程中檢出了TCP,而在菌株ZHLXL-2的降解過程中未檢出。菌株ZHLXL-2能降解TCP,48 h降解率可達91.0%,而菌株ZL-7不能降解TCP。兩菌株都能降解6種供試的有機磷農(nóng)藥,但菌株ZL-7降解率更高,其10 d降解率在92.1%~99.8%,菌株ZHLXL-2的10 d降解率為89.2%~93.4%;同時菌株ZL-7的磷酸酯酶活性顯著高于菌株ZHLXL-2。分析表明,這2種菌株的磷酸酯酶活性與其降解有機磷農(nóng)藥的能力呈正相關(guān)性,而菌株ZHLXL-2因可有效降解中間物TCP,從而能更快地降解甲基毒死蜱。
地衣芽孢桿菌; 熒光假單胞菌; 有機磷農(nóng)藥;甲基毒死蜱; 3,5,6-三氯-2-吡啶酚; 降解
甲基毒死蜱(O,O-二甲基-O-3,5,6-三氯-2-吡啶基硫逐磷酸酯)是一種廣譜型有機磷殺蟲劑,它通過抑制乙酰膽堿酯酶的活性,干擾害蟲正常的神經(jīng)傳導,并導致害蟲死亡[1]。甲基毒死蜱在世界范圍內(nèi)作為商品殺蟲劑應用已有約40 a的歷史,1975年其被聯(lián)合國糧農(nóng)組織和世界衛(wèi)生組織認可,推薦作為儲糧害蟲防護劑使用,并作為防治衛(wèi)生害蟲的有機磷農(nóng)藥之一[2]。
甲基毒死蜱的大量應用可能導致其在農(nóng)作物中廣泛殘留,并不可避免地導致土壤及水體污染,這些均會對人類健康及生態(tài)環(huán)境造成潛在危害。因此,需要充分掌握甲基毒死蜱的殘留狀況及降解機制,并探索如何從污染的土壤、水體或農(nóng)作物中去除甲基毒死蜱等農(nóng)藥殘留。通常,具降解能力的微生物被認為在有機磷農(nóng)藥的環(huán)境分解及解毒中起重要作用[3]。目前也已經(jīng)分離了一些甲基毒死蜱的降解菌株,例如:Kim等[4]分離到一株能高效降解甲基毒死蜱的伯克霍爾德氏菌Burkholderiasp.KR100,它能將甲基毒死蜱完全降解,同時也能降解樂果、馬拉硫磷以及毒死蜱等多種有機磷農(nóng)藥;Abraham等[5]獲得的一株鞘氨醇桿菌Sphingobacteriumsp.JAS3也能有效降解甲基毒死蜱。微生物降解甲基毒死蜱的關(guān)鍵步驟是將其水解為3,5,6-三氯-2-吡啶酚(TCP),但是降解中間物TCP在自然環(huán)境中的穩(wěn)定性較其母體更高,導致TCP較甲基毒死蜱更難降解,并且還會抑制某些磷酸酯鍵水解酶對甲基毒死蜱的分解,這一般是由于TCP 與酶發(fā)生某種程度的結(jié)合進而影響了酶活性[4,6]。另外,TCP也具有較大的毒性,且水溶性比甲基毒死蜱更高,導致其更容易污染水體和土壤,從而放大其危害[7]。在研究甲基毒死蜱生物降解特性的過程中發(fā)現(xiàn),某些甲基毒死蜱降解菌僅能將其分解為TCP,而不能將TCP降解,這可能導致只是在名義上消除了甲基毒死蜱殘留。為此,從土壤中分離獲得不同的甲基毒死蜱降解菌地衣芽孢桿菌ZL-7與熒光假單胞菌ZHLXL-2,對比分析二者在甲基毒死蜱降解速率、TCP降解能力、磷酸酯酶活性以及有機磷農(nóng)藥降解能力等方面的參數(shù),以期更完整地掌握微生物降解甲基毒死蜱的特點和機制,并為處理甲基毒死蜱及相關(guān)農(nóng)藥污染打下更堅實的基礎。
1.1 材料
試劑:甲基毒死蜱(98%)與甲基毒死蜱標準品購自Sigma-Aldrich公司(美國),TCP購自Dr.Ehrenstorfer公司(德國),乙腈、丙酮購自Merck公司(德國),所有化學試劑均為分析純或以上級別。
蛋白酶抑制劑混合物:0.3 mg/mL EDTA、35 μg/mL苯甲基磺酰氟(PMSF)、0.7 μg/mL抑肽素(pepstatin)、0.5 μg/mL亮肽素(leupeptin)。
培養(yǎng)基:(1)營養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基:蛋白胨10 g、牛肉浸膏3 g、氯化鈉5 g、蒸餾水1 L,pH值7.0;(2)LB培養(yǎng)基:蛋白胨 10 g、酵母提取物5 g、氯化鈉10 g、蒸餾水1 L,pH值7.0;(3)甲基毒死蜱降解菌分離培養(yǎng)基:K2HPO40.61 g、KH2PO40.39 g、KCl 0.25 g、MgSO4·7H2O 0.13 g、蒸餾水1 L、微量元素液1.0 mL(每升微量元素液含CaCl2·2H2O 1.0 mg、FeSO4·7H2O 40 mg、MnSO4·4H2O 40 mg、ZnSO4·7H2O 20 mg、CuSO4·5H2O 5 mg、NaCl 1.0 g), pH值自然;甲基毒死蜱的添加量根據(jù)試驗需要確定。
儀器:島津UV-2550分光光度計(日本)、AgilentTM7890A氣相色譜儀(美國)、AgilentTM1200液相色譜儀(美國)、IKATM勻漿機 (德國)、Sigma 3K30離心機(德國)、華美QHZ-98B振蕩培養(yǎng)箱(中國太倉)、梅特勒S20K pH計(瑞士)、VCX130 Sonics超聲波細胞破碎儀(美國)、N-EVAP氮吹濃縮器(美國)、EscoTM超凈工作臺(新加坡)。
1.2 方法
1.2.1 甲基毒死蜱降解菌的分離與鑒定 用于降解菌分離的土壤樣品取自四川遂寧農(nóng)田(使用甲基毒死蜱3 a以上)。取土樣2.5 g接種于 100 mL甲基毒死蜱降解菌分離培養(yǎng)基(甲基毒死蜱質(zhì)量濃度為50 mg/L)中,30 ℃振蕩培養(yǎng)(120 r/min),每隔1 d測定甲基毒死蜱殘留質(zhì)量濃度(測定方法參照文獻[2])。取3 d降解率[降解率=(1-殘余量/添加量)×100%]大于40%的培養(yǎng)液5 mL,轉(zhuǎn)接到含相同質(zhì)量濃度甲基毒死蜱的降解菌富集培養(yǎng)基(營養(yǎng)肉湯)中,連續(xù)轉(zhuǎn)接5 次以上;再次驗證降解效果后,在甲基毒死蜱降解菌分離培養(yǎng)基平板上涂布富集培養(yǎng)液,30 ℃倒置培養(yǎng),挑取生長旺盛的優(yōu)勢菌落在培養(yǎng)基平板上劃線,分離純化得到甲基毒死蜱降解菌的純培養(yǎng)。微生物生化分析參考《Bergey’s manual of determinative bacteriology》[8]和《常見細菌系統(tǒng)鑒定手冊》[9];菌種鑒定采用BiologTM微生物鑒定系統(tǒng)和16S rDNA序列分析法。
1.2.2 降解菌ZL-7與ZHLXL-2接種體的準備 分離純化的甲基毒死蜱降解菌經(jīng)肉湯培養(yǎng)后,5 500 r/min離心8 min,收集菌體,用無菌水洗滌3遍并重懸至OD600=1.8,該懸浮液作為后續(xù)甲基毒死蜱及TCP降解試驗的接種體。
1.2.3 菌株ZL-7與ZHLXL-2降解甲基毒死蜱過程中TCP的測定 在甲基毒死蜱降解菌分離培養(yǎng)基(甲基毒死蜱質(zhì)量濃度為50 mg/L)中接入2%的ZHLXL-2 或ZL-7接種體,然后將其置入搖床中(120 r/min, 30 ℃)培養(yǎng),每隔24 h取樣測試TCP質(zhì)量濃度,同時測定殘留甲基毒死蜱的質(zhì)量濃度。TCP的測定參照文獻方法[10]。
1.2.4 菌株ZL-7與ZHLXL-2對TCP的降解能力測定 在甲基毒死蜱降解菌分離培養(yǎng)基(其中的甲基毒死蜱用TCP代替,質(zhì)量濃度為50 mg/L)中接入2%的接種體,然后將其置入搖床中(120 r/min, 30 ℃)培養(yǎng)4 d以上,每隔12 h取樣測試TCP質(zhì)量濃度,用以評價不同菌株對TCP的降解能力。
1.2.5 菌株ZL-7與ZHLXL-2對另外6種有機磷農(nóng)藥的降解能力測定 取滅菌土壤(土壤取自四川省遂寧市拋荒耕地,未檢出甲基毒死蜱及另外6種供試有機磷農(nóng)藥, 121 ℃滅菌30 min)分成6組。第1組:在土壤中添加經(jīng)無菌處理的甲胺磷農(nóng)藥,使其含量為100 mg/kg,然后再接種菌株ZHLXL-2,接種量為每100 g土壤中添加10 mL接種體,并以未接種菌株ZHLXL-2的土樣作為對照,最后將其置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng),培養(yǎng)期間土壤的持水量調(diào)節(jié)至40%,每間隔48 h取樣測定農(nóng)藥殘留的質(zhì)量濃度,連續(xù)測試14 d,以評價菌株ZHLXL-2對土壤中有機磷農(nóng)藥的降解效應。第2組至第6組中除試驗農(nóng)藥依次改變?yōu)榧装枇?、久效磷、甲基對硫磷、殺螟硫磷和水胺硫磷以外,其他均與第1組相同。按同樣方法測試菌株ZL-7對6種有機磷農(nóng)藥的降解能力。土壤中有機磷農(nóng)藥殘留的分析方法參照國標GB/T 14552—2003[11]。
1.2.6 菌株ZL-7與ZHLXL-2的磷酸酯酶活性測定 磷酸酯酶活性的測定參照Subhas等[12]和Bhadbhade等[13]的方法。取菌株ZHLXL-2培養(yǎng)液100 mL,加入0.75 mL蛋白酶抑制劑混合物,在0 ℃下10 000 r/min離心5 min,收集菌體沉淀并保留上清液(Ⅰ);用50 mmol/L的Tris-HCl緩沖液洗滌菌體2次,洗滌液合并到上清液(Ⅰ),凍存以供測試胞外酶活性(需先冷凍干燥至近干,并定容至20 mL)。經(jīng)洗滌的菌體用Tris-HCl緩沖液定容到20 mL,并加入適量蛋白酶抑制劑,冰浴中超聲破碎細胞(功率200 W,破碎5 s,間隔4 s,共4 min),然后10 000 r/min離心10 min,上清(Ⅱ)即為粗酶液(測定酶活時需定容至20 mL)。 將粗酶液18 000 r/min離心30 min,沉淀用20 mL Tris-HCl緩沖液重懸,用于測試膜結(jié)合酶活性,上清(Ⅲ)用Tris-HCl緩沖液重新定容至20 mL,用于測試胞內(nèi)酶活性。菌株ZL-7按同樣方法測試。
磷酸酯酶酶促反應體系(3 mL)為:2.8 mL甘氨酸-氫氧化鈉緩沖液(0.05 mol/L,pH值9.0)、0.19 mL酶液、10 μL對硝基苯磷酸二鈉鹽(4-NPP,40 mmol/L);37 ℃水浴1 h,取反應液0.5 mL于試管中,加入3.5 mL甘氨酸-氫氧化鈉緩沖液(pH值10.0)混勻,紫外分光光度計測定OD405,通過比色法測定溶液中對硝基苯酚的生成量。各組試驗均設置3個重復,對照組以等量蒸餾水替代酶液。酶活性單位(U)定義:在本試驗條件下,1 min內(nèi)轉(zhuǎn)化對硝基苯磷酸二鈉生成1 μmol對硝基苯酚所需的酶量。
2.1 2株甲基毒死蜱降解菌株的鑒定及特性
從土壤中分離到2株能高效降解甲基毒死蜱的菌株,其降解50 mg/L甲基毒死蜱的5 d降解率分別為90.6%和99.4%,兩菌株分別被命名為ZL-7與ZHLXL-2。菌株ZL-7:直形或稍有彎曲的桿狀菌,大小為(0.6~0.8)μm×(1.8~3.0)μm,G+,能運動,中生芽孢或偏端生芽孢,兼性厭氧,在營養(yǎng)肉湯平板上形成不透明的粗糙型菌落。淀粉水解、接觸酶、明膠試驗及V.P.試驗均呈陽性,但吲哚試驗為陰性; 經(jīng)BiologTM微生物鑒定系統(tǒng)鑒定為地衣芽孢桿菌(Bacilluslicheniformis)。菌株ZHLXL-2:直形或微彎曲的桿菌,大小(0.6~0.7)μm×(2.0~2.5)μm,G-,能運動,無芽孢,好氧生活,在營養(yǎng)肉湯平板上形成濕潤的圓形菌落;接觸酶、氧化酶、明膠液化及V.P.試驗均呈陽性,而淀粉水解試驗和反硝化試驗呈陰性;經(jīng)BiologTM微生物鑒定系統(tǒng)鑒定為熒光假單胞菌(Pseudomonasfluorescens)。菌株ZHLXL-2與ZL-7通過PCR擴增獲得的16S rDNA序列長度分別為1 507 bp和1 506 bp,GenBank序列登記號分別為KY030783和KY030784,經(jīng)Blastn序列比對分析,結(jié)果顯示,菌株ZL-7與地衣芽孢桿菌的核苷酸序列同源性達99%以上,菌株ZHLXL-2與熒光假單胞菌的序列同源性大于99%。
2.2 菌株ZL-7與ZHLXL-2對甲基毒死蜱和TCP的降解效率
圖1表明,菌株ZL-7與ZHLXL-2都能有效地降解甲基毒死蜱,其3 d降解率分別達到了70.6%和91.6%。TCP是甲基毒死蜱降解過程中最重要的中間產(chǎn)物之一,主要由磷酸酯酶水解甲基毒死蜱產(chǎn)生。但是圖1所示的結(jié)果表明,僅在菌株ZL-7降解甲基毒死蜱的過程中檢測到了TCP,而在菌株ZHLXL-2降解甲基毒死蜱的過程中并未檢出TCP(對照組也未檢出)。在菌株ZL-7降解甲基毒死蜱的過程中,隨著甲基毒死蜱的逐漸降解,培養(yǎng)基中TCP的質(zhì)量濃度逐步升高,但3 d后TCP質(zhì)量濃度即不再顯著增長。若菌株ZL-7不能降解TCP,其TCP含量應隨甲基毒死蜱的降解持續(xù)增加,沒有持續(xù)增加可能是由于除了磷酸酯酶途徑外,還有其他方式參與到甲基毒死蜱的降解,且不產(chǎn)生TCP,例如,僅對甲基毒死蜱的O-甲基進行水解,或者是由于TCP與微生物代謝物發(fā)生化學反應生成其衍生物所致。
對照組及ZHLXL-2降解甲基毒死蜱過程中均未檢出TCP
圖2數(shù)據(jù)表明,菌株ZL-7不具備降解TCP的能力(與對照組無顯著差異,P>0.05),菌株ZHLXL-2則表現(xiàn)出較強的TCP降解能力。菌株ZHLXL-2降解TCP的48 h降解率可達91.0%,降解速率顯著高于Abraham等[7]分離的蒼白桿菌JAS2和Anwar等[10]報道的短小芽孢桿菌C2A1。
圖2 不同菌株對TCP的降解曲線
菌株ZHLXL-2降解甲基毒死蜱的過程中未檢出TCP,可能是由于產(chǎn)生的TCP被迅速降解。對圖1所示的菌株ZHLXL-2降解甲基毒死蜱的曲線及其相關(guān)數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析,發(fā)現(xiàn)其在本試驗條件下的降解規(guī)律符合一級動力學模型,按一級動力學模型C=C0·e-kt(C0為初始濃度,C為t天的殘余濃度,t為降解時間,k為降解速率常數(shù))模擬的方程為C=100e-1.294 7t,R2=0.989 1,k為1.294 7,降解半衰期為0.91 d。甲基毒死蜱的降解量在一定意義上也是其可產(chǎn)生TCP的最大量,若菌株ZHLXL-2降解TCP的速率高于產(chǎn)生TCP的速率,則TCP作為甲基毒死蜱降解的中間物就不會積累。后經(jīng)證實,菌株ZHLXL-2能快速降解TCP(圖2),且能以 TCP作為唯一碳源進行生長,按一級動力學模型模擬的TCP降解方程為C=100e-1.628 3t,R2=0.928 5,k為1.628 3,降解半衰期為0.82 d。通過比較上述2組降解參數(shù)可知,TCP的降解速率常數(shù)更高、半衰期也更短。因此,在菌株ZHLXL-2降解甲基毒死蜱的過程中,TCP作為中間物不會積累,因而也沒有被檢出。
2.3 菌株ZL-7與ZHLXL-2降解6種有機磷農(nóng)藥的效果
有機磷農(nóng)藥一般具有磷酸酯、硫代磷酸酯、磷酰胺酯類的共有結(jié)構(gòu),能降解這類共有結(jié)構(gòu)的微生物通常能降解多種有機磷農(nóng)藥,為驗證所篩選的菌株是否具有這種廣譜降解有機磷農(nóng)藥的能力,測試了菌株ZHLXL-2與菌株ZL-7對其他6種有機磷農(nóng)藥的降解性能,所選取的6種農(nóng)藥均是曾在我國大量使用過的或目前仍在應用的有機磷農(nóng)藥(甲胺磷、甲拌磷、久效磷、甲基對硫磷、殺螟硫磷和水胺硫磷)。
從圖3可知,菌株ZL-7對6種供試農(nóng)藥均有較好的降解效果,其10 d降解率都在92%以上(92.1%~99.8%),而14 d降解率則均高于99%。這些測試結(jié)果表明,菌株ZL-7對有機磷農(nóng)藥的降解作用具有廣譜性,可能是由于菌株ZL-7產(chǎn)生的相關(guān)酶類作用于有機磷農(nóng)藥的共有結(jié)構(gòu)所致,而降解速度的快慢則可能與農(nóng)藥自身的化學穩(wěn)定性、降解酶接觸農(nóng)藥靶標位點的難易程度、農(nóng)藥及降解產(chǎn)物對酶促反應的反饋作用等多種因素有關(guān)[14-15]。
圖3 菌株ZL-7對土壤中6種不同有機磷農(nóng)藥的降解曲線
菌株ZHLXL-2降解6種有機磷農(nóng)藥的性能測試結(jié)果見圖4。盡管前述試驗結(jié)果已經(jīng)表明菌株ZHLXL-2降解甲基毒死蜱的速率顯著高于菌株ZL-7,但比較兩菌株對6種其他有機磷農(nóng)藥的降解曲線及數(shù)據(jù)可知,菌株ZHLXL-2降解其他有機磷農(nóng)藥的速率低于菌株ZL-7(菌株ZHLXL-2降解6種供試農(nóng)藥的10 d降解率為89.2%~93.4%),因此,初步推斷菌株ZL-7具有更強的有機磷農(nóng)藥廣譜降解能力。菌株ZHLXL-2能高效降解中間物TCP,可能是其較菌株ZL-7能更好地降解甲基毒死蜱的重要原因。
圖4 菌株ZHLXL-2對土壤中6種不同有機磷農(nóng)藥的降解曲線
2.4 菌株ZL-7與ZHLXL-2的磷酸酯酶活性
對有機磷農(nóng)藥結(jié)構(gòu)中的磷酸酯鍵具有分解作用的酶類較多,磷酸酯酶即是其中最重要的一類。一般而言,能產(chǎn)生磷酸酯酶活性的微生物往往也會具有廣譜降解有機磷農(nóng)藥的能力,而酶活性的大小則與降解能力呈正相關(guān)性[16]。為了弄清菌株ZL-7與ZHLXL-2降解有機磷農(nóng)藥的能力與其磷酸酯酶活性之間的關(guān)系,測試并比較了2種菌株的磷酸酯酶活性。由于磷酸酯酶能夠水解4-NPP,反應后產(chǎn)生黃色的末端產(chǎn)物,并可在波長405 nm處讀取,因此以此為基礎測定磷酸酯酶的活性。
在試驗中發(fā)現(xiàn),同時含有菌株ZL-7和4-NPP的試驗組能觀察到溶液呈黃色,對菌株ZHLXL-2的試驗結(jié)果也與之類似,因此推斷,這是由于菌株ZL-7與ZHLXL-2在生長過程中具有磷酸酯酶活性,能夠水解4-NPP產(chǎn)生黃色產(chǎn)物所致。從圖5可知,2種菌株在生長過程中均具有較強的磷酸酯酶活性,其胞外酶、胞內(nèi)酶及膜結(jié)合酶中都能檢出磷酸酯酶活性(主要為胞內(nèi)酶),這可能是2種菌株都能有效降解多種有機磷農(nóng)藥的原因。另外,菌株ZL-7的磷酸酯酶活性顯著高于菌株ZHLXL-2(P<0.05),也印證了菌株ZL-7降解有機磷農(nóng)藥的能力優(yōu)于菌株ZHLXL-2,證實了這2種菌株的磷酸酯酶活性與其降解有機磷農(nóng)藥的能力呈正相關(guān)性,而菌株ZL-7降解甲基毒死蜱的能力不及菌株ZHLXL-2則是由于其他原因所致。根據(jù)圖5,2種菌株粗酶液的磷酸酯酶活性分別為59.4 U/mL和40.8 U/mL,活性大小與Bhadbhade等[13]報道的數(shù)據(jù)相當,這也暗示了這2種菌株都具有開發(fā)相應酶制劑的基礎,開發(fā)的磷酸酯酶相關(guān)制劑可望用于有機磷農(nóng)藥污染的降解等方面。
圖5 菌株ZL-7與ZHLXL-2的磷酸酯酶活性
在本研究中,成功分離到2株甲基毒死蜱高效降解菌株,分別為地衣芽孢桿菌ZL-7與熒光假單胞菌ZHLXL-2,其降解甲基毒死蜱的5 d降解率分別為90.6%和99.4%。兩菌株都有較高的磷酸酯酶活性和降解多種有機磷農(nóng)藥的能力,其酶活性與降解速率之間呈正相關(guān)性;菌株ZL-7較菌株ZHLXL-2有更高的磷酸酯酶活性,與之相應的是其對多種有機磷農(nóng)藥的降解速率更快。但是,菌株ZL-7降解甲基毒死蜱的能力不及菌株ZHLXL-2,這一現(xiàn)象被初步歸因于菌株ZL-7不能降解甲基毒死蜱降解過程中產(chǎn)生的中間物TCP,TCP的積累將會導致反饋抑制效應;而菌株ZHLXL-2則能降解TCP,從而將甲基毒死蜱完全降解,最終導致菌株ZHLXL-2較菌株ZL-7降解甲基毒死蜱更為有效、快速。
有機磷農(nóng)藥降解菌株在生長過程中可能會產(chǎn)生多種降解有機磷農(nóng)藥的酶類,其中最重要的一類是磷酸酯酶,它能夠水解有機磷農(nóng)藥中的磷酸酯鍵,因而能水解多種有機磷農(nóng)藥。微生物若能產(chǎn)生這類能夠作用于有機磷農(nóng)藥共有結(jié)構(gòu)的酶類,也就具備了降解有機磷農(nóng)藥的廣譜性,而降解速度則與農(nóng)藥自身的結(jié)構(gòu)、降解產(chǎn)物對微生物及酶促反應的反饋作用等多種因素有關(guān)。另外,微生物也能產(chǎn)生一些針對個別農(nóng)藥的特異性基團或化學鍵的酶類,這些酶只能對個別農(nóng)藥起到分解作用;不同的微生物產(chǎn)生的酶類差異很大,這決定了它們不同的降解特性。在本研究中,2株甲基毒死蜱降解菌都能分解供試的6種有機磷農(nóng)藥,故推測這2種菌株都能產(chǎn)生降解有機磷農(nóng)藥的廣譜性酶類,其產(chǎn)生的酶類可能是磷酸酯酶,也可能包括其他有相似功能的酶類。菌株ZL-7降解有機磷農(nóng)藥的能力整體上優(yōu)于菌株ZHLXL-2,這是由于菌株ZL-7產(chǎn)生的有機磷農(nóng)藥降解酶產(chǎn)量更大或者活性更高;而菌株ZL-7降解甲基毒死蜱的能力不及菌株ZHLXL-2,這一現(xiàn)象可能是由于菌株ZHLXL-2產(chǎn)生了針對甲基毒死蜱的特異性酶類,這些特異性酶類或者能直接導致甲基毒死蜱的降解,或者對甲基毒死蜱降解的中間產(chǎn)物有分解作用,從而有利于降解反應的快速進行。在本研究中,菌株ZHLXL-2能高效降解TCP被認為是其能更快降解甲基毒死蜱的重要原因之一。
通常在有機污染物治理過程中僅關(guān)注了目標污染物的數(shù)量指標,而由其導致的有害的次級效應常被忽視。從本研究的結(jié)果可知,某些甲基毒死蜱降解菌僅能將甲基毒死蜱分解為TCP,而不能將TCP降解,這就導致只是在名義上消除了甲基毒死蜱殘留的危害。因為TCP在自然環(huán)境中的穩(wěn)定性很高,導致TCP較甲基毒死蜱更難降解,并且TCP也具有較甲基毒死蜱更大的毒性,且水溶性比甲基毒死蜱也更高,導致其更容易污染水體和土壤,從而放大危害。按照已有的資料,綠草定、毒死蜱等農(nóng)藥的降解過程中也有類似現(xiàn)象[10,17]。因此,在利用微生物降解有機污染物的應用中,需要充分掌握不同微生物降解污染物的特點及降解機制,特別是降解中間物的可降解性、毒性及存在狀態(tài)等方面。
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Biodegradation of Chlorpyrifos-methyl and Its Hydrolysis Product 3,5,6-Trichloro-2-pyridinol by Different Degrading Bacteria
LI Xiaolou
(Architecture and Environmental Engineering Department,Sichuan Vocational and Technological College,Suining 629000,China)
To understand the degradation characteristics and mechanism of chlorpyrifos-methyl by microorganisms,First,different chlorpyrifos-methyl degrading bacteria were isolated from soil,and then,their degradation characteristics were tested and analyzed,including degradation efficiency on chlorpyrifos-methyl,variation of intermediate(3,5,6-trichloro-2-pyridinol,TCP) concentration in the degradation process,phosphatase activity, degradation ability on TCP and 6 organophosphorus pesticides.Two chlorpyrifos-methyl degrading bacteria were isolated,which were identified asBacilluslicheniformisZL-7 andPseudomonasfluorescensZHLXL-2,and their degradation rates on chlorpyrifos-methyl were 90.6% and 99.4% respectively in five days.TCP was found in the degradation process of chlorpyrifos-methyl by the strain ZL-7, but not by the strain ZHLXL-2.The strain ZHLXL-2 could degrade TCP, and the degradation rate reached 91.0% at 48 h,while the strain ZL-7 could not degrade TCP.Both strains could degrade 6 kinds of organophosphorus pesticides.The 10 d degradation rate of 6 organophosphorus pesticides by the strain ZL-7 was 92.1%—99.8%,higher than the degradation rate by the strain ZHLXL-2(89.2%—93.4%).In addition,the phosphatase activity of strain ZL-7 was significantly higher than that of strain ZHLXL-2.These results showed that the phosphatase activity of the two strains was positively correlated with their ability to degrade organophosphorus pesticides.The strain ZHLXL-2 could degrade chlorpyrifos-methyl more quickly because of its ability to degrade TCP effectively.
Bacilluslicheniformis;Pseudomonasfluorescens; organophosphorus pesticide; chlorpyrifos-methyl; 3,5,6-trichloro-2-pyridinol; degradation
2016-11-22
四川省教育廳重點項目(13ZA0036)
李曉樓(1974-),男,四川遂寧人,副教授,碩士,主要從事微生物應用研究。E-mail:3141024328@qq.com
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A
1004-3268(2017)05-0084-06