薛凡尼氏炭角菌發(fā)酵菌絲體提取物的抗氧化活性

田 強(qiáng),王 君,張夢(mèng)娜,馬 林,2,*,賀新生,2,袁小紅,2

(1.西南科技大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院,四川綿陽 621010; 2.四川省生物質(zhì)資源利用與改性工程技術(shù)研究中心，四川綿陽 621010)

薛凡尼氏炭角菌發(fā)酵菌絲體提取物的抗氧化活性

田 強(qiáng)1,王 君1,張夢(mèng)娜1,馬 林1,2,*,賀新生1,2,袁小紅1,2

(1.西南科技大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院,四川綿陽 621010; 2.四川省生物質(zhì)資源利用與改性工程技術(shù)研究中心，四川綿陽 621010)

分別采用4種不同溶劑(乙醇、甲醇、丙酮和水)對(duì)薛凡尼氏炭角菌菌絲體進(jìn)行提取,測(cè)定不同溶劑提取物的總酚和總黃酮含量以及對(duì)DPPH自由基清除能力和總還原力。結(jié)果表明,不同溶劑提取物均具有不同程度的抗氧化活性。在各提取物濃度為2.5 mg/mL時(shí),對(duì)DPPH自由基的清除率以水提物為最高(91.8%),其次為60%丙酮提取物和70%乙醇提取物,清除率分別為89.6%和83.6%,甲醇提取物的清除率最低(75.1%)。各溶劑提取物的還原能力強(qiáng)弱依次為:水>60%乙醇>70%乙醇>60%丙酮>甲醇。菌絲體水提物的總酚含量最高,而總黃酮含量最高的是甲醇提取物?？傮w而言,薛凡尼氏炭角菌菌絲體水提物具有較強(qiáng)的抗氧化活性,可能具有開發(fā)為食品抗氧化劑的潛力。

薛凡尼氏炭角菌,菌絲體,抗氧化,自由基清除,總還原力

從天然產(chǎn)物中尋找抗氧化活性物質(zhì),用于延緩衰老以及治療與衰老有關(guān)的疾病,具有十分重要的意義。國內(nèi)外已對(duì)100多種大型真菌進(jìn)行了抗氧化活性研究,表明高等真菌是開發(fā)抗氧化物質(zhì)的重要資源[1]。炭角菌屬(Xylaria)真菌在中國已有悠久的藥用歷史,迄今為止,已從炭角菌屬真菌子實(shí)體或發(fā)酵產(chǎn)物中分離獲得多種活性化合物,其主要藥用功能包括抗腫瘤、抗菌、抗氧化、抗病毒和增強(qiáng)機(jī)體免疫力等[2-4]。在抗氧化活性研究方面,吳根福等從炭角菌發(fā)酵菌粉中分離到12個(gè)純度較高的抗氧化性物質(zhì),其中5個(gè)化合物的抗氧化活性與維生素E相近或更強(qiáng)[5]。龔慶芳等從黑柄炭角菌發(fā)酵菌絲體分離得到一個(gè)酚羥基類化合物,即1-(2,6-二羥基苯)-3-羥基-丁酮,表現(xiàn)出較強(qiáng)的DPPH自由基清除能力和還原力[6]。還有報(bào)道,其它炭角菌菌絲體的甲醇提取物以及分離的多肽和多糖均顯示了較好的抗氧化活性[7-9]。薛凡尼氏炭角菌(Xylariaschweinitzii)為本課題組從竹樁采集分離獲得,已對(duì)其進(jìn)行了液體培養(yǎng)和子實(shí)體培養(yǎng)[10]。本文報(bào)道薛凡尼氏碳角菌發(fā)酵菌絲體不同溶劑提取物抗氧化活性,通過對(duì)其抗氧化活性的測(cè)定研究其是否具有開發(fā)為食品抗氧化劑的潛力。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

炭角菌菌種 由本課題組采集自四川省成都市邛崍?zhí)J溝竹海的慈竹樁,經(jīng)分離純化后獲得純菌種,由作者之一賀新生教授鑒定為薛凡尼氏炭角菌[11](XylariaschweinitziiBerk. & M.A.,異名SphaeriascruposaFr. 1828),菌種保藏在西南科技大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院微生物實(shí)驗(yàn)室(標(biāo)本編號(hào)為20130808)。

DPPH 日本東京化成株式會(huì)社產(chǎn)品,純度≥97%;蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品 成都普斯生物科技有限公司,純度≥98%;甲醇、乙醇、丙酮、三氯乙酸、鐵氰化鉀、三氯化鐵、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、亞硝酸鈉、碳酸鈉、硝酸鋁、氫氧化鈉、維生素C和沒食子酸等均為分析純，蒸餾水。

HZQ-160F全溫振蕩培養(yǎng)箱 上海齊欣科學(xué)儀器有限公司;RE-52AA旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海亞榮生化儀器廠;752紫外可見光分光光度計(jì) 上海佑科儀器儀表有限公司。

1.2 炭角菌液體培養(yǎng)

菌種活化:將4 ℃保存的薛凡尼氏炭角菌菌種接種到PDA培養(yǎng)基平板進(jìn)行活化,在28 ℃培養(yǎng)5 d。

培養(yǎng)基制備:按馬鈴薯200 g/L、葡萄糖20 g/L、蛋白胨1 g/L、磷酸二氫鉀3 g/L和硫酸鎂5 g/L配制培養(yǎng)基,pH自然。121 ℃滅菌30 min。

接種與培養(yǎng):已活化菌種用直徑6 mm打孔器取兩塊菌餅接入到250 mL三角瓶中,培養(yǎng)基裝量為100 mL,共培養(yǎng)5 L。搖床轉(zhuǎn)速120 r/min,培養(yǎng)溫度28 ℃,培養(yǎng)7 d。

1.3 菌絲體提取

培養(yǎng)結(jié)束后將發(fā)酵培養(yǎng)液過濾,菌絲體用去離子水充分洗滌,晾干水分后在60 ℃充分干燥并粉碎。稱取2 g干燥菌粉共5份,分別用15倍體積的60%乙醇、70%乙醇、100%甲醇、60%丙酮和蒸餾水在60 ℃條件下提取2 h。過濾后濾渣再用相應(yīng)溶劑分別提取2次,合并提取濾液。將濾液在55 ℃減壓蒸發(fā)出大部分的溶劑,轉(zhuǎn)移至小燒杯中,在60 ℃水浴鍋中使溶劑完全蒸干,稱重并計(jì)算提取物得率。將獲得的不同溶劑浸膏均用50%乙醇溶解,配制成10 mg/mL的溶液,置于4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

提取物得率按下面公式進(jìn)行計(jì)算:

提取物得率(%)=[(M1-M2)/M]×100

式(1)

式(1)中，M1為蒸干后浸膏與小燒杯的質(zhì)量(g);M2為小燒杯的質(zhì)量(g);M為測(cè)試的樣品粉末的質(zhì)量(g)。

1.4 DPPH自由基清除活性測(cè)定

DPPH自由基清除活性測(cè)定參照文獻(xiàn)[12]方法并略作修改。取待測(cè)樣品1.5 mL加入到具塞試管中,再加入4.5 mL用甲醇溶解的DPPH溶液(0.1 mmol/L),混勻,37 ℃避光靜置30 min,以蒸餾水調(diào)零,在517 nm波長測(cè)定吸光度。以維生素C(VC)為陽性對(duì)照(0.5 mg/mL),以僅加DPPH溶液而不加樣品作為空白對(duì)照。每個(gè)樣品重復(fù)測(cè)定3次。

DPPH自由基清除率按下面公式進(jìn)行計(jì)算:

清除率(%)=[(A0-A1)/A0]×100

式(2)

式(2)中，A0為未加樣品的空白吸光值;A1為樣品的吸光值。

1.5 還原力測(cè)定

還原力測(cè)定參照武守華等的方法并略作改動(dòng)[7]。以VC作標(biāo)準(zhǔn)品。取VC標(biāo)準(zhǔn)液0.2 mL于試管,依次加入0.2 mol/L磷酸鈉緩沖溶液1 mL(pH6.6)和10 mg/mL鐵氰化鉀溶液1 mL,混勻后置于50 ℃溫浴30 min。再加入100 mg/mL三氯乙酸溶液1 mL,混勻后4000 r/min離心10 min。取2 mL上層液體,依次加入2 mL蒸餾水和1 mg/mL氯化鐵溶液0.4 mL,混勻后放置10 min,在700 nm下測(cè)定吸光度。以VC濃度為橫坐標(biāo)(X),吸光度值為縱坐標(biāo)(Y),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,建立回歸方程。用VC當(dāng)量(mg/g菌絲體)表示樣品還原力的大小。不同溶劑提取的樣品分別取0.2 mL按同樣方法進(jìn)行測(cè)定,每個(gè)樣品重復(fù)3次。以蒸餾水代替樣品作對(duì)照調(diào)零。

1.6 總酚含量測(cè)定

總酚含量測(cè)定參照張燕等的方法作適當(dāng)改進(jìn)[13]。以沒食子酸作標(biāo)準(zhǔn)品,配制不同濃度的沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)液。吸取標(biāo)準(zhǔn)液1 mL加入到10 mL 棕色容量瓶中,加入6 mL 蒸餾水,再加入 0.5 mL福林試劑,充分搖勻,再加入20%碳酸鈉溶液2 mL,用蒸餾水定容至刻度,于55 ℃水浴處理1.5 h,冷卻,于765 nm處測(cè)定吸光度。以吸光度對(duì)沒食子酸濃度作圖,建立標(biāo)準(zhǔn)曲線和回歸方程。不同樣品各取1 mL按同樣方法進(jìn)行測(cè)定,重復(fù)3次。以蒸餾水代替樣品作對(duì)照調(diào)零。

1.7 總黃酮含量測(cè)定

總黃酮含量測(cè)定參照羅永會(huì)等的方法[14]。以蘆丁作標(biāo)準(zhǔn)品,配制不同濃度的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)液,依次加入不同試劑進(jìn)行反應(yīng),于510 nm處測(cè)定吸光度。以蘆丁濃度為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo),建立標(biāo)準(zhǔn)曲線和回歸方程。待測(cè)樣品各取0.5 mL,加入50%乙醇1.5 mL混勻,后續(xù)再按測(cè)定蘆丁標(biāo)準(zhǔn)液的方法進(jìn)行,每個(gè)樣品重復(fù)測(cè)定3次。

1.8 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

2 結(jié)果與分析

2.1 菌絲體不同溶劑提取物的得率

表1 薛凡尼氏炭角菌菌絲體不同溶劑提取物得率Table 1 The yield rate of different solvent extracts from mycelium of X. schweinitzii

用不同溶劑提取菌絲體所得提取得率見表1。結(jié)果表明,用水作溶劑的提取物得率最高,為38.8%,其它幾種溶劑提取物的得率比較接近,在23.3%至26.1%之間。

2.2 菌絲體不同溶劑提取物對(duì)DPPH自由基的清除能力

不同溶劑提取物及VC對(duì)DPPH自由基的清除率見表2。VC在0.5 mg/mL時(shí)的清除率達(dá)95.6%,菌絲體5種溶劑提取物在2.5 mg/mL濃度時(shí),以水提物的清除率最高,為91.8%,甲醇提取物對(duì)DPPH自由基的清除率最低,僅為75.1%,極顯著低于其它溶劑提取物。

2.3 菌絲體不同溶劑提取物的還原力

以VC濃度為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo)建立標(biāo)準(zhǔn)曲線,求得回歸方程為Y=2.1189X+0.0081(R2=0.9971),Y表示吸光度,X表示VC濃度,表明VC含量在0～0.25 mg/mL范圍內(nèi)與吸光度呈良好線性關(guān)系。

還原力測(cè)定結(jié)果見表2。VC當(dāng)量值越大,還原力越強(qiáng)。各提取物的還原力由大到小依次為:水>60%乙醇提取物>70%乙醇提取物>60%丙酮提取物>甲醇提取物。其中水提物的還原力極顯著高于其它幾種提取物,甲醇提取物的還原力最低,70%乙醇提取物、60%乙醇和60%丙酮提取物的還原力無顯著差異。

表2 不同溶劑提取物的DPPH自由基清除率和還原力Table 2 DPPH scavenging and reducing power of different extracts

注:結(jié)果表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差,n=3。同列數(shù)據(jù)后的不同小寫字母表示處理間差異達(dá)顯著水平(p<0.05),不同大寫字母表示處理間差異達(dá)極顯著差異(p<0.01),表3同。

2.4 菌絲體不同溶劑提取物的總酚及總黃酮含量

不同溶劑提取物的總酚及總黃酮含量見表3?？偡雍繙y(cè)定以沒食子酸作對(duì)照品建立標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程:Y=0.0557X+0.0025(R2=0.9958),沒食子酸濃度在0～0.02 mg/mL范圍內(nèi)與吸光度呈良好線性關(guān)系?？傸S酮含量測(cè)定以蘆丁作對(duì)照品建立標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程:Y=0.0106X-0.0083(R2=0.9993),蘆丁濃度在0～100 μg/mL范圍內(nèi)與吸光度呈良好線性關(guān)系。

由表3可知,不同溶劑提取物中總酚含量順序?yàn)樗崛∥?甲醇提取物>60%乙醇提取物>70%乙醇提取物>60%丙酮提取物,其中70%乙醇提取物與60%丙酮總酚含量無顯著差異,水提物的總酚含量最高(13.96 mg/g),極顯著高于其它提取物,甲醇提取物的總酚含量僅次于水提物。

表3 不同溶劑提取物的總酚和總黃酮含量Table 3 Total phenols and total flavonoid of different extracts

甲醇提取物的總黃酮含量最高,其次為水提物,60%丙酮提取物的總黃酮含量最低,僅為5.80 mg/g,60%乙醇提取物與70%乙醇提取物總黃酮含量無顯著差異。

表4 總酚及總黃酮含量與抗氧化活性的相關(guān)性Table 4 Correlation between total phenolic and total flavonoid content and antioxidant activity

注:*表示在0.05水平上顯著相關(guān),**表示在0.01水平上顯著相關(guān);表5同。

表5 含水提取物總酚及總黃酮含量與抗氧化活性的相關(guān)性Table 5 Correlation between total phenolics and total flavonoids content and antioxidant activity in aqueous extracts

2.5 總酚及總黃酮含量與抗氧化活性的相關(guān)性

將不同溶劑提取物的總酚及總黃酮含量分別與DPPH自由基清除率和總還原力作相關(guān)性分析。發(fā)現(xiàn)總酚含量與DPPH自由基清除率以及與總還原力的相關(guān)性較低,相關(guān)系數(shù)分別為0.233和0.340,而總黃酮含量與DPPH自由基清除率之間以及與總還原力之間均呈負(fù)相關(guān),相關(guān)系數(shù)分別為0.613和0.681。當(dāng)只考慮水提物及其它含水提取物(60%和70%乙醇提取物以及60%丙酮提取物)與抗氧化活性的相關(guān)性時(shí),計(jì)算結(jié)果表明,含水提取物總酚含量及總黃酮含量均與總還原力呈顯著相關(guān),相關(guān)系數(shù)分別為0.987和0.862,而與DPPH自由基清除率的相關(guān)性相對(duì)較低(相關(guān)系數(shù)分別為0.559和0.276)。

3 討論與結(jié)論

薛凡尼氏炭角菌菌絲體不同溶劑提取物在2.5 mg/mL濃度時(shí)對(duì)DPPH自由基均具有較好的清除效果(75.1%～91.8%),總還原力按VC當(dāng)量計(jì)以水提物為最高,而甲醇提取物的總還原力最低,其它3種提取物的總還原力無顯著差異。水提物相比其它溶劑提取物具有更好的抗氧化活性,這與其所含較高的總酚含量(13.96 mg/g)和總黃酮含量(16.53 mg/g)有關(guān)。已有研究表明,提取溶劑的極性對(duì)多酚類化合物的提取效率和提取物抗氧化活性有很大影響,如薄荷、紅薯葉、翠云草和藍(lán)莓葉等的水提物就含有更高的總酚(或多酚)含量[15-18],而甲醇提取物的總黃酮含量通常較高,本研究結(jié)果與此類似。除甲醇提取物外,薛凡尼氏炭角菌菌絲體水提物總黃酮含量也顯著高于其它提取物,這種情況也有類似的報(bào)道[19-20]。

酚類化合物是天然植物提取物中具有抗氧化活性的主要物質(zhì)基礎(chǔ),而黃酮類化合物是植物體內(nèi)的含量最為豐富的酚類化合物,它們的含量高低與抗氧化活性具有明顯的相關(guān)性,但這種相關(guān)性并不一致。如魚腥草水提物的總酚和總黃酮含量最高,對(duì)DPPH自由基清除率和總還原力也最高[20],對(duì)桑葉和荔枝花的研究也發(fā)現(xiàn)，在甲醇、丙酮和水3種溶劑中，水提物的總酚、總黃酮含量及抗氧化活性均最低[21-22]。然而，對(duì)于紅薯葉的研究卻得到相反的結(jié)果，在7種提取溶劑中，水提物的總黃酮含量較低，僅高于氯仿提取物，但其對(duì)DPPH自由基清除率及還原力卻較高，僅次于甲醇提取物[16]，這種情況可能與不同植物的化學(xué)成分存在較大差異有關(guān)。

高等真菌的抗氧化活性物質(zhì)主要是多酚類、三聯(lián)苯類、聚酮類、生物堿、萜類和甾體等化合物。李峻志等總結(jié)了2000年以來對(duì)35種大型真菌中的抗氧化活性物質(zhì)研究結(jié)果,發(fā)現(xiàn)在分離鑒定的138個(gè)化合物中,含有多個(gè)羥基的多酚類(包括黃酮)和三聯(lián)苯類化合物最多(92個(gè)),而且羥基越多,清除自由基的能力最強(qiáng)[1]。

本研究發(fā)現(xiàn),含水的有機(jī)溶劑提取物對(duì)DPPH自由基清除率以及總還原力相對(duì)較高,表明極性較大的酚類物質(zhì)可能是薛凡尼氏炭角菌中抗氧化活性的主要成分,龔慶芳等對(duì)黑柄炭角菌的研究結(jié)果也表明,主要是含有酚羥基的化合物起到了清除自由基的作用[6]。除酚類物質(zhì)外,薛凡尼氏炭角菌菌絲體中可能還含有其它水溶性成分,如邵雪蓮對(duì)痂狀炭角菌進(jìn)行液體培養(yǎng),就發(fā)現(xiàn)其胞內(nèi)及胞外多糖均具有清除DPPH自由基和氧陰離子自由基的能力[23]。

本研究結(jié)果表明,以水作為溶劑提取菌絲體相對(duì)于有機(jī)溶劑得到的提取物更多,并且測(cè)得水提物的抗氧化活性良好,活性成分含量較高,說明薛凡尼氏炭角菌水提物在用于開發(fā)抗氧化食品添加劑上具有一定的潛力且在加工安全性上有較好的保障,有必要對(duì)其活性成分進(jìn)一步進(jìn)行分離和鑒定。

[1]李峻志,吳小杰,黨永,等. 大型真菌抗氧化活性物質(zhì)的研究進(jìn)展[J]. 食品與生物技術(shù)學(xué)報(bào),2014,33(5):455-465.

[2]Song F,Wu SH,Zhai YZ,et al. Secondary metabolites from the genusXylariaand their bioactivities[J]. Chemistry & Biodiversity,2014,11(5):673-694.

[3]Liu X,Dong M,Chen X,et al. Antimicrobial activity of an endophyticXylariasp.YX-28 and identification of its antimicrobial compound 7-amino-4-methylcoumarin[J]. Applied Microbiology and Biotechnology,2008,78(2):241-247.

[4]Li SF,Wen HA. Antioxidant activities of bioactive components fromXylariagracillimain submerged culture[J]. Mycosystema,2008,27(4):587-593.

[5]吳根福,楊志堅(jiān). 炭角菌深層發(fā)酵制品的抗氧化特性研究[J]. 浙江大學(xué)學(xué)報(bào)(理學(xué)版),2002,29(2):179-183.

[6]龔慶芳,武守華,譚寧華,等. 黑柄炭角菌發(fā)酵菌絲中抗氧化及抗腫瘤活性的有效成分研究[J]. 食品科技,2008,33(12):28-31.

[7]武守華,張曉君,張平,等. 四種子囊菌甲醇提取物的抗氧化活性研究[J]. 菌物學(xué)報(bào),2010,29(1):113-118.

[8]翁榕安,胡勁松,翁詩玉. 水溶性黑柄炭角菌肽的體外抗氧化活性[J]. 湖南中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報(bào),2012,32(3):10-13.

[9]Hung MC,Tsai CC,Hsu TH,et al. Biological activities of the polysaccharides produced from different sources ofXylarianigripes(Ascomycetes),a Chinese medicinal fungus[J]. International Journal of Medicinal Mushrooms,2015,17(2):141-150.

[10]姚珂,范鏡博,張能,等. 薛凡尼氏炭角菌液體培養(yǎng)條件探究及子實(shí)體培養(yǎng)[J]. 食品工業(yè)科技,2015,36(24):190-193.

[11]賀新生. 四川盆地蕈菌圖志[M]. 北京:科學(xué)出版社,2011:52-57.

[12]Lv G,Zhang Z,Pan H,et al. Antioxidant properties of different solvents extracts from three edible mushrooms[C]. 3rd International Conference on Bioinformatics and Biomedical Engineering,Bejing,2009. 1-4

[13]張燕,張洪斌,賀立靜,等. 一點(diǎn)紅不同營養(yǎng)器官中總黃酮和總酚含量測(cè)定[J]. 中國醫(yī)藥導(dǎo)報(bào),2009,6(36):73-75.

[14]羅永會(huì),張翠香,徐春萍,等. 海棠果中總黃酮的含量測(cè)定[J]. 亞太傳統(tǒng)醫(yī)藥,2014,10(9):20-22.

[15]陳智坤,梁呈元,李維林,等. 薄荷不同溶劑提取物抗氧化活性的研究[J]. 食品工業(yè)科技,2013,34(3):100-103.

[16]涂宗財(cái),傅志豐,王輝,等. 紅薯葉不同溶劑提取物抗氧化性及活性成分鑒定[J]. 食品科學(xué),2015,36(17):1-6.

[17]賴紅芳,潘立衛(wèi). 翠云草不同溶劑提取物的抗氧化性[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2015,43(5):307-309.

[18]劉曦,祝連彩,王伯初. 藍(lán)莓葉不同溶劑提取物抗氧化活性研究[J]. 食品工業(yè)科技,2013,34(12):101-105.

[19]Sahreen S,Khan MR,Khan RA. Evaluation of antioxidant activities of various solvent extracts ofCarissaopacafruits[J]. Food Chemistry,2010,122(4):1205-1211.

[20]Tian L,Zhao Y,Guo C,et al. A comparative study on the antioxidant activities of an acidic polysaccharide and various solvent extracts derived from herbalHouttuyniacordata[J]. Carbohydrate Polymers,2011,83(2):537-544.

[21]Arabshahi-Delouee S,Urooj A. Antioxidant properties of various solvent extracts of mulberry(MorusindicaL.)leaves[J]. Food Chemistry,2007,102(4):1233-1240.

[22]Liu SC,Lin JT,Wang CK,et al. Antioxidant properties of various solvent extracts from lychee(LitchichinenesisSonn.)flowers[J]. Food Chemistry,2009,114(2):577-581.

[23]邵雪蓮. 痂狀炭角菌的液體優(yōu)化培養(yǎng)及其生物活性的研究[D]. 福州:福建農(nóng)林大學(xué),2012.

Antioxidant activities of different solvents extracts from mycelium ofXylariaschweinitziiin submerged culture

TIAN Qiang1,WANG Jun1,ZHANG Meng-na1,MA Lin1,2,*,HE Xin-sheng1,2,YUAN Xiao-hong1,2

(1.School of Life Science and Engineering,Southwest University of Science and Technology,Mianyang 621010,China; 2.Engineering Research Center for Biomass Resource Utilizaiton and Modification of Sichuan Province,Mianyang 621010,China)

Four different solvents(ethanol,methanol,acetone and water)were used for extracting the mycelium ofXylariaschweinitzii. The content of total phenolics and total flavonoids in the extracts from different solvents was analyzed and the scavenging capacity of DPPH radical scavenging capacity and total reducing power were determined. The results showed that the different solvent extracts had different antioxidant activity. At the concentration of each extract 2.5 mg/mL,the water extract showed the highest radical scavenging rate(91.8%)on DPPH,followed by 60% acetone extract and 70% ethanol extract,the scavenging rates were 89.6% and 83.6%,and the methanol extract showed the lowest scavenging rate which was(75.0%)on DPPH. The reduction ability of the different solvent extracts was in the order:water>60% ethanol>70% ethanol>60% acetone>methanol. The highest content of total phenolics was found in water extract,but the highest content of total flavonoids was in methanol extract. In conclusion,the antioxidant activity of the aqueous extracts from the mycelium ofXylariaschweinitziiwas significant,which probably has the potential to develop as a food antioxidant.

Xylariaschweinitzii;mycelium;antioxidation;free radical scavenging;total reducing power

2016-09-29

田強(qiáng)(1991-)，男，本科，研究方向：制藥工程，E-mail:1296559811@qq.com。

*通訊作者:馬林(1964-)，男，博士，教授，研究方向：天然產(chǎn)物化學(xué)，E-mail：malin@swust.edu.cn。

國家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(21272189)；國家大學(xué)生創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)訓(xùn)練計(jì)劃(201410619002)。

TS201.2

A

1002-0306(2017)07-0049-05

10.13386/j.issn1002-0306.2017.07.001