陳林建,李朝暉,藍(lán)國(guó)波
(廣東醫(yī)科大學(xué)附屬佛山禪城醫(yī)院,廣東佛山528031)
過(guò)表達(dá)miR-200c對(duì)人髓核細(xì)胞凋亡的影響及其機(jī)制
陳林建,李朝暉,藍(lán)國(guó)波
(廣東醫(yī)科大學(xué)附屬佛山禪城醫(yī)院,廣東佛山528031)
目的 觀察過(guò)表達(dá)miR-200c對(duì)人髓核細(xì)胞(HNPCs)凋亡的影響,并探討其可能的作用機(jī)制。方法 體外培養(yǎng)HNPCs,將HNPCs分為觀察組、陰性組和空白組,觀察組轉(zhuǎn)染hsa-miR-200c mimics,陰性組轉(zhuǎn)染陰性對(duì)照mimics-NC,空白組未經(jīng)任何干預(yù)。轉(zhuǎn)染后24 h,采用real-time PCR法檢測(cè)3組細(xì)胞miR-200c的表達(dá),流式細(xì)胞儀測(cè)算細(xì)胞凋亡率,ELISA平板計(jì)數(shù)法檢測(cè)Caspase3/7活性,Western blotting法檢測(cè)3組細(xì)胞酪氨酸蛋白激酶受體B(TrkB)蛋白。結(jié)果 觀察組、陰性組和空白組細(xì)胞miR-200c相對(duì)表達(dá)量分別為8.11±0.21、1.07±0.04、0.99±0.05,細(xì)胞凋亡率分別為23.6%±3.1%、1.5%±0.2%、1.6%±0.1%,Caspase3/7活性分別為299.237±24.245、119.476±10.657、117.317±11.317,TrkB蛋白相對(duì)表達(dá)量分別為0.48±0.11、0.50±0.12、0.15±0.06,觀察組與陰性組、空白組比較,P均<0.01。結(jié)論 過(guò)表達(dá)miR-200c能夠促進(jìn)HNPCs的凋亡,其機(jī)制可能與調(diào)控TrkB的表達(dá)有關(guān)。
微小RNA-200c;人髓核細(xì)胞;細(xì)胞凋亡;酪氨酸蛋白激酶受體B蛋白
椎間盤退變是脊柱退行性疾病的病理基礎(chǔ),患病率呈逐年上升趨勢(shì)[1]。目前椎間盤退變的具體機(jī)制尚不明確,年齡、生物力學(xué)、機(jī)械因素、炎性因子、基因等多種因素可能參與了此病理過(guò)程?;蛞蛩卦谧甸g盤退變中的作用近年來(lái)受到學(xué)者的廣泛關(guān)注[2~4]。髓核細(xì)胞的凋亡是椎間盤退變發(fā)生的重要機(jī)制[5],導(dǎo)致的髓核細(xì)胞數(shù)量減少是椎間盤退變主要形態(tài)學(xué)改變之一[6],但目前引起髓核細(xì)胞凋亡的具體機(jī)制尚不完全明確。微小RNA(miRNA)是一類存在于生物體中可以調(diào)控基因表達(dá)的內(nèi)源性非
編碼小分子RNA,通過(guò)降解靶基因mRNA或阻止其蛋白翻譯對(duì)靶基因進(jìn)行調(diào)節(jié)[7]。miRNA芯片檢測(cè)技術(shù)發(fā)現(xiàn),退變椎間盤組織中存在著大量異常表達(dá)的miRNA[8,9],影響髓核細(xì)胞的增殖及凋亡,與椎間盤退變密切相關(guān)[10,11]。miR-200c是miR-200家族成員之一,在嚴(yán)重腰椎間盤退變患者腰椎間盤組織中表達(dá)明顯增高[9]。miR-200c在多種細(xì)胞中具有調(diào)節(jié)細(xì)胞凋亡的作用[12~14],但是否影響髓核細(xì)胞的凋亡尚不明確。2015年10月~2016年7月,本研究在體外建立高表達(dá)miR-200c的人髓核細(xì)胞(HNPCs),模擬椎間盤退變患者椎間盤組織中miR-200c的高表達(dá)狀態(tài),觀察過(guò)表達(dá)miR-200c對(duì)HNPCs凋亡的影響,以探討miR-200c在椎間盤退變中可能的作用機(jī)制。
1.1 細(xì)胞與試劑 HNPCs購(gòu)自Scien Cell公司。hsa-miR-200c mimics及陰性對(duì)照mimics-NC均購(gòu)自廣州銳博生物科技公司;逆轉(zhuǎn)錄試劑盒及實(shí)時(shí)熒光定量PCR試劑盒購(gòu)自TaKaRa公司;miR-200c及U6引物由上海吉?jiǎng)P基因公司設(shè)計(jì)合成;TRIzol試劑和Lipofectamine2000均購(gòu)自Invitrogen公司;Apo-ONE Homogeneous Caspase3/7檢測(cè)試劑盒購(gòu)自Promega公司;鼠抗人酪氨酸蛋白激酶受體B(TrkB)、GAPDH單克隆抗體和辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的兔抗鼠IgG均購(gòu)自武漢博士德生物工程有限公司。
1.2 方法
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng)及轉(zhuǎn)染 將HNPCs分為觀察組、陰性組和空白組。將3組HNPCs培養(yǎng)在含10%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)基中,置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中常規(guī)傳代,待細(xì)胞生長(zhǎng)密度達(dá)70%~80%時(shí),按照Lipofectamine2000試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行轉(zhuǎn)染。觀察組轉(zhuǎn)染hsa-miR-200c mimics,陰性組轉(zhuǎn)染mimics-NC,空白組未經(jīng)任何干預(yù)。
1.2.2 各組miR-200c檢測(cè) 采用real-time PCR法。轉(zhuǎn)染后24 h,使用TRIzol試劑從細(xì)胞中提取總RNA,以miR-200c逆轉(zhuǎn)錄引物作為莖環(huán)結(jié)構(gòu)引物進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,取反轉(zhuǎn)錄物進(jìn)行real-time PCR。PCR反應(yīng)條件為95 ℃ 3 min、95 ℃10 s、59 ℃ 30 s,共40個(gè)循環(huán)。miR-200c上游引物:5′-GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAG-3′,下游引物:5′-CGCTAATACTGCCGGGTAATG-3′;內(nèi)參U6上游引物:5′-CTCGCTTCGGCAGCACATTTT-3′,下游引物:5′-AACGCTTCACGAATTTGCGT-3′。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。采用2-ΔΔCt法計(jì)算miR-200c相對(duì)表達(dá)量。
1.2.3 各組細(xì)胞凋亡率測(cè)算 收集轉(zhuǎn)染后24 h各組HNPCs,以不含EDTA的胰酶消化后離心收集細(xì)胞,PBS洗滌細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞密度為(1~5)×105/mL,加入Annexin V-FITC染色,隨后加入PI染色,室溫孵育15 min,上流式細(xì)胞儀檢測(cè),計(jì)算細(xì)胞凋亡率,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.2.4 各組Caspase3/7活性檢測(cè) 將轉(zhuǎn)染后24 h各組細(xì)胞接種于96孔板,室溫解凍100×Caspase底物和Apo-ONE Caspase3/7緩沖液,將底物與緩沖液按試劑盒說(shuō)明書(shū)混合后,每孔加入100 μL的Caspase試劑混合液,搖床輕搖混均30 s,室溫避光孵育2 h,應(yīng)用ELISA平板計(jì)數(shù)器檢測(cè)490 nm細(xì)胞熒光強(qiáng)度。
1.2.5 各組TrkB蛋白檢測(cè) 取轉(zhuǎn)染后24 h各組細(xì)胞,提取細(xì)胞總蛋白,BCA法測(cè)定蛋白樣品濃度。每組取等量蛋白上樣,10% SDS-聚丙烯酰胺凝膠上電泳30 min,室溫5%脫脂牛奶封閉1~2 h,加入適當(dāng)濃度一抗,4 ℃過(guò)夜,次日洗膜后,加入HRP標(biāo)記的二抗,室溫孵育1 h,洗膜后,ECL發(fā)光。用Image J軟件進(jìn)行結(jié)果分析,TrkB蛋白的相對(duì)表達(dá)量以其與管家基因GAPDH灰度值的比值表示。
2.1 各組miR-200c表達(dá)比較 觀察組、陰性組和空白組細(xì)胞miR-200c相對(duì)表達(dá)量分別為8.11±0.21、1.07±0.04、0.99±0.05,觀察組與陰性組、空白組比較,P均<0.01。
2.2 各組細(xì)胞凋亡率比較 觀察組、陰性組和空白組細(xì)胞凋亡率分別為23.6%±3.1%、1.5%±0.2%、1.6%±0.1%,觀察組與陰性組、空白組比較,P均<0.01。
2.3 各組Caspase3/7活性比較 觀察組、陰性組和空白組Caspase3/7活性分別為299.237±24.245、119.476±10.657、117.317±11.317,觀察組與陰性組、空白組比較,P均<0.01。
2.4 各組TrkB蛋白表達(dá)比較 觀察組、陰性組和空白組TrkB蛋白相對(duì)表達(dá)量分別為0.48±0.11、0.50±0.12、0.15±0.06,觀察組與陰性組、空白組比較,P均<0.01。
髓核細(xì)胞在維持椎間盤的完整性方面起著重要的作用,髓核細(xì)胞能夠產(chǎn)生Ⅱ型膠原、蛋白多聚糖和其他細(xì)胞外基質(zhì)成分來(lái)維持椎間盤的完整性。越來(lái)越多的證據(jù)表明,髓核細(xì)胞的凋亡參與了椎間盤退變的發(fā)生、發(fā)展。近年來(lái)研究證實(shí)miRNA廣泛參與蛋白質(zhì)表達(dá)的轉(zhuǎn)錄后調(diào)控,在機(jī)體眾多病理及生理過(guò)程中發(fā)揮著重要的調(diào)節(jié)作用。miRNA參與調(diào)控多個(gè)靶基因,異常表達(dá)會(huì)造成調(diào)控基因的表達(dá)異常,從而參與疾病的發(fā)生、發(fā)展。目前miRNA在許多疾病中的作用機(jī)制已經(jīng)被陸續(xù)研究闡明,但是其在椎間盤退變中的研究尚處于起步階段。
研究報(bào)道,miR-210在退變髓核組織中表達(dá)明顯降低并且通過(guò)靶向HXOA9調(diào)控髓核細(xì)胞的凋亡[10]。miR-138-5p在退變髓核組織中表達(dá)增高,通過(guò)SIRT1/PTEN/PI3K/Akt信號(hào)通路調(diào)控髓核細(xì)胞的凋亡[11]。miR-200c基因簇定位于12號(hào)染色體p13.31,與惡性腫瘤凋亡密切相關(guān)。杜憲紅等[12]發(fā)現(xiàn)CIK細(xì)胞通過(guò)上調(diào)miR-200c促進(jìn)胃癌細(xì)胞的凋亡。朱名毅等[14]報(bào)道,過(guò)表達(dá)miR-200c可以抑制舌癌Tca8113細(xì)胞增殖并誘導(dǎo)癌細(xì)胞的凋亡。Zhao等[9]研究發(fā)現(xiàn),嚴(yán)重腰椎間盤退變患者腰椎間盤組織中miR-200c表達(dá)明顯升高,于是我們推測(cè)miR-200c可能與髓核細(xì)胞的過(guò)度凋亡有關(guān)。為了模擬椎間盤突出患者椎間盤組織中miR-200c的高表達(dá)狀態(tài),本研究采用特異性轉(zhuǎn)染試劑Lipofectamine轉(zhuǎn)染miR-200c mimics進(jìn)入體外培養(yǎng)的HNPCs,real-time PCR法檢測(cè)證實(shí),轉(zhuǎn)染后髓核細(xì)胞中miR-200c表達(dá)量較陰性組和空白組增高,成功在髓核細(xì)胞內(nèi)過(guò)表達(dá)miR-200c。隨后通過(guò)流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)發(fā)現(xiàn),過(guò)表達(dá)miR-200c后髓核細(xì)胞的凋亡率明顯增高,Caspase3/7活性分析進(jìn)一步證實(shí)過(guò)表達(dá)miR-200c后細(xì)胞內(nèi)凋亡相關(guān)活性酶活性明顯增高,提示miR-200c具有促進(jìn)髓核細(xì)胞凋亡的作用。
miRNA的功能主要取決于其下游靶基因的生物學(xué)效應(yīng)。為了進(jìn)一步探討miR-200c調(diào)控髓核細(xì)胞凋亡可能的作用機(jī)制,本研究運(yùn)用生物學(xué)軟件(TargetScan、miRanda)預(yù)測(cè)miR-200c的靶基因可能為神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)性酪氨酸激酶2型受體(NTRK2),NTRK2的3′UTR區(qū)存在與miR-200c的種子序列理論上互補(bǔ)的結(jié)合位點(diǎn)。研究[15]發(fā)現(xiàn),miR-200c在乳腺癌中能夠直接作用于NTRK2,下調(diào)NTRK2促進(jìn)凋亡作用的啟動(dòng),并且通過(guò)實(shí)驗(yàn)證實(shí)上調(diào)NTRK2能有效逆轉(zhuǎn)miR-200c對(duì)乳腺癌細(xì)胞的促凋亡作用。因此結(jié)合預(yù)測(cè)結(jié)果,本研究推測(cè)miR-200c可能調(diào)控NTRK2在髓核組織的退變中起重要作用。NTRK2基因編碼的蛋白質(zhì)稱為TrkB。本研究通過(guò)Western blotting法檢測(cè)證實(shí),在髓核細(xì)胞過(guò)表達(dá)miR-200c后,TrkB蛋白表達(dá)水平明顯降低,說(shuō)明在HNPCs中miR-200c與NTRK2之間存在負(fù)向調(diào)控關(guān)系。NTRK2(TrkB)是腦源性生長(zhǎng)因子受體,是細(xì)胞增殖、分化、凋亡信號(hào)通路中的關(guān)鍵調(diào)控因子,已有研究證實(shí)下調(diào)NTRK2(TrkB)能夠促進(jìn)細(xì)胞的失巢性凋亡[16],并且能夠增強(qiáng)癌細(xì)胞的失巢凋亡敏感性[15]??梢?jiàn)miR-200c可能通過(guò)調(diào)控NTRK2表達(dá)參與椎間盤退變的發(fā)生發(fā)展,有望成為椎間盤退變靶向治療的基因靶點(diǎn)。
綜上可見(jiàn),過(guò)表達(dá)miR-200c能夠促進(jìn)HNPCs的凋亡,其機(jī)制可能與調(diào)控TrkB的表達(dá)有關(guān)。
[1] Vos T, Flaxman AD, Naghavi M, et al. Years lived with disability (YLDs) for 1160 sequelae of 289 diseases and injuries 1990-2010: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2010[J]. Lancet, 2012,380(9859):2163-2196.
[2] Mayer JE, Iatridis JC, Chan D, et al. Genetic polymorphisms associated with intervertebral disc degeneration[J]. Spine J, 2013,13(3):299-317.
[3] Livshits G, Popham M, Malkin I, et al. Lumbar disc degeneration and genetic factors are the main risk factors for low back pain in women: the UK Twin Spine Study[J]. Ann Rheum Dis, 2011,70(10):1740-1745.
[4] Williams FM, Bansal AT, van Meurs JB, et al. Novel genetic variants associated with lumbar disc degeneration in northern Europeans: a meta-analysis of 4600 subjects[J]. Ann Rheum Dis, 2013,72(7):1141-1148.
[5] Roberts S, Evans H, Trivedi J, et al. Histology and pathology of the human intervertebral disc[J]. J Bone Joint Surg Am, 2006, 88 Suppl 2:10-14.
[6] Freemont AJ. The cellular pathobiology of the degenerate intervertebral disc and discogenic back pain[J]. Rheumatology (Oxford), 2009,48(1):5-10.
[7] Bartel DP. MicroRNAs: genomics,biogenesis,mechanism,and function[J]. Cell, 2004,116(2):281-297.
[8] 王濤,馬信龍,張曉林,等.人退變腰椎間盤差異性表達(dá)microRNA的篩選及JNK通路參與椎間盤退變的探討[J].中華骨科雜志,2013,54(7):770-775.
[9] Zhao B, Yu Q, Li H, et al. Characterization of microRNA expression profiles in patients with intervertebral disc degeneration[J]. Int J Mol Med, 2014,33(1):43-50.
[10] Zhang DY, Wang ZJ, Yu YB, et al. Role of microRNA-210 in human intervertebral disc degeneration[J]. Exp Ther Med, 2016,11(6):2349-2354.
[11] Wang B, Wang D, Yan T, et al. MiR-138-5p promotes TNF-α-induced apoptosis in human intervertebral disc degeneration by targeting SIRT1 through PTEN/PI3K/Akt signaling[J]. Exp Cell Res, 2016,345(2):199-205.
[12] 杜憲紅,邢召全,焦晉山,等.miR-200c在CIK細(xì)胞誘導(dǎo)胃癌細(xì)胞凋亡中的作用[J].山東大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版),2013,51(6):49-52.
[13] Venkatadri R, Muni T, Iyer AK, et al. Role of apoptosis-related miRNAs in resveratrol-induced breast cancer cell death[J]. Cell Death Dis, 2016,7:e2104.
[14] 朱名毅,姚金光,劉津,等.miR-200c對(duì)舌癌Tca8113細(xì)胞增殖和凋亡的影響[J].重慶醫(yī)學(xué),2015,44(10):1322-1324.
[15] Howe EN, Cochrane DR, Richer JK. Targets of miR-200c mediate suppression of cell motility and anoikis resistance[J]. Breast Cancer Res, 2011,13(2):R45.
[16] Douma S, Van Laar T, Zevenhoven J, et al. Suppression of anoikis and induction of metastasis by the neurotrophic receptor TrkB[J]. Nature, 2004,430(7003):1034-1039.
廣東省佛山市衛(wèi)生和計(jì)劃生育局醫(yī)學(xué)科研課題(20160148)。
10.3969/j.issn.1002-266X.2017.22.010
R681.5
A
1002-266X(2017)22-0030-03
2016-11-12)