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    荷斯坦牛TLR6基因多態(tài)性分析

    2017-02-27 03:18:35周秀敏李強子畢英杰任衛(wèi)合西北民族大學生命科學與工程學院甘肅蘭州730030
    中國草食動物科學 2017年1期
    關鍵詞:檢測

    周秀敏,李強子,畢英杰,任衛(wèi)合,張 麗(西北民族大學生命科學與工程學院,甘肅 蘭州 730030)

    遺傳育種與繁殖

    荷斯坦牛TLR6基因多態(tài)性分析

    周秀敏,李強子,畢英杰,任衛(wèi)合,張 麗
    (西北民族大學生命科學與工程學院,甘肅 蘭州 730030)

    為研究中國荷斯坦牛TLR6基因的多態(tài)性,確定其等位基因數(shù)以及核苷酸變異位點,探討其遺傳特性,采用PCR-SSCP技術對303頭荷斯坦牛的TLR6基因進行了遺傳多態(tài)性檢測。結果表明:TLR6基因在擴增區(qū)域的209 bp處發(fā)生G→A的錯義突變,導致TLR6蛋白中第70位天冬氨酸(Asp)變?yōu)樘於0罚ˋsn),并產生AA、BB、AB三種基因型,基因型頻率分別為0.214 5、0.122 1和0.663 4,經χ2適合性檢驗,荷斯坦牛在該位點偏離了Hardy-Weinberg平衡狀態(tài)(P<0.05)。說明中國荷斯坦牛TLR6基因多態(tài)性豐富,該位點可以作為荷斯坦??共∮N的分子標記位點。

    荷斯坦牛;TLR6基因;遺傳多態(tài)性

    TLRs是一類比較保守模式識別受體,能在微生物病原體感染機體早期做出免疫應答,是機體天然免疫防御中的重要因子[1],可直接識別病原體的病原相關分子模式(pathogen-associated molecular patterns,PAMPs),進而啟動免疫應答并建立獲得性免疫。TLR6作為TLRs家族一員,通過激活巨噬細胞、單核細胞等抗原遞呈細胞來對病原體做出免疫應答[2]。Vikki等[3]研究表明,TLR6不能直接識別病原體,而是作為輔助因子增強TLR2對某些病原體PAMPs的識別。研究發(fā)現(xiàn),TLR6基因位于牛的第6號染色體上,包含2個外顯子和1個內含子[4]。李強子等[5]通過對TLR6基因生物信息學分析表明,該基因能對牛的抗病力和生產性能起作用。而TLR6基因也是奶牛乳房炎抗性相關的候選基因[6]。

    近年來,國內對荷斯坦牛TLRs的研究大部分集中在TLR2和TLR4上,而對于TLR6的研究僅見儲明星[6]的相關研究。本實驗通過PCR-SSCP技術對荷斯坦牛TLR6基因進行多態(tài)性分析,旨在豐富荷斯坦牛TLR6基因庫,并為抗病性基因的篩選提供分子理論資料。

    1 材料和方法

    1.1 樣品采集及基因組DNA提取

    血樣采自寧夏賀蘭山奶業(yè)有限公司的303頭中國荷斯坦牛,用醫(yī)用采血管尾靜脈采血10mL,-20℃保存。采用苯酚-氯仿抽提法,從備用凍存血液樣本中提取總基因組DNA,去離子水溶解稀釋,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2 引物設計與PCR-SSCP

    根據GenBank中已公布的荷斯坦牛TLR6基因的mRNA序列(登錄號:NM_001001159),用Primer6.0軟件設計1對特異性引物,用于擴增荷斯坦牛TLR6基因序列。引物序列為:F:5′-CAACTTGACCCAACTGAAT-3′;R:5′-TTGTAAGCACGCTAAACTA-3′,引物由大連寶生物公司合成,擴增片段為241 bp。PCR擴增體系總體積為20μL:基因組DNA模板2μL,上下游引物各1μL,Taq PCRMasterMix 10μL,ddH2O 6μL。PCR擴增程序:95℃預變性3min;95℃變性30 s,60℃退火30 s,72℃延伸30 s,35個循環(huán);72℃延伸10min,4℃保存,并采用1%瓊脂糖凝膠對其進行擴增結果檢測。

    取3μL的PCR產物,加入7μL變性上樣緩沖液(0.025%溴酚藍、98%去離子甲酰胺、10mmol/L EDTA、0.025%二甲苯氰),98℃變性10min后再立即冰浴10 min。將變性后的PCR產物點樣至10%的非變性聚丙烯酰胺凝膠上(Acr∶Scr=39∶1),160V電壓室溫電泳2~3 h。結束后用銀染法染色,確定PCR產物的基因型。PCR擴增產物經過SSCP確定基因型后,用試劑盒回收,對于純合子PCR產物送北京華大公司測序。對于雜合子個體,則參照Hu等[7]介紹的方法處理。

    1.3 統(tǒng)計分析

    使用BioEdit和Lasergene軟件分析測序峰圖并判斷突變位點及突變方式。利用Popgene32軟件計算出TLR6基因不同突變位點的等位基因頻率、基因型頻率、有效等位基因數(shù)(Ne)、遺傳雜合度(He)和多態(tài)信息含量(PIC),并對該位點基因型進行Hardy-Weinberg平衡檢驗及核苷酸序列的比對分析。

    2 結果與分析

    2.1 中國荷斯坦牛TLR6基因PCR擴增

    對303頭荷斯坦牛的DNA樣品擴增后,經1%瓊脂糖凝膠(100V,30min)電泳檢測后均得到一條如圖1所示的特異性好、條帶清晰、長度約241 bp的PCR產物,且與預期目的片段大小一致??梢杂糜赟SCP檢測。

    圖1 荷斯坦牛TLR6基因PCR擴增產物檢測結果

    2.2 中國荷斯坦牛TLR6基因PCR-SSCP檢測及序列測定分析

    荷斯坦牛TLR6基因擴增序列區(qū)域共檢測到2種等位基因A和B,形成AA、BB、AB三種基因型(圖2),其中等位基因A和B均具有純合型個體。PCR產物純化后的測序結果顯示,擴增片段長度為241 bp,在GenBank中基因引物擴增區(qū)域核苷酸序列與牛TLR6基因序列的同源性為97%以上,這表明擴增產物的確為荷斯坦牛TLR6基因,而不是其他的TLR6基因。與普通牛TLR6基因(GenBank no.NM_001001159)序列對比發(fā)現(xiàn),在擴增區(qū)域的209 bp處發(fā)生了堿基G→A的堿基突變(如圖3),使編碼蛋白質的氨基酸由酸性天冬氨酸(Asp)變?yōu)闃O性中性天冬酰胺(Asn)(如圖4)。

    圖2 荷斯坦牛TLR6基因第3外顯子部分序列PCR產物SSCP檢測結果

    圖3 荷斯坦牛和普通牛TLR6等位基因序列比對

    圖4 荷斯坦牛和普通牛TLR6基因氨基酸序列比對

    2.3 遺傳參數(shù)分析

    統(tǒng)計分析結果表明,等位基因A和B的頻率分別為0.546 2和0.453 8,基因型AA、BB和AB的頻率分別為0.214 5、0.122 1和0.663 4。有效等位基因數(shù)(Ne)、遺傳雜合度(He)、純合度(Ho)和多態(tài)信息含量(PIC)分別為1.983 1、0.663 4、0.336 6和0.372 9。PIC介于0.25和0.5之間,屬中度多態(tài)。經χ2適合性檢測表明,荷斯坦牛在該位點已偏離Hardy-Weinberg平衡狀態(tài)(P<0.05)。

    3 討論

    近年來,國內外對TLR6基因的多態(tài)性報道相對較少。Kesh等[8]和Pierik等[9]在人的TLR6基因中共發(fā)現(xiàn)了4個SNPs。Opsal等[10]在挪威紅牛TLR6基因中發(fā)現(xiàn)了1個SNP。Shinkai等[11-12]在豬的TLR6基因中發(fā)現(xiàn)了11個SNPs。儲明星等[6]在荷斯坦牛TLR6基因中檢測到6個SNPs。魏麟等[13]在豬的TLR6基因中檢測到1個SNPs。Xiao[14]等在廣東人TLR6基因中發(fā)現(xiàn)了1個SNPs。

    本研究在中國荷斯坦牛TLR6基因擴增序列區(qū)域檢測到G→A錯義突變,引起第70位非極性酸性天冬氨酸(Asp)變?yōu)闃O性中性天冬酰胺(Asn)。蛋白質的結構決定其功能,由于編碼蛋白質活性中心的大多數(shù)氨基酸殘基為非極性的疏水氨基酸,這些小基團位置的變化,很有可能改變該蛋白質的活性中心構象,甚至空間構象,因而會進一步影響其功能的發(fā)揮。但該研究中兩處發(fā)生替換的氨基酸的極性水平發(fā)生了改變,有可能導致其編碼蛋白質的高級結構發(fā)生改變,進而使荷斯坦牛的信號轉導、脅迫應答和免疫應答等的生理功能發(fā)生改變。

    在遺傳多態(tài)性分析中,可以將有效等位基因數(shù)(Ne)、遺傳雜合度(He)和多態(tài)信息含量(PIC)作為衡量某群體遺傳變異大小的指標,其中指標數(shù)值越大,遺傳變異越高,選擇的潛力就越大。該荷斯坦牛群體在該位點表現(xiàn)為中度多態(tài)(0.25<PIC<0.5),該突變位點已偏離Hardy-Weinberg平衡狀態(tài)(P<0.05),說明群體的遺傳變異較大,受到的選擇壓力相對較大,因此該位點可以作為荷斯坦牛泌乳性狀的分子標記位點。

    [1]Buwitt-Beckmann U,Heine H,Wiesmüller K H,et al.TLR1-and TLR6-independent recognition of bacterial lipopeptides[J].Journal of BiologicalChemistry,2006,281(14):9049-9057.

    [2]Jack C S,Arbour N,Manusow J,et al.TLR signaling tailors innate imune responses in humanmicrogliaand astrocytes[J].The Journalof Immunology,2005,175(7):4320-4330.

    [3]Abrahams V M,Aldo P B,Murphy S P,et al.TLR6 modulates first trimester trophoblast responses to peptidoglycan[J].The Journal of Immunology,2008,180(9):6035-6043.

    [4]McGuire K,JonesM,Werling D,etal.Radiation hybridmapping of all 10 characterized bovine Toll-like receptors[J].Animal Genetics,2006,37(1):47-50.

    [5]李強子,朱國強,劉吳鑫,等.荷斯坦牛TLR6基因CDS區(qū)的生物信息學分析[J].江蘇農業(yè)學報,2016,32(3):608-614.

    [6]儲明星,李春苗,石萬海,等.荷斯坦母牛TLR6基因多態(tài)性及其與體細胞評分關系的研究[J].畜牧獸醫(yī)學報,2009,40(11):1621-1629.

    [7]Hu J,Zhou H,Smyth A,et al.Polymorphism of the bovine ADRB3 gene[J].Molecular Biology Reports,2010,37(7):3389-3392.

    [8]Kesh S,Mensah N Y A A,Pelerlongo P,et al.TLR1 and TLR6 polymorphisms are associated with susceptibility to invasive aspergillosis after allogeneic stem cell transplantation[J].Annals of theNew York Academy ofSciences,2005,1062(1):95-103.

    [9]Pierik M,Joossens S,Van Steen K,et al.Toll-like receptor-1,-2,and-6 polymorphisms influence disease extension in inflammatory boweldiseases[J].Inflamm BowelDis,2006,12(1):1-8.

    [10]Opsal M A,V?ge D I,Hayes B,et al.Genomic organization and transcript profiling of the bovine toll-like receptor gene cluster TLR6-TLR1-TLR10[J].Gene,2006,384:45-50.

    [11]ShinkaiH,Muneta Y,Suzuki K,etal.Porcine Toll-like receptor 1,6,and 10 genes:complete sequencing of genomic region and expression analysis[J].Mol Immunol,2006,43(9):1474-1480.

    [12]Shinkai H,Tanaka M,Morozumi T,et al.Biased distribution of single nucleotide polymorphisms(SNPs)in porcine Toll-like receptor 1(TLR1),TLR2,TLR4,TLR5,and TLR6 genes[J].Immunogenetics,2006,58(4):324-330.

    [13]魏麟,陳斌,黎曉英,等.豬TLR6基因Msp I多態(tài)性與生長性狀相關性研究[J].中國農學通報,2011,27(11):5-9.

    [14]XiaoW J,Gong Y X,Liu ZH,etal.Singlenucleotide polymorphisms and haplotypes of TLR6 gene in Chinese Cantonese population[J]. International Journalof Immunogenetics,2010,37(4):245-251.

    Polym orphism of TLR6Gene in Chinese Holstein Cattle

    Zhou Xiumin,LiQiangzi,Zhang Li,etal
    (Collegeof Life Scienceand Engineering,NorthwestUniversity forNationalities,Lanzhou 730030,China)

    Inorder tostudy thepolymorphism of TLR6gene in Holstein cattle,theblood samplesof303Holstein cattleweredetected bypolymerasechain reaction-singlestrand conformation polymorphism(PCR-SSCP).The resultsshowed thattherewasamissense mutation ofG to A in the TLR6 gene,which led to the change ofaspartic acid to asparagine in the TLR6 protein,producing three genotypes(AA,BB,AB)with the frequenciesof0.2145,0.122 1and 0.663 4 respectively.Theχ2testindicated thatthegeneat this sitedeviated from Hardy-Weinbergequilibrium(P<0.05).Itwasconcluded that thepolymorphism of TLR6 genewas rich and the locuscould beused asamolecularmarker for resistancebreedingofHolstein cattle.

    Holstein cattle;TLR6 gene;polymorphism

    S826.2

    A

    2095-3887(2017)01-0001-03

    10.3969/j.issn.2095-3887.2017.01.001

    2016-10-30

    西北民族大學引進人才科研項目(xbmuyjrc201316);西北民族大學生命科學與工程學院眾創(chuàng)空間扶持項目

    周秀敏(1996-),女,在讀本科生。

    作者通信:張麗,Email:shiningstar2013@sina.cn

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