李涌泉,楊惠珍,任玉娟,吳 昊,井維鑫,王 蘭
(山西大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,山西太原030006)
鎘對背角無齒蚌外套膜細胞凋亡相關(guān)酶活性和細胞結(jié)構(gòu)的影響
李涌泉,楊惠珍,任玉娟,吳 昊,井維鑫,王 蘭
(山西大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,山西太原030006)
應(yīng)用酶學(xué)和組織顯微技術(shù),研究了鎘(Cd)對背角無齒蚌(Anodonta woodiana)外套膜組織中細胞凋亡相關(guān)酶Caspase-3,8,9活性、H2O2含量和組織細胞超微結(jié)構(gòu)的影響。結(jié)果顯示,與對照組相比,隨著Cd質(zhì)量濃度的增加,外套膜Caspase-3活性表現(xiàn)為先降低后顯著升高的趨勢(P<0.05);Caspase-8活性呈現(xiàn)逐漸升高,差異顯著(P<0.05);Caspase-9活性在低質(zhì)量濃度和高質(zhì)量濃度組顯著降低,但中高質(zhì)量濃度組顯著升高(P<0.05)。隨著Cd質(zhì)量濃度的增加,外套膜中H2O2含量呈現(xiàn)逐漸增高的趨勢,差異顯著(P<0.05)。當(dāng)Cd質(zhì)量濃度為16.86 mg/L時,外套膜組織細胞結(jié)構(gòu)的變化明顯;細胞核染色質(zhì)不規(guī)則凝聚、固縮和邊集,核膜破裂;線粒體腫脹、嵴數(shù)量減少、空泡化比較嚴(yán)重;微絨毛排列雜亂、大部分?jǐn)嗔巡⑶铱张莼瘒?yán)重。當(dāng)Cd質(zhì)量濃度為67.45 mg/L時,外套膜組織細胞損傷更加明顯;染色質(zhì)大部分凝聚、固縮和邊集,核膜嚴(yán)重腫脹并破裂;粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)板層狀結(jié)構(gòu)解體后形成許多大小不同的小泡。研究表明,外套膜在酶活性和組織細胞結(jié)構(gòu)上對鎘的反應(yīng)較快且更具規(guī)律性,而且具有明顯的劑量效應(yīng)關(guān)系。
背角無齒蚌;外套膜;半胱氨酸蛋白酶;細胞結(jié)構(gòu);鎘
雙殼貝類分布廣泛、活動范圍局限、對多種污染物具有一定的耐受性,其非常適合反映水體環(huán)境和底泥中重金屬的污染狀況[13-15],是理想的污染物指示生物。背角無齒蚌(Anodonta woodiana)廣泛分布于我國淡水水域中,作為“淡水貝類觀察體系”的指示生物[16],直接受到水域和底泥中重金屬的污染,可以有效地反映水域重金屬污染的狀況[17-18]。目前,已經(jīng)開展了關(guān)于背角無齒蚌生態(tài)和代謝生理[19]、重金屬蓄積和元素分布[20-21]、礦質(zhì)元素和氨基酸含量[22]、機體抗氧化系統(tǒng)酶活性[23]等方面的研究工作。
本試驗就鎘對背角無齒蚌外套膜的細胞凋亡相關(guān)酶和組織超微結(jié)構(gòu)的影響進行了研究,旨在闡明鎘對背角無齒蚌的毒性影響程度,為進一步篩選適合淡水水域重金屬污染和評價的指示生物提供科學(xué)依據(jù)。
1.1 試驗動物
背角無齒蚌(簡稱“河蚌”)購自太原市五龍口水產(chǎn)品批發(fā)市場,置實驗室水族箱(50 cm×30 cm× 30 cm)中養(yǎng)殖14 d后備用。期間每隔3 d換水一次,隔1d喂食一次。養(yǎng)殖用水曝氣48h,水溫為(20± 2)℃,pH值為7.5±0.3,溶氧量為(8±1)mg/L。
1.2 試驗設(shè)計
根據(jù)Cd對河蚌96h的LC50(134.9mg/L)的1/2,1/4,1/8,1/16,設(shè)置了8.43,16.86,33.72,67.45 mg/L共4個染毒組,同時設(shè)置一個對照組,處理時間96 h。選擇個體大小基本一致的個體(體質(zhì)量為(48.0±4.0)g,殼長為(6.8±0.3)cm)置處理缸(50 cm×35 cm×20 cm)中,每缸10只。處理期間不喂食、不換水,定時檢查蚌體存活情況。
1.3 試劑及儀器
3.1 VBAC形成的背景 疤痕子宮患者再次妊娠是選用陰道分娩還是選用剖宮產(chǎn),一直是一個爭議的話題。傳統(tǒng)意見[12]認為“一次剖宮產(chǎn),永遠剖宮產(chǎn)”,而選擇陰道分娩方式風(fēng)險極大;傳統(tǒng)醫(yī)療條件比較差,疤痕子宮患者再次妊娠分娩時容易出現(xiàn)子宮破裂現(xiàn)象,因此大部分產(chǎn)婦通常選擇剖宮產(chǎn)方式進行分娩。然而隨著產(chǎn)科醫(yī)生操作水平的不斷提高,當(dāng)代產(chǎn)科技術(shù)的不斷進步,手術(shù)、抗菌藥物與麻醉技術(shù)不斷更新,使子宮切口得到明顯改善,疤痕子宮患者再次妊娠采用陰道分娩的子宮破裂率并未增加。
試劑:氯化鎘(CdCl2·2.5H2O)、氯化鈉(NaCl),均為分析純;Caspase-3,8,9活性及蛋白質(zhì)含量測定試劑盒,購于碧云天生物技術(shù)研究所。H2O2含量測定試劑盒,購于南京建成生物研究所。
儀器設(shè)備:多功能酶標(biāo)儀(MD SpectraMax M5)、透射電子顯微鏡(JEM-1011)、冷凍離心機(Eppendorf5804R)、樣品處理制備系統(tǒng)(MP Fastprep-24)。
1.4 樣品制備及酶活性和超微結(jié)構(gòu)的測定方法
Cd(0,8.43,16.86,33.72,67.45 mg/L)處理96 h后,活體解剖河蚌取外套膜,濾紙吸凈表面水分,稱量后置-80℃冰箱中備用。試驗時取約25 mg組織,加入250 μL裂解液后勻漿,按照Caspase-3,8,9活性、H2O2含量試劑盒說明書實驗步驟操作。蛋白含量測定采用Bradford方法,并按照蛋白質(zhì)含量測定試劑盒說明書實驗步驟操作。
Cd(0,16.86,67.45 mg/L)處理96 h后,取河蚌解剖取外套膜,濾紙吸凈表面水分后取3~5塊組織塊(約1 mm3),置于2%戊二醛(體積分?jǐn)?shù))中固定2 h,二甲胂酸鈉緩沖液沖洗2次,再用1%鋨酸(體積分?jǐn)?shù))固定。乙醇和丙酮梯度脫水,Epon618環(huán)氧樹脂包埋,超薄切片機切片(切片厚度為50~70 nm),醋酸鈾-檸檬酸鉛雙重染色,透射電鏡觀察并拍照。
1.5 數(shù)據(jù)處理
試驗結(jié)果所得數(shù)據(jù)采用SPSS 15.0軟件包的單因素方差分析(One-Way ANOVA)進行處理分析;顯著性檢驗通過LSD法進行比較;所得結(jié)果均為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD);*表示P<0.05下顯著差異。
2.1 鎘脅迫對背角無齒蚌外套膜Caspase-3,8,9活性及H2O2含量的影響
圖1-a結(jié)果顯示,與對照組相比,隨著Cd質(zhì)量濃度的升高,外套膜中Caspase-3活性呈現(xiàn)出低質(zhì)量濃度Cd脅迫下顯著降低(8.43 mg/L,P<0.05),中高質(zhì)量濃度Cd下活性逐漸升高(33.72 mg/L,P<0.05),高質(zhì)量濃度Cd下活性回落(67.45 mg/L)。當(dāng)Cd質(zhì)量濃度為33.72 mg/L時,Caspase-3活性達到最大值。
從圖1-b可以看出,隨著Cd質(zhì)量濃度的升高,外套膜中Caspase-8活性顯現(xiàn)出在中高質(zhì)量濃度Cd下逐漸增高的趨勢,與對照組相比增高顯著(16.86,33.72,67.45 mg/L,P<0.05)。當(dāng)Cd質(zhì)量濃度為67.45 mg/L時,Caspase-8活性達到最大值。
由圖1-c可知,與對照組相比,隨著Cd質(zhì)量濃度的升高,外套膜中Caspase-9活性在低質(zhì)量濃度和高質(zhì)量濃度Cd下顯著下降(8.43,67.45 mg/L,P<0.05),中高質(zhì)量濃度Cd下活性顯著升高(16.86,33.72 mg/L,P<0.05)。當(dāng)Cd質(zhì)量濃度為33.72 mg/L時,Caspase-9活性達到最大值。
圖1-d結(jié)果顯示,隨著Cd質(zhì)量濃度的升高,外套膜中H2O2含量呈逐漸增高的趨勢,與對照組相比差異顯著(P<0.05)。當(dāng)Cd質(zhì)量濃度67.45 mg/L時,H2O2含量達到最大值。
2.2 鎘對背角無齒蚌外套膜組織細胞亞顯微結(jié)構(gòu) 的影響
從圖2-A~C可以看出,對照組外套膜組織細胞結(jié)構(gòu)清晰完整,細胞表面微絨毛豐富且排列規(guī)則;細胞核結(jié)構(gòu)完整,近圓形或卵圓形,核膜清晰規(guī)則,染色質(zhì)分布均勻;線粒體呈圓形或橢圓形,形態(tài)正常,嵴豐富且規(guī)則排列;高爾基體和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)形態(tài)正常。
從圖2-D~E可以看出,16.82 mg/L Cd處理96 h后,對外套膜組織細胞結(jié)構(gòu)影響較大;細胞體積縮小,細胞內(nèi)空泡化嚴(yán)重;細胞表面微絨毛排列不整齊,空泡化嚴(yán)重,大部分脫落并逐漸減少和消失;細胞核形狀不規(guī)則,核膜腫脹內(nèi)陷并有破裂現(xiàn)象,染色質(zhì)致密濃縮并呈新月形或戒指狀邊集結(jié)于核膜上,部分染色質(zhì)出芽形成指狀結(jié)構(gòu);線粒體形態(tài)異常,部分線粒體嵴數(shù)量減少且排列不整齊,腫脹變形且空泡化比較嚴(yán)重;核周圍出現(xiàn)大量溶酶體,并有增大現(xiàn)象,內(nèi)含很多沉積物。
圖2-F~G結(jié)果顯示,67.45 mg/L Cd處理96 h后,外套膜組織細胞結(jié)構(gòu)損傷嚴(yán)重,細胞形態(tài)畸形,細胞膜消失,細胞內(nèi)空泡化非常嚴(yán)重;細胞核形態(tài)嚴(yán)重變形,核膜水腫嚴(yán)重、折疊內(nèi)陷并破裂,染色質(zhì)嚴(yán)重濃縮并靠近核膜、出芽裂解成核碎片,形成凋亡小體;線粒體嵴模糊并消失,腫脹且空泡化嚴(yán)重;板層狀結(jié)構(gòu)粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)解體,形成許多大小不同的小泡,表面附著核糖體;大部分細胞器消失,細胞內(nèi)容物外泄。
半胱氨酸蛋白酶(Caspase)家族是一組特異性切割天冬氨酸的蛋白酶,在細胞凋亡進程中發(fā)揮著至關(guān)重要的作用,是細胞凋亡通路的匯聚點和執(zhí)行凋亡的最終途徑。Caspase在細胞凋亡過程中扮演著2類角色,一類為起始者Caspase,在細胞凋亡早期被活化后發(fā)揮作用;另一類為執(zhí)行者Caspase,在細胞凋亡后期被活化后起凋亡執(zhí)行作用[24]。Caspase-8和Caspase-9屬于起始者Caspase,而Caspase-3屬于執(zhí)行者Caspase。Caspase-3是細胞凋亡過程中最主要的執(zhí)行者Caspase,在細胞凋亡網(wǎng)絡(luò)中居于中心位置[25]。通常情況下,Caspase-3以無活性酶原形式分布于細胞質(zhì)和線粒體基質(zhì)中,可以被Caspase-8和Caspase-9通過凋亡信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路而激活。Caspase-3被活化后,隨即觸發(fā)下游細胞凋亡鏈?zhǔn)椒磻?yīng),使細胞凋亡不可避免發(fā)生[26]。
有研究表明,在Cd誘導(dǎo)發(fā)生的細胞凋亡過程中,Caspase-3是關(guān)鍵的細胞凋亡效應(yīng)分子[27]。典型環(huán)境污染物與生物脅迫課題組前期研究顯示,Cd可以顯著誘導(dǎo)河南華溪蟹鰓和肝胰腺組織中Caspase-3活性[11,28]。本研究結(jié)果顯示,外套膜中Caspase-3活性在低質(zhì)量濃度Cd(8.43 mg/L)處理后顯著降低;中質(zhì)量濃度Cd(33.72 mg/L)處理后活性顯著升高,Caspase-3活性在一定Cd質(zhì)量濃度范圍內(nèi)呈現(xiàn)出了明顯的劑量-效應(yīng)關(guān)系。這與河南華溪蟹鰓和肝胰腺組織中Caspase-3活性的變化規(guī)律有相同之處,也有區(qū)別性。
細胞凋亡經(jīng)典的途徑有2條,分別為細胞表面死亡受體途徑和線粒體引發(fā)途徑[29]。Caspase-8在細胞表面死亡受體途徑中起到至關(guān)重要的作用,Caspase-8酶原前體通過細胞膜死亡受體作用,自我水解活化形成活化態(tài)Caspase-8,隨即激活Caspase-3觸發(fā)細胞凋亡發(fā)生[30]。Caspase-9在Caspase依賴性線粒體引發(fā)凋亡途徑中發(fā)揮中心作用,細胞色素C與凋亡蛋白酶激活因子-1(Apaf-1)及Caspase-9前體形成凋亡體,隨即Caspase-9前體自剪切活化后激活Caspase-3觸發(fā)細胞凋亡發(fā)生[31-32]。本試驗結(jié)果表明,外套膜中Caspase-9活性在低質(zhì)量濃度和高質(zhì)量濃度Cd(8.43,67.45 mg/L)下顯著下降;中高質(zhì)量濃度Cd(16.86,33.72 mg/L)下活性顯著升高,變化規(guī)律與Caspase-3活性基本保持一致。有研究表明,在Cd致小鼠肝臟組織細胞凋亡和Cd致河南華溪蟹肝胰腺組織細胞凋亡中,Caspase-9和Caspase-3活性變化表現(xiàn)出了高度的一致性[11,33],本試驗結(jié)果與之相似。揭示Cd致河蚌外套膜組織細胞凋亡途徑可能是通過線粒體引發(fā)途徑實現(xiàn)的。在中、高質(zhì)量濃度Cd處理組,與對照組相比,外套膜中Caspase-8活性呈現(xiàn)出逐步顯著增高的趨勢,這與前者的研究結(jié)果不同,顯示了物種的差異性。
有研究表明,Cd誘導(dǎo)引起的細胞凋亡與氧化損傷密切相關(guān)[34],ROS在細胞凋亡早期發(fā)揮一定的作用,并可引起線粒體膜電位去極化[35-36]。其中,H2O2可以促使T淋巴細胞中細胞色素C釋放和激活Caspase酶原而引發(fā)細胞凋亡[35],誘導(dǎo)細胞凋亡因子Fas和FasL在腸上皮細胞中的表達,以觸發(fā)細胞凋亡[37]。本試驗結(jié)果顯示,外套膜中H2O2含量隨Cd質(zhì)量濃度的增加而呈現(xiàn)出逐步顯著增高的趨勢,這與Cd致河南華溪蟹鰓組織中H2O2含量的變化規(guī)律相似[26]。同時,生物有機體為了拮抗氧化脅迫,會通過過量表達抗氧化酶來降低氧化損傷。有研究也證實,Cd在96 h可以顯著誘導(dǎo)河蚌外套膜中SOD,CAT和GPX活性以應(yīng)對氧化損傷,以消除組織中過量的H2O2[38]。
Caspase酶原被激活后,尤其是Caspase-3活化后可以通過酶解細胞凋亡抑制因子,裂解細胞外基質(zhì)和細胞骨架及蛋白,酶解遺傳物質(zhì)修復(fù)因子,從而使細胞功能和形態(tài)發(fā)生一定的變化,包括細胞體積縮小,細胞質(zhì)固縮,細胞器變形消失,細胞之間裂解分離,染色質(zhì)凝聚及核碎裂等[39]。本試驗結(jié)果表明,Cd在一定質(zhì)量濃度范圍內(nèi)激活了Caspase酶活性,同時,致使外套膜組織細胞結(jié)構(gòu)發(fā)生了不同程度的變化,表現(xiàn)出了細胞凋亡的細胞形態(tài)特征;細胞體積縮小,細胞內(nèi)空泡化嚴(yán)重;微絨毛脫落消失;核膜水腫并折疊內(nèi)陷,染色質(zhì)嚴(yán)重濃縮并出芽裂解;線粒體嵴模糊并腫脹,空泡化嚴(yán)重。與已有的研究結(jié)果相似[11,28]。
Cd誘導(dǎo)的細胞凋亡包括Caspase依賴型[36]和Caspase非依賴型途徑[40],有研究顯示,Cd致使有機體產(chǎn)生氧化損傷后,產(chǎn)生過量的ROS,在激活Caspase酶活性的同時也表現(xiàn)出了典型的細胞凋亡特征[41]。本試驗結(jié)果表明,Cd促使外套膜組織中H2O2顯著增加,Caspase-3,Caspase-8和Caspase-9活性在一定程度上也顯著升高,并表現(xiàn)了細胞凋亡的細胞形態(tài)特征。也有研究發(fā)現(xiàn),H2O2可以通過Caspase依賴型途徑促使細胞凋亡發(fā)生[35]。雖然,Cd不能直接導(dǎo)致有機體組織氧化損傷和細胞凋亡,但是Cd可以通過誘導(dǎo)的ROS-caspase級聯(lián)反應(yīng)-細胞凋亡信號通路觸發(fā)凋亡[26]。因此,推測Cd處理河蚌后,Caspase依賴型途徑觸發(fā)的凋亡發(fā)生于河蚌外套膜組織中。H2O2作為活性氧自由基,一方面加重了外套膜組織的氧化損傷;另一方面可以作為信號分子激活Caspase酶活性并觸發(fā)細胞凋亡。
綜上所述,在Cd急性處理河蚌96 h后,外套膜受到氧化脅迫以后,產(chǎn)生大量的活性氧H2O2,并引發(fā)Caspase-3,Caspase-8和Caspase-9活性在一定程度顯著升高,觸發(fā)組織細胞發(fā)生凋亡,并表現(xiàn)出典型的細胞凋亡形態(tài)特征。同時,推測Cd致河蚌外套膜組織細胞凋亡可能是通過線粒體引發(fā)途徑實現(xiàn)的,Cd可以通過誘導(dǎo)ROS引起caspase級聯(lián)反應(yīng)后觸發(fā)細胞凋亡。至于更詳細的凋亡機制,仍需要后續(xù)進一步深入研究。
[1]Campbell P G C.Cadmium-a priority pollutant[J].Environmental Chemistry,2006,3(6):387-388.
[2]Burger J.Assessment and management of risk to wildlife from cadmium[J].Science ofthe Total Environment,2008,389(1):37-45.
[3]Kalman J,Riba I,Del-Valls T A,et al.Comparative toxicity of cadmium in the commercial fish species Sparus aurata and Solea senegalensis[J].Ecotoxicology and Environmental Safety,2010,73(3):306-311.
[4]Roesijadi G,Robinson W.Metal regulation in aquatic animals:mechanisms of uptake,accumulation and release[M]//Malins D C,Ostrander G K.Aquatic Toxicology-Molecular,Biochemical and Cellular Perspectives.London:Lewis Publishers,1994:387-420.
[5]Bertin G,Averbeck D.Cadmium:cellular effects,modifications of biomolecules,modulation of DNA repair and genotoxic consequences[J].Biochimie,2006,88(11):1549-1559.
[6]Levesgue H M,Dorval J,Hontela A,et al.Hormonal,morphological,and physiological responses of yellow perch(Perca flavescens)to chronic environmental mental exposures[J].Journal ofToxicologyand Environmental Health,2003,66(7):657-676.
[7]張海棠,劉璽,劉耀東,等.動物性食品鎘離子污染及其毒性作用[J].山西農(nóng)業(yè)科學(xué),2008,36(12):123-126.
[8]宇克莉,孟慶敏,鄒金華.鎘對玉米幼苗生長、葉綠素含量及細胞超微結(jié)構(gòu)的影響[J].華北農(nóng)學(xué)報,2010,25(3):118-123.
[9]Wang L,Xu T,Lei W W,et al.Cadmium-induced oxidative stress and apoptotic changes in the testis of freshwater crab,Sinopotamon henanense[J].PLoS ONE,2011,6(11):e27853.doi:10.1371/journal.pone.0027853.
[10]Cao L,Huang W,Shan X J,et al.Tissue-specific accumulation of cadmium and its effects on antioxidative responses in Japanese flounder juveniles[J].Environmental Toxicologyand Pharmacology,2012,33(1):16-25.
[11]Liu D M,Yan B,Yang J,et al.Mitochondrial pathway of apoptosis in the hepatopancreas of the freshwater crab Sinopotamon yangtsekiense exposed tocadmium[J].Aquat Toxicol,2011,105(3/4):394-402.
[12]Filipi? M.Mechanisms of cadmium induced genomic instability[J]. Mutation Research,2012,733(1/2):69-77.
[13]Viarengo A,Lowe D,Bolognesi C,et al.The use of biomarkers in biomonitoring:A 2-tier approach assessing the level of pollutantinduced stress syndrome in sentinel organisms[J].Comp BiochemPhysiol CToxicol Pharmacol,2007,146(3):281-300.
[14]Pellerin J,Amiard J C.Comparison of bioaccumulation of metals and induction of metallothioneins in two marine bivalves(Mytilus edulis and Mya arenaria)[J].Comparative Biochemistryand Physiology,2009,150(2):186-195.
[15]潘魯青,劉娜,王靜.櫛孔扇貝在B[a]P脅迫下生物標(biāo)志物篩選的研究[J].水生生物學(xué)報,2012,36(2):1-8.
[16]Yang J,Harino H,Liu H,et al.Monitoring the organotin contamination in the Taihu Lake of China by Bivalve mussel Anodonta woodiana[J].Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology,2008,81(2):164-168.
[17]Liu H,Yang J,Gan J.Trace element accumulation in bivalve mussels Anodonta woodiana from Taihu lake,China[J].Archives of EnvironmentalContamination and Toxicology,2010,59(4):593-601.
[19]溫曉蔓,孫陸宇,禹娜,等.溫度和鹽度對背角無齒蚌(Anodonta woodiana)代謝的影響[J].復(fù)旦學(xué)報:自然科學(xué)版,2011,50(5):632-639.
[20]Li YQ,YangH Z,Liu N,et al.Cadmiumaccumulation and metallothionein biosynthesis in cadmium-treated freshwater mussel Anodonta woodiana[J].PLoS ONE,2015,10(2):e0117037.doi: 10.1371/journal.pone.0117037.
[21]李威,楊健,陳修報,等.背角無齒蚌組織中的元素分布研究[J].農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報,2010,29(3):597-603.
[22]馬明碩,陳修報,蘇彥平,等.野生和養(yǎng)殖背角無齒蚌礦質(zhì)元素和氨基酸含量的特征分析 [J].食品科學(xué),2012,33(8):142-145.
[23]楊惠珍,劉娜,李涌泉,等.鎘對背角無齒蚌主要組織谷胱甘肽含量和相關(guān)酶活性的影響 [J].農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報,2015,34(1):15-21.
[24]馮驍,田聆,黃倩.Caspase-3基因表達調(diào)控研究進展[J].生命科學(xué),2014,26(9):936-942.
[25]Joseph E K,Levine J D.Caspase signalling in neuropathic and inflammatory pain in the rat[J].Eur J Neurosci,2004,20(11):2896-2902.
[26]Choudhary G S,Al-Harbi S,Almasan A.Caspase-3 activation is a critical determinant of genotoxic stress induced apoptosis[J].Methods Mol Biol,2015,1219:1-9.
[27] Nicholson D W.Caspase structure,proteolytic substrates,and function duringapoptotic cell death[J].Cell Death Differ,1999,6(11):1028-1042.
[28]Wang J X,Wang Q,Li J R,et al.Cadmium induces hydrogen peroxide production and initiates hydrogen peroxide-dependent apoptosis in the gill of freshwater crab,Sinopotamon henanense[J]. Comparative Biochemistry and Physiology,2012,156(3/4):195-201.
[29]Oh S H,LimS C.A rapid and transient ROS generation by cadmiumtriggers apoptosis via caspase-dependent pathway in HepG2 cells and this is inhibited through N-acetylcysteine-mediated catalase upregulation[J].Toxicol Appl Pharmacol,2006,212(3):212-223.
[30]Donepudi M,Mac-Sweeney A,Briand C,et al.Insights into the regulatory mechanism for caspase-8 activation [J].Mol Cell,2003,11(2):543-549.
[31]Eeva J,Nuutinen U,Ropponen A,et al.The involvement of mitochondria and the caspase-9 activation pathway in rituximab-induced apoptosis in FLcells[J].Apoptosis,2009,14(5):687-698.
[32]苑麗霞,孫毅,楊艷君,等.細胞程序性死亡機制的研究[J].山西農(nóng)業(yè)科學(xué),2008,36(8):15-17.
[33]Li Y,Lim S C.Cadmium-induced apoptosis of hepatocytes is not associated with death receptor-related caspase-dependent pathways in the rat[J].Environ Toxicol Pharmacol,2007,24(3):231-238.
[34]Pathak N,Khandelwal S.Oxidative stress and apoptotic changes in murine splenocytes exposed to cadmium[J].Toxicology,2006,220(1):26-36.
[35]Stridh H,Kimland M,Jones D P,et al.Cytochrome c release and caspase activation in hydrogen peroxide-and tributyltin-induced apoptosis[J].FEBSLett,1998,429(3):351-355.
[36]Mao W P,Ye J L,Guan Z B,et al.Cadmium induces apoptosis in human embryonic kidney(HEK)293 cells by caspase-dependent and-independent pathways acting on mitochondria[J].Toxicol in Vitro,2007,21(3):343-354.
[37]DenningTL,Takaishi H,Crowe SE,et al.Oxidative stress induces the expression of Fas and Fas ligand and apoptosis in murine intestinal epithelial cell[J].Free Radic Biol Med,2002,33(12):1641-1650.
[38]邢慧芳,李涌泉,楊慧珍,等.鎘對背角無齒蚌外套膜和鰓抗氧化酶活性及脂質(zhì)過氧化的影響 [J].環(huán)境科學(xué)學(xué)報,2013,33(3):856-860.
[39]趙瑞杰,李引乾,王會,等.Caspase家族與細胞凋亡的關(guān)系[J].中國畜牧雜志,2010,46(17):73-78.
[40]Shih C M,Ko W C,Wu J S,et al.Mediating of caspase-independent apoptosis by cadmium through the mitochondria-ROS pathway in MRC-5 fibroblasts[J].J Cell Biochem,2004,91(2):384-397.
[41] Kim J,Sharma R P.Cadmium-induced apoptosis in murine macrophages is antagonized byantioxidants and caspase inhibitors [J].J Toxicol Environ Health A,2006,69(12):1181-1201.
Effects of Cadmium on Apoptosis-related Enzymes Activity and Cellularity Changes of the Mantle of Freshwater MusselAnodonta woodiana
LI Yongquan,YANGHuizhen,RENYujuan,WUHao,JINGWeixin,WANGLan
(College ofLife Sciences,Shanxi University,Taiyuan 030006,China)
This study examines the effects of cadmium(Cd)on the activities of apoptosis-related enzymes,the level of H2O2and ultrastructure ofthe mantle ofthe freshwater mussel Anodonta woodiana.The freshwater mussels were exposed todifferent concentrations ofCd(8.43,16.86,33.72,67.45 mg/L)for 96 h.Activities ofCaspase-3,8,9,as well as H2O2level were measured by enzymatic assays. The result showed that with the increase of Cd concentration,Caspase-3 activity decreased initially and increased subsequently(P<0.05).The change in Caspase-9 activity followed the similar pattern.The activity of Caspase-8 increased significantly after the mussels exposed to Cd in a dose-dependent manner(P<0.05).With the increase of Cd concentration,H2O2level increased gradually in a dose-dependent manner(P<0.05).Moreover,after Cd treatment(16.86,67.45 mg/L)for 96 h,histological abnormalities were observed by electronic microscopy in the mantle cells.After Cd treatment(16.86 mg/L),the obvious changes of cellularity were shown by the followingfeatures:chromatin condensed near nuclear membrane,nuclear membrane swelled and ruptured;mitochondria became swelling and vacuolating gradually,and some mitochondrial crisae disintegrated;microvilli arranged disorderly,broke off and were decreased gradually,the vacuole appeared.After Cd treatment(67.45 mg/L),the histological abnormalities were more apparent by the following features:most of chromatin condensed near nuclear membrane,nuclear membrane swelled and ruptured seriously;mitochondria became swelling and vacuolating,and most of mitochondrial crisae disintegrated;rough endoplasmic reticulum disintegrated,and formed many different sizes ofvesicles.In conclusion,Cd can cause significant changes in the enzymatic activities and histological abnormalities to the mantle ofthe animal.
Anodonta woodiana;mantle;caspase;cellularity;cadmium
X174
A
1002-2481(2016)08-1108-06
10.3969/j.issn.1002-2481.2016.08.13
2016-05-25
山西省普通高校生物學(xué)特色重點學(xué)科建設(shè)項目(2011-SXDX-SWX-003)
李涌泉(1981-),男,山西大同人,講師,主要從事水生生態(tài)毒理學(xué)教學(xué)及研究工作。王 蘭為通信作者。