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    一種去除豬圓環(huán)病毒中支原體污染的方法

    2017-01-05 05:24:54張雅會(huì)李少麗李艷麗
    現(xiàn)代畜牧獸醫(yī) 2016年8期
    關(guān)鍵詞:細(xì)胞培養(yǎng)效價(jià)懸液

    張雅會(huì),李少麗,李艷麗

    (1.中央農(nóng)業(yè)廣播電視學(xué)校唐山分校,河北 唐山 063000;2.杭州薦量獸用生物制品有限公司,浙江 杭州 310018)

    一種去除豬圓環(huán)病毒中支原體污染的方法

    張雅會(huì)1,李少麗2*,李艷麗2

    (1.中央農(nóng)業(yè)廣播電視學(xué)校唐山分校,河北 唐山 063000;2.杭州薦量獸用生物制品有限公司,浙江 杭州 310018)

    針對(duì)目前病毒中普遍存在支原體污染的現(xiàn)狀,本研究擬采用一種聯(lián)合過(guò)濾和用Plasmocin兩種方法,去除PCV2病毒中的支原體。PCV2病毒處理后,套式PCR檢測(cè)處理病毒樣品為陰性,同時(shí)進(jìn)行IFA檢測(cè),其效價(jià)仍能達(dá)107.3TCID50/mL以上。結(jié)果表明,采用這種聯(lián)合的方法在保證病毒效價(jià)不降低的情況下,徹底去除了PCV2病毒中污染的支原體,為同行關(guān)于去除病毒中污染的支原體提供了一種參考方法。

    PCV2;支原體

    在我國(guó)現(xiàn)階段,疫苗免疫被認(rèn)為是防控動(dòng)物疫病的有效手段,這些疫苗中絕大部分為病毒類疫苗,病毒類疫苗的制備一般均需先分離病毒,而在采集病料分離病毒及病毒傳代的過(guò)程中常因環(huán)境、使用器材污染等因素的影響,導(dǎo)致病毒被支原體污染。

    支原體是一類缺乏細(xì)胞壁的原核細(xì)胞型微生物,大小一般在0.3~0.5 μm之間,呈高度多形性,有球形、桿形、絲狀、分枝狀等多種形態(tài)[1],支原體約有1%可通過(guò)濾菌器。商品化的支原體抗生素Plasmocin主要用于治療或預(yù)防細(xì)胞培養(yǎng)中支原體的污染,使用推薦濃度5倍的高濃度Plasmocin處理細(xì)胞,雖未觀察到藥物對(duì)細(xì)胞新陳代謝的副作用,但據(jù)檢測(cè),若在繁殖病毒的過(guò)程中,細(xì)胞培養(yǎng)液中反復(fù)加入Plasmocin,則會(huì)使病毒效價(jià)降低。

    本研究以污染支原體的豬圓環(huán)病毒(Porcine circovirus type 2,PCV2)為例,研究出一種聯(lián)合過(guò)濾和用抗生素兩種途徑去除病毒中支原體的方法。

    1 材料

    PCV2病毒由杭州薦量獸用生物制品實(shí)驗(yàn)室保存;胎牛血清購(gòu)自Hyclone;MEM培養(yǎng)基購(gòu)自GIBCO;Plasmocin購(gòu)自Invivogen;0.1 μm濾菌器購(gòu)自Milliple,細(xì)胞培養(yǎng)瓶、細(xì)胞培養(yǎng)板均購(gòu)自Corning。

    2 方法

    2.10.1 μm濾器過(guò)濾PPCV2并連續(xù)繁殖四代用含5%胎牛血清的MEM培養(yǎng)PK-15細(xì)胞,細(xì)胞密度為2× 105個(gè)/mL。將PCV2用0.1 μm濾器過(guò)濾后,向MEM中接種PCV2,使PCV2接種量為MEM體積的1%,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱,培養(yǎng)72 h。之后反復(fù)凍融3次,得到PCV2懸液。

    以得到的病毒懸液為種毒,重復(fù)步驟2.1操作3次,得到第四代繁殖的病毒懸液。

    2.2PCV2用終濃度2.5 μgg//mmLL的Plasmocin處理兩代用含5%胎牛血清的MEM培養(yǎng)PK-15細(xì)胞,細(xì)胞密度2×105個(gè)/mL,再向MEM中接種上述步驟中最終得到的PCV2,使PCV2接種量為MEM體積的1%,并向MEM中加入Plasmocin至終濃度2.5 μg/mL,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱,培養(yǎng)72~96 h;細(xì)胞鋪滿后,將細(xì)胞瓶反復(fù)凍融3次,得到PCV2懸液;

    重復(fù)步驟2.2操作1次,得到第六代繁殖的病毒懸液。

    2.3常規(guī)繁殖PPCV2兩代用含5%胎牛血清的MEM培養(yǎng)PK-15細(xì)胞,細(xì)胞密度2×105個(gè)/mL,再向MEM中接種步驟2.2最終制得的PCV2,使PCV2接種量為MEM體積的1%,置于37℃、5%CO2的培養(yǎng)箱,培養(yǎng)72 h;將培養(yǎng)后的細(xì)胞瓶取出后,反復(fù)進(jìn)行3次凍融,得到細(xì)胞瓶中凍融好的PCV2懸液;

    重復(fù)步驟2.3操作1次,即制得第八代所需的PCV2懸液。

    2.4PCV2中支原體的檢測(cè)參考豬支原體基因序列(Genbank,NR-103095.1),采用DNAMAN軟件設(shè)計(jì)兩對(duì)上下游引物:P1:AAGTCGTAACAACCTATCCCTA,P2:GTGTCTGGTTAGTATTTAGCCTTA;P3:GCAAGTCGATGAAGGACG,P4:GCTTCGCTCGCCACTACT,采用套式PCR法,以步驟2.3最終制得的PCV2為樣品模板,并設(shè)滅菌雙蒸水為陰性對(duì)照,豬滑液囊支原體為陽(yáng)性對(duì)照,先用P1和P2引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,將其擴(kuò)增產(chǎn)物作為PCR反應(yīng)模板,再用P3和P4引物擴(kuò)增目的基因片段。第2次PCR反應(yīng)條件為94℃ 3 min,94℃1 min,56℃ 1 min,68℃ 1 min,共30 cycle,第2次PCR反應(yīng)條件為94℃ 3 min,94℃ 1 min, 58℃ 30 s,68℃ 30 s,共30 cycle。PCR反應(yīng)體系均為dNTP 4 μL,PCR Buffer 5 μL,P1和P2(P3和P4)均為1 μL,rTaq酶1 μL,模板1 μL,滅菌水37 μL,共50 μL體系。第2次PCR產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)支原體。

    2.5PCV2 TCID50的測(cè)定先將PK-15細(xì)胞用MEM稀釋成2×105個(gè)/mL的細(xì)胞懸液,細(xì)胞懸液加入到96孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,每孔100 μL,再將步驟2.3最終制得的PCV2 10倍梯度稀釋,選擇10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7共6個(gè)梯度,每孔100 μL加到細(xì)胞懸液中,每個(gè)梯度重復(fù)6個(gè)孔,同時(shí),設(shè)MEM培養(yǎng)液作陰性對(duì)照、107.3TCID50/mL的PCV2作陽(yáng)性對(duì)照,陰性、陽(yáng)性對(duì)照各1孔,然后將細(xì)胞培養(yǎng)板置于37℃、5%CO2的培養(yǎng)箱中,培養(yǎng)72 h。

    培養(yǎng)結(jié)束后,取出細(xì)胞培養(yǎng)板并棄掉細(xì)胞培養(yǎng)板中的液體,每孔加入100 μL冷的甲醇-丙酮固定液(甲醇和丙酮體積比1:1),-20℃固定30 min,棄固定液,再用pH 7.4的PBST洗滌1次細(xì)胞培養(yǎng)板后甩干。

    將鼠源Cap蛋白單克隆抗體用PBS進(jìn)行1:2 000倍稀釋,100 μL/孔加入到甩干的細(xì)胞培養(yǎng)板中,將細(xì)胞培養(yǎng)板在37℃搖床孵育60 min,棄細(xì)胞培養(yǎng)板中液體,再用pH7.4的PBST洗滌3次細(xì)胞培養(yǎng)板后甩干。

    將FITC-羊抗鼠二抗用PBS進(jìn)行1:200倍稀釋,100 μL/孔加入到甩干的細(xì)胞培養(yǎng)板中,錫箔紙包裹細(xì)胞培養(yǎng)板避光,將細(xì)胞培養(yǎng)板在37℃搖床孵育60 min,棄細(xì)胞培養(yǎng)板中液體,再用pH 7.4的PBST洗滌3次細(xì)胞培養(yǎng)板后甩干。

    將甩干的細(xì)胞培養(yǎng)板于倒置熒光顯微鏡下觀察,按Reed和Muench法計(jì)算PCV2效價(jià)。

    3 結(jié)果

    3.1PCV2中支原體的檢測(cè)用濾菌器和Plasmocin處理過(guò)的PCV2 PCR檢測(cè)不到支原體,而未處理的PCV2則檢測(cè)出目的條帶,陰性對(duì)照和陽(yáng)性對(duì)照均成立,見(jiàn)圖1。

    3.2PCV2病毒TCID50的測(cè)定從各梯度的熒光效果看,用濾菌器和Plasmocin處理過(guò)的PCV2比未處理過(guò)的PCV2熒光強(qiáng)度好,且處理過(guò)的PCV2病毒效價(jià)仍能維持在107.3TCID50/mL以上(見(jiàn)圖2,顯微鏡放大倍率為10×10)。

    圖1 PCV2支原體檢測(cè)Fig.1 mycoplasma detection of PCV2

    圖2 PCV2的TCID50測(cè)定Fig.2 TCID50detection of PCV2

    4 討論

    在細(xì)胞培養(yǎng)或在利用培養(yǎng)的細(xì)胞繁殖病毒的過(guò)程中,細(xì)胞或病毒被支原體污染是世界性的問(wèn)題,支原體的污染來(lái)源常包括工作環(huán)境的污染、操作者本身的污染、試驗(yàn)器材的污染以及用污染支原體的細(xì)胞繁殖病毒。為獲得無(wú)支原體污染的疫苗種毒或研究用病毒,以保證疫苗的純凈性和試驗(yàn)結(jié)果的可靠性,本試驗(yàn)聯(lián)合0.1 μm的濾菌器和Plasmocin兩種方法快速、徹底清除了PCV2中污染的支原體,且未影響到PCV2的病毒效價(jià),為同行關(guān)于去除病毒中支原體的問(wèn)題提供了一種參考方法。

    Eliminate the mycoplasma in PCV2

    Zhang Yahui1,Li Shaoli2*,Li Yanli2
    (1.The central agricultural broadcasting and television school of tangshan branch,Hebei Tangshan 063000;2.Hangzhou Jianliang Veterinary Biological Preparations Co.Ltd,Zhejiang Hangzhou 310018)

    Since the mycoplasma common contaminate in virus,To eliminate mycoplasma in PCV2, the research adopted a combined filtering and plasmocin two methods.PCR detection of PCV2 virus after processing,the results were negative,at the sametime detection of IFA,its titer can reached more than 107.3TCID50/mL.The results showed that the method using the joint in the case thoroughly eliminate the contaminated mycoplasma in PCV2 without lowing the titer of virus,and this case can provide a reference for peers about mycoplasma removal in virus.

    PCV2;Mycoplasma

    S852.62 < class="emphasis_bold"> 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:B

    B

    1672-9692(2016)08-0042-03

    2016-06-28

    張雅會(huì)(1984-),女,本科,獸醫(yī)師,主要從事動(dòng)物類產(chǎn)品監(jiān)測(cè)研究。

    李少麗(1983-),女,在職博士,獸醫(yī)師,主要從事動(dòng)物疫苗的開(kāi)發(fā)與檢測(cè)。

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