黃皓 周生茂 尚小紅 郭元元 文俊麗 班美玲 王玲平 陶偉 車江旅 陳振東
西林火姜健康組培苗快繁體系的建立
黃皓周生茂尚小紅郭元元文俊麗班美玲王玲平陶偉車江旅陳振東
為了篩選出西林火姜健康組培苗快繁體系,以西林火姜的莖尖為組培材料,對(duì)其組培苗分化、增殖和生根同步培養(yǎng)基進(jìn)行了篩選,并對(duì)組培苗進(jìn)行了病菌和病毒檢測(cè)。試驗(yàn)結(jié)果顯示,適合西林火姜分化、增殖和生根一步成苗的培養(yǎng)基配方為MS+4.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA;在組培苗后期壯苗時(shí)加入蔗糖、活性炭和多效唑的濃度分別以4%、0.10%和0.05%最佳;目前生產(chǎn)中對(duì)于常用的生姜健康組培苗還不能完全脫除病菌和脫毒,表明生姜健康組培苗快繁體系因生姜基因型而異,而且目前的脫病菌和脫毒技術(shù)還需改進(jìn)。
生姜(Zingiber officinale Roscoe)為姜科姜屬多年生草本宿根單子葉植物,富含揮發(fā)油和姜辣素等功能性有效成分,以地下肥大的肉質(zhì)根狀莖為食用器官,是典型的藥食兩用的經(jīng)濟(jì)作物,在我國中部、東南部和西南部各省廣泛種植[1,2]。我國生姜常年種植面積達(dá)63萬hm2,年產(chǎn)量已達(dá)1 000萬t,約占世界產(chǎn)量的45%,出口量居世界第一[3]。廣西是我國生姜的主要產(chǎn)區(qū)之一,據(jù)農(nóng)業(yè)部門統(tǒng)計(jì),常年種植面積達(dá)5萬hm2,主要分布在桂西北的石山區(qū)和鄰近云貴高原的縣市區(qū)域,是當(dāng)?shù)剞r(nóng)戶的主要收入來源。因此,生姜產(chǎn)業(yè)對(duì)于廣西乃至我國生姜種植戶增收和實(shí)現(xiàn)小康極為關(guān)鍵。
生姜依照姜塊大小和品質(zhì)優(yōu)劣可分為小姜型、中姜型和大姜型[4],在廣西上述3種類型都有種植,其中小姜型種植面積最大,因?yàn)槠渌幨澈图庸ぜ嬗谩R驗(yàn)樯谖覈耘鄷r(shí)極少開花,即使開花,也常常無花粉,無法進(jìn)行雜交種生產(chǎn),所以,長(zhǎng)期以來生產(chǎn)上主要靠塊根進(jìn)行無性繁殖,但無性繁殖會(huì)導(dǎo)致姜體積累大量的病菌和病毒[5]。其中,姜瘟病和花葉病毒病是生姜栽培中最主要的病害,一般產(chǎn)量損失可達(dá)20%~30%,重則50%~70%[5,6],嚴(yán)重制約了生姜產(chǎn)業(yè)可持續(xù)發(fā)展。
植物組培快繁技術(shù)快速發(fā)展,并成功應(yīng)用于生姜組培苗的脫菌、脫毒,其作用明顯,不僅提高了生姜的產(chǎn)量和品質(zhì),而且降低了姜種成本,獲得了較好的經(jīng)濟(jì)效益[7]。但是在生姜組培苗生產(chǎn)過程中,也存在許多因素制約了產(chǎn)業(yè)的進(jìn)一步發(fā)展,比如組培分化繼代的時(shí)間過長(zhǎng)、后期移栽成活率不高、種塊生產(chǎn)成本過高等[8]。而且培養(yǎng)基還存在生姜基因型差異,比如先前利用萊蕪大肉姜組培苗生產(chǎn)所用培養(yǎng)基進(jìn)行西林火姜繼代,但未獲得理想的繼代系數(shù)。為了解決這些問題,許多研究者根據(jù)試材特性,篩選更適合組培苗生長(zhǎng)的配方,例如分化、增殖和生根一步成苗的配方;為提高后期移栽成活率,進(jìn)一步摸索更好的壯苗配方;為繼續(xù)壓低組培苗生產(chǎn)過程中的成本,利用木薯粉替代蔗糖[9]或使用液體培養(yǎng)基[10],取得了很好的效果。
為了建立廣西地方生姜品種西林火姜健康組培苗快繁體系,生產(chǎn)更多脫菌脫毒的姜種,促進(jìn)西林火姜健康組培苗產(chǎn)業(yè)可持續(xù)發(fā)展,以西林火姜為組培材料,開展了西林火姜分化、增殖和生根一步成苗和培育健壯組培苗的培養(yǎng)基篩選試驗(yàn)。
1.1試驗(yàn)材料
西林火姜姜種由廣西西林匯浤工貿(mào)有限責(zé)任公司提供。西林火姜又名細(xì)肉姜、小黃姜,株高80 cm,分枝較多,姜球較小,個(gè)體勻稱,呈雙層排列,根、莖、皮、肉皆為淡黃色,嫩芽紫紅色,肉質(zhì)致密,辛辣味濃,是制作烤姜塊(片)的主要原料。
1.2試驗(yàn)方法
①分化、增殖和生根同步培養(yǎng)基的篩選a.培養(yǎng)基配制。為篩選出脫毒姜的分化、增殖和生根同步化培養(yǎng)基,首先,以MS培養(yǎng)基為組培的基本培養(yǎng)基,向MS中分別添加6-BA(以A表示,下同)、NAA(以B表示,下同)和IBA(以C表示,下同)3種激素,每種激素設(shè)4個(gè)濃度,然后,按正交設(shè)計(jì)表L16(43)確定組合處理數(shù)為 16個(gè),除 1號(hào)處理為對(duì)照1外,另分別以僅加0.2 mg/L NAA(17號(hào))、0.2 mg/L IBA(18號(hào))和MS培養(yǎng)基(即無激素,19號(hào))作為其他3個(gè)對(duì)照(表1)。
b.外植體培養(yǎng)與接種。西林火姜姜塊用50%多菌靈800倍液浸泡處理30 min后撈出晾干,置于催芽盒中,在25℃條件下恒溫催芽。當(dāng)姜芽長(zhǎng)到1~2 cm及時(shí)切下,先表面清洗,再用0.1%HgCl2溶液消毒并沖洗干凈,在解剖鏡下剝?nèi)〈笮?.2~0.5 mm的莖尖,接種于培養(yǎng)基上。
每個(gè)處理10瓶,每瓶 2個(gè)單芽,60 d后統(tǒng)計(jì)并計(jì)算每個(gè)處理的平均分化率、芽增殖倍數(shù)和生根率,以此確立西林火姜芽尖分化、增殖和生根同步培養(yǎng)基。
②病原檢測(cè)a.細(xì)菌檢測(cè)。在超凈工作臺(tái)上選取每瓶組培苗根部組織和附近瓊脂的混合樣本約0.5 g,用總土壤DNA提取試劑盒 (美國Mpbio公司)提取樣本總DNA。以提取的總DNA為模板,大腸桿菌活化菌株為陽性對(duì)照,用篩選出來的細(xì)菌16S rRNA擴(kuò)增引物進(jìn)行擴(kuò)增,并電泳檢測(cè)其條帶的大小,以判斷樣品是否含有細(xì)菌。
b.病毒檢測(cè)。利用ELISA試劑盒(購自上海裕平生物科技有限公司),對(duì)組培苗中的煙草花葉病毒進(jìn)行檢測(cè)。檢測(cè)方法依照試劑盒說明進(jìn)行,根據(jù)酶聯(lián)板樣品的顯色情況,用酶標(biāo)儀在450 nm波長(zhǎng)下測(cè)定吸光度(OD值),通過標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算樣品中煙草花葉病毒(TMV)濃度。
③不同因素對(duì)組培苗后期壯苗的影響為培育壯苗,提高后期移栽的成活率,分別探討了蔗糖、活性炭和多效唑濃度3個(gè)因素對(duì)西林火姜組培苗生根后期生長(zhǎng)發(fā)育的影響。基本培養(yǎng)基為MS+ 4.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA,蔗糖濃度設(shè)0、4%、6%、8%4個(gè)梯度;活性炭濃度設(shè)0、0.05%、0.10%、0.20%4個(gè)梯度;多效唑濃度設(shè)0、0.5%、1.0%、1.5% 4個(gè)梯度。將通過檢測(cè)的健康組培苗的芽分別接到含有不同濃度蔗糖、活性炭和多效唑的培養(yǎng)基中,每個(gè)芽長(zhǎng)3 cm左右,每個(gè)處理20瓶,每瓶2個(gè)單芽,至第30天測(cè)定增殖數(shù)、株高、單株質(zhì)量、單株生根率、單株生根數(shù)和單株平均根長(zhǎng)等指標(biāo)。
1.3數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)
采用SPSS 18.0統(tǒng)計(jì)軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì),采用SSR法進(jìn)行方差分析。
表1 西林火姜分化、增殖和生根同步培養(yǎng)基激素篩選的正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)L16(43)表
2.1不同濃度6-BA、NAA和IBA對(duì)西林火姜平均分化率的影響
從表2結(jié)果可知,在3種激素不同濃度組合的處理中,6-BA濃度為3、4、5 mg/L組合處理的平均分化率均較高,都達(dá)到60%以上,而含2 mg/L 6-BA組合處理的平均分化率低于50%,不含6-BA的對(duì)照17、18、19號(hào)處理的平均分化率更是低于10%。且方差分析顯示,6-BA濃度為3、4、5 mg/L的處理組合與濃度0、2 mg/L的組合處理差異顯著,后2個(gè)處理間差異也達(dá)顯著水平,說明培養(yǎng)基中添加6-BA顯著促進(jìn)姜芽分化;在6-BA濃度為3、4、5 mg/L的組合處理中,3、4 mg/L濃度組合處理的平均分化率普遍比5 mg/L的組合處理的高,處理5、6、9、11號(hào)的平均分化率超過70%,6號(hào)的最高,達(dá)75.05%,說明添加6-BA的濃度超過5 mg/L,組培西林火姜的分化率反而降低。當(dāng)6-BA濃度在一定范圍內(nèi),盡管NAA和IBA濃度不同,組培西林火姜的分化率差異變化不大,其中,以0.1 mg/L NAA的分化率較高,而不同IBA濃度誘導(dǎo)的分化率間不存在顯著差異。說明3種激素中6-BA對(duì)西林火姜分化誘導(dǎo)作用最大,而NAA和IBA誘導(dǎo)作用較小,其中6號(hào)(A2B2C1)處理(MS+3.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA)的誘導(dǎo)作用最優(yōu)。
2.2不同濃度6-BA、NAA和IBA對(duì)西林火姜平均芽增殖倍數(shù)的影響
表2結(jié)果顯示,在3種激素不同濃度組合處理中,6-BA濃度為0、2 mg/L的組合處理的芽增殖倍數(shù)均小于3(2號(hào)除外);而6-BA濃度為3、4、5 mg/L的組合處理的芽增殖平均倍數(shù)都大于4,在其他條件相同時(shí),4 mg/L 6-BA組合處理的芽增殖倍數(shù)偏高;各處理間方差分析結(jié)果顯示,3、4、5 mg/L組合處理的芽增殖倍數(shù)顯著高于0、2 mg/L的組合處理,說明在培養(yǎng)基中添加6-BA有利于西林火姜組培的芽增殖。在相同6-BA濃度處理下,11號(hào)(A3B2C1)有最高的芽增殖平均倍數(shù)。這些結(jié)果說明,與NAA和IBA相比,6-BA對(duì)西林火姜組培芽增殖平均倍數(shù)的促進(jìn)作用最大。
2.3不同濃度6-BA、NAA和IBA對(duì)西林火姜平均生根率的影響
從表2分析知道,除了1、19號(hào)組合處理外,其他組合處理的平均生根率均超過90%外;與對(duì)照19號(hào)相比,盡管1號(hào)處理與其促進(jìn)生根作用的差異不顯著,但是在培養(yǎng)基中添加NAA和IBA后,6-BA具有輔助促進(jìn)生根的作用。在相同6-BA濃度條件下,西林火姜組培的平均生根率隨著NAA濃度的增加而增加;在相同NAA濃度條件下,西林火姜組培的平均生根率也隨著6-BA濃度的增加而增加;在相同的IBA濃度下,低濃度的NAA表現(xiàn)出低的平均生根率,但高濃度的NAA并不表現(xiàn)出高的平均生根率;上述結(jié)果說明,在促進(jìn)西林火姜組培苗的生根作用上,NAA起主導(dǎo)作用,作用最大,6-BA與NAA起協(xié)調(diào)正向作用,而IBA的作用因濃度及其與不同濃度的6-BA和NAA組合而異。
綜合分析認(rèn)為,對(duì)西林火姜組培分化、增殖和生根影響最主要的因素為6-BA,其次是NAA,IBA雖然對(duì)后期生根有一定的影響,但作用的效果有抑有促,且不顯著,另外,IBA對(duì)前期分化和增殖都起抑制作用,因此,研究認(rèn)為西林火姜組培分化、增殖和生根同步培養(yǎng)基的適宜配方為 MS+4.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA。
表2 西林火姜分化、增殖和生根同步培養(yǎng)基中不同濃度激素組合處理的結(jié)果
2.4病原檢測(cè)
①細(xì)菌檢測(cè)圖1顯示,以提取的樣本總DNA為模板,用篩選出來的細(xì)菌16S rRNA擴(kuò)增引物進(jìn)行擴(kuò)增,陽性對(duì)照擴(kuò)增出大概1 500 bp左右的單一目的帶,空白對(duì)照(陰性對(duì)照)沒有條帶,部分樣品也出現(xiàn)目的帶,說明部分樣品可能帶有內(nèi)生菌。此檢測(cè)方法可以快速方便地檢測(cè)出組培苗是否含有細(xì)菌,達(dá)到快速篩選的目的。
②病毒檢測(cè)用ELISA試劑盒對(duì)組培苗中的煙草花葉病毒進(jìn)行檢測(cè)。目前檢測(cè)了部分組培苗煙草花葉病毒的含量,每1 g樣品超過閾值4 ng TMV的有5個(gè),占全部送樣的30%左右,說明病毒脫毒率在70%左右。用莖尖培養(yǎng)出來的組培苗少部分還帶有病毒,可能和莖尖大小、操作方法等因素有關(guān)。
2.5不同因素對(duì)組培苗后期壯苗的影響
①蔗糖濃度對(duì)組培苗壯苗的影響從表3可以看出,經(jīng)過30 d培養(yǎng)后,隨著蔗糖濃度的升高,平均增殖數(shù)和平均株高呈逐漸降低的趨勢(shì),這可能和較高濃度的蔗糖抑制芽的生長(zhǎng)速率有關(guān),但是平均單株質(zhì)量、根長(zhǎng)、根粗和生根數(shù)卻先增加后減少,說明適當(dāng)濃度的蔗糖能夠促進(jìn)根的生長(zhǎng)。綜合來說,添加4%、6%蔗糖的培養(yǎng)基中組培苗的平均單株質(zhì)量、根長(zhǎng)、根粗和生根數(shù)比其他蔗糖濃度高,其中添加4%蔗糖的培養(yǎng)基中組培苗增殖數(shù)相對(duì)較高,組培苗比較粗壯,而且根系較發(fā)達(dá),葉色濃綠,說明4%是培育健壯組培苗的最佳蔗糖濃度。
②活性炭濃度對(duì)組培苗壯苗的影響從表4可以看出,加了不同濃度活性炭的培養(yǎng)基的組培苗平均增殖數(shù)都低于基本培養(yǎng)基,這可能與活性炭吸附部分激素導(dǎo)致激素不夠有關(guān)。添加0.2%活性炭培養(yǎng)基的芽增殖數(shù)最低,但株高最高,較細(xì)弱。加了0.1%活性炭的培養(yǎng)基的平均根長(zhǎng)、根粗和生根數(shù)都最高,說明0.1%活性炭可以適當(dāng)促進(jìn)組培苗根的生長(zhǎng),且苗粗壯、翠綠。
③多效唑濃度對(duì)組培苗壯苗的影響從表5可以看出,隨著多效唑濃度的升高,平均增殖數(shù)和株高呈逐漸降低的趨勢(shì),可能和多效唑促進(jìn)側(cè)芽生長(zhǎng)從而降低生長(zhǎng)速率有關(guān)。平均單株質(zhì)量、根長(zhǎng)和根粗隨著多效唑濃度升高而增加,但平均生根數(shù)卻逐漸減少,說明較高濃度的多效唑促進(jìn)根增粗、增長(zhǎng),但高濃度抑制根數(shù)的增多,也不利于根系的發(fā)育。添加0.05%多效唑培養(yǎng)基的組培苗相對(duì)較壯實(shí),根系也較長(zhǎng)、較粗,但較脆且易斷,可能和多效唑促進(jìn)橫向增長(zhǎng)且纖維減少有關(guān),還需要進(jìn)一步的研究。
圖2 西林火姜組培苗脫菌檢測(cè)示意
隨著植物組織培養(yǎng)技術(shù)的發(fā)展和應(yīng)用,生姜健康種苗得到很好的開發(fā),脫菌、脫毒效果明顯,但是在組培培養(yǎng)基的利用上存在基因型的差異[5,11]。與韋坤華等[12]通過正交試驗(yàn)研究出萊蕪大姜的繁殖生根同步化培養(yǎng)基為MS+2.5 mg/L 6-BA+0.4 mg/L NAA+0.2~0.3 mg/L ABT相比,本研究利用西林火姜為試材,結(jié)果是 MS+4.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA更適合增殖和生根,而過高濃度的6-BA反而抑制分化且容易使芽產(chǎn)生玻璃化現(xiàn)象,且過高濃度NAA也不能顯著促進(jìn)根的生長(zhǎng)發(fā)育,反而會(huì)降低芽的增殖倍數(shù)。齊蘭等[14]以海南小黃姜的莖尖為外植體,摸索出適合外植體增殖和生根的培養(yǎng)基為MS+3.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA,而Sathyagowri等[13]以本地生姜莖尖為材料,認(rèn)為適合繼代和生根的培養(yǎng)基為MS+5.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA。研究結(jié)果的不一致可能和生姜基因型和培養(yǎng)方式不同等因素有關(guān)。
表3 不同濃度蔗糖處理30 d后對(duì)生姜組培苗增殖和生根的影響
表4 不同濃度活性炭處理30 d后對(duì)生姜組培苗增殖和生根的影響
表5 不同濃度多效唑處理30 d后對(duì)生姜組培苗增殖和生根的影響
組培苗后期壯苗的培養(yǎng)也是一個(gè)重要的環(huán)節(jié),培養(yǎng)出健壯的組培苗不僅能大大提高煉苗和移栽成活率,還可進(jìn)一步降低生產(chǎn)成本。生姜組培主要用蔗糖作為碳源,不同時(shí)期需要的蔗糖濃度不一樣。隨著蔗糖濃度的增加,組培苗前期生長(zhǎng)受到明顯的抑制,部分表現(xiàn)出葉偏黃、生長(zhǎng)緩慢等現(xiàn)象,但后期逐漸變壯,塊根質(zhì)量、根長(zhǎng)和根數(shù)明顯增加[14]。本研究結(jié)果表明,以4 mg/L蔗糖濃度為宜,過高濃度的蔗糖會(huì)抑制組培苗生長(zhǎng),因?yàn)榻M培苗難以承受過高的滲透壓,這與周遜等[15]和Abbas等[16]的研究結(jié)果一致?;钚蕴恳彩怯绊憠衙绲囊粋€(gè)因素,它能吸附有害物質(zhì)并提供暗環(huán)境促進(jìn)根部發(fā)育。本研究發(fā)現(xiàn),加入0.05%活性炭的培養(yǎng)基培育的苗最健壯且根部發(fā)達(dá),適宜后期煉苗移栽,張華峰[17]研究表明,組培苗生根培養(yǎng)基中加入活性炭最合適的濃度為0.03%,而郭英華[18]研究則認(rèn)為活性炭對(duì)根狀莖誘導(dǎo)沒有明顯作用,因?yàn)檫^高濃度的活性炭會(huì)吸附過多的激素造成激素不足。多效唑大多用于培養(yǎng)試管姜,陳傳紅等[19]和王志敏等[20]研究多效唑?qū)ιM培苗和試管姜形成的影響時(shí)發(fā)現(xiàn),一定濃度范圍內(nèi)的多效唑有利于組培苗的生長(zhǎng),并能提高組培苗的抗性。本研究發(fā)現(xiàn),在培養(yǎng)基中加了0.05%多效唑,組培苗更壯實(shí),根系更粗,但相對(duì)不加多效唑的培養(yǎng)基,組培苗根數(shù)減少,根系也相對(duì)脆,不太利于后期的移栽,這些問題有待于進(jìn)一步的研究。綜合來看,本研究的結(jié)論是生姜健康組培苗快繁體系因生姜基因型而異,而且目前的脫病菌和脫毒技術(shù)還需改進(jìn)。
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廣西科學(xué)研究與技術(shù)開發(fā)計(jì)劃項(xiàng)目(桂科轉(zhuǎn)14125003-2-10);廣西農(nóng)業(yè)重點(diǎn)科技計(jì)劃項(xiàng)目(NY2014004);廣西農(nóng)業(yè)科學(xué)院科技成果轉(zhuǎn)化項(xiàng)目(農(nóng)成轉(zhuǎn)2015008);廣西農(nóng)業(yè)科學(xué)院基本科研業(yè)務(wù)專項(xiàng)項(xiàng)目(2015YZ03);物種資源保護(hù)費(fèi)項(xiàng)目(1120162130135252038)
黃皓,廣西農(nóng)業(yè)科學(xué)院蔬菜研究所,南寧,530007,
電話:0771-3247318,E-mail:804667483@qq.com
周生茂,通信作者,廣西農(nóng)業(yè)科學(xué)院蔬菜研究所,
E-mail:maomaozhou70@gxaas.net
尚小紅,郭元元,文俊麗,陳振東,廣西農(nóng)業(yè)科學(xué)院蔬菜研究所
班美玲,廣西環(huán)境保護(hù)科學(xué)研究院
王玲平,浙江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院蔬菜研究所
陶偉,車江旅,廣西農(nóng)業(yè)科學(xué)院
2016-06-21