王 芳 呂 紅 賈娟娣 韓 偉 付劍江.解放軍總醫(yī)院腎臟科,北京0085;.江西中醫(yī)藥大學(xué)網(wǎng)絡(luò)與教育技術(shù)中心,江西南昌0004;.江西中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,江西南昌0004
紫草素下調(diào)Runx2轉(zhuǎn)錄活性對乳腺癌細胞體外運動能力的影響
王芳1呂紅2賈娟娣2韓偉2付劍江3
1.解放軍總醫(yī)院腎臟科,北京100853;2.江西中醫(yī)藥大學(xué)網(wǎng)絡(luò)與教育技術(shù)中心,江西南昌330004;3.江西中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院,江西南昌330004
目的探討紫草素(SKN)對乳腺癌細胞體外運動能力的影響。方法利用OrisTM細胞遷移試劑盒和重組基底膜侵襲實驗檢測SKN對乳腺癌細胞MDA-MB-231細胞體外遷移能力和侵襲能力的影響。采用明膠酶譜法觀察SKN對MDA-MB-231細胞分泌基質(zhì)金屬蛋白酶(MMPs)的影響。通過染色質(zhì)免疫共沉淀(ChIP)和Western blot實驗檢測SKN對MDA-MB-231細胞內(nèi)Runx2轉(zhuǎn)錄活性及表達的影響。結(jié)果給藥后,20μmol/L SKN可顯著抑制表皮生長因子誘導(dǎo)的細胞遷移作用;重組基底膜侵襲實驗中,SKN 10μmol/L和20μmol/L劑量組的侵襲細胞數(shù)分別為(514.3±76.8)、(426.3±87.0)個,與空白組[(738.5±126.1)個]比較差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);明膠酶譜實驗顯示,SKN可下調(diào)基質(zhì)金屬蛋白酶-9(MMP-9)的活性;進一步Western blot實驗結(jié)果表明,MDA-MB-231細胞的MMP-9表達也顯著降低(P<0.01)。Ch IP實驗結(jié)果顯示,SKN可明顯下調(diào)Runx2與MMP-9基因啟動子區(qū)內(nèi)特定序列的結(jié)合能力,而Western blot結(jié)果發(fā)現(xiàn),SKN可顯著抑制磷酸化Runx2的表達(P<0.01)。結(jié)論SKN對MDA-MB-231細胞體外運動功能具有顯著抑制作用,這種作用與其抑制Runx2活化、下調(diào)Runx2轉(zhuǎn)錄活性、抑制MMP-9表達有關(guān)。
紫草素;體外運動能力;基質(zhì)金屬蛋白酶-9;Runx2;乳腺癌
紫草為紫草科植物紫草(Lithospermum erythrorhizon Sieb.et Zucc.)、新疆紫草[Arnebia euchroma(Royle)Johnst]、內(nèi)蒙紫草(Arebia guttata Bunge)的干燥根的統(tǒng)稱,具有涼血活血、消炎止痛、解毒透疹等功效,主治血熱毒盛、斑疹紫黑、麻疹不透、瘡瘍、濕疹、水火燙傷等[1]。研究表明,紫草的活性成分主要是以紫草素及其衍生物為代表的萘醌類色素,具有抗腫瘤、抗菌、抗病毒、抗艾滋病毒、抗生育、解熱、止血、降血糖等廣泛的藥理作用[1-3]。本文對紫草的主要活性成分之一——紫草素的體外抗乳腺癌轉(zhuǎn)移活性及其機制進行初步探索。
1.1實驗用藥
紫草素(shikonin,SKN)購自Sigma-Aldrich公司(貨號S7576,批號120117),BB-94購自Santa Cruz生物技術(shù)公司(SantaCruzBiotechnology Inc.,Santa Cruz,CA;貨號:SC-203833;批號:1309287),本研究中作為陽性對照藥。
1.2細胞株及細胞培養(yǎng)
人乳腺癌細胞株MDA-MB-231細胞,購自中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所細胞庫。MDA-MB-231細胞培養(yǎng)于含10%胎牛血清、青霉素和鏈霉素的DMEM培養(yǎng)基中培養(yǎng),置于37℃5%CO2的培養(yǎng)箱內(nèi),3~4 d傳代1次。
1.3試劑
Matrigel(BDbioscience,#354234);Fibronectin(FN,Sigma-Aldrich,#F1141);QIAshredder(Qiagen,#79656);RNeasy ProtectMini試劑盒(Qiagen,#74124);OneStep RT-PCR試劑盒(Qiagen,#210210);Multiplex PCR試劑盒(Qiagen,#206143);ORIS cell migration assay試劑盒(Platypus Technologies,#CMA1.101);TransAMTM AML-3/Runx2試劑盒(Activemotif,#44496);Agarose ChIP試劑盒(Thermo Fisher Scientific,#RA232201);Phusion?High-Fidelity PCR試劑盒;總蛋白抽提試劑盒(碧云天,#P0027);抗p-Runx2多克隆抗體(Abgent,#AP3559a);抗MMP-9單克隆抗體(Santa Cruz,#SC-6840);抗β-Actin單克隆抗體(Santa Cruz,#SC-130301)。
1.4儀器
AP48 chamber(美國Neuro probe公司);Mastercycler gradient PCR儀(德國Eppendorf公司);EC3凝膠成像系統(tǒng)(美國UVP公司);ELx800酶標儀(美國BioTek公司);BX63正置顯微鏡(日本Olymbus公司)。
1.5腫瘤細胞體外遷移實驗
采用OrisTM細胞遷移檢測試劑盒(Platypus Technology LLC,Madison,WI)進行。收集對數(shù)生長期的MDA-MB-231細胞,配制成濃度為5×106/mL的細胞懸液。將100μL細胞懸液接種于插入了Stopper的OrisTM細胞培養(yǎng)板。37℃、5%CO2孵育5 h。小心拔出Stopper,并更換含藥培養(yǎng)液,每個處理重復(fù)3個復(fù)孔。上述細胞繼續(xù)培養(yǎng)48 h。處理結(jié)束后,棄去培養(yǎng)液,加入濃度為0.5%結(jié)晶紫染色60min,PBS洗滌3遍,光學(xué)顯微鏡下觀察并拍照,上述實驗均重復(fù)3次。
1.6重組基底膜細胞侵襲實驗
參照文獻[4]的方法,采用AP48 chamber細胞趨化試劑盒進行。取孔徑為8.0μm的PVPF濾膜,在其粗糙面均勻涂抹50μg纖維連接蛋白(fibronectin,F(xiàn)N),室溫靜置風干。隨后在光滑面均勻涂抹0.5mg/mL Matrigel 100μL,室溫靜置、干燥。按照說明書安裝AP48 Chamber:下室加入30μL含0.1%BSA的無血清DMEM培養(yǎng)基;上室加入50μL含有不同藥物濃度的細胞懸液,細胞終濃度為2×106/m L,每個處理重復(fù)3個復(fù)孔。37℃,5%CO2培養(yǎng)14 h。培養(yǎng)結(jié)束后,卸下濾膜,甲醇固定10 min,0.5%結(jié)晶紫染色60 min,隨后用棉簽擦掉濾膜上層細胞,光學(xué)顯微鏡下拍照,并計數(shù)5個不同視野內(nèi)的侵襲細胞數(shù),計算平均值,上述實驗均重復(fù)3次。
1.7明膠酶譜實驗
各組細胞經(jīng)含藥無血清培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h后,4℃,相對離心力200×g,離心10min,收集細胞培養(yǎng)上清,細胞則計數(shù)。配制8%分離膠和5%濃縮膠,分離膠中含0.1%(W/V)明膠。按細胞數(shù)折算出相同細胞數(shù)所對應(yīng)的培養(yǎng)上清體積,并按此加樣電泳。電泳完畢后,剝離凝膠,以蒸餾水漂洗后,移入100 m L 2.5%TritonX-100溶液中,在搖床上低速搖動30min,洗脫SDS。隨后將凝膠移入100 mL明膠酶緩沖液(50 mmol/L Tris-HCl,pH 7.5,10 mmol/L CaCl2,200 mmol/L NaCl,1μmol/L ZnCl2),37℃溫育16 h。凝膠經(jīng)蒸餾水漂洗后,以0.1%考馬斯亮藍R-250染色4 h。蒸餾水漂洗后,在脫色液(冰醋酸∶甲醇∶水=10∶45∶45)中脫色至對照組出現(xiàn)明顯、清晰的負染條帶。凝膠在EC3凝膠成像系統(tǒng)中掃描照相。
1.8Ch IP實驗
采用Thermo Fisher Scientific的Agarose ChIP試劑盒進行。在經(jīng)不同濃度SKN處理的細胞中加入終濃度1%的甲醛,孵育10min。隨后加入含蛋白酶抑制劑的裂解液裂解細胞,并加入微球菌核酸酶孵育5 min。隨后加入抗Runx2抗體(終濃度1∶50)沉淀蛋白質(zhì)-DNA復(fù)合物,并以抗兔IgG和抗RNA聚合酶Ⅱ抗體作為陰性對照和陽性對照?;厥铡⒓兓疍NA。隨后采用Phusion?High-Fidelity PCR試劑盒擴增純化后的DNA,目的片段為MMP-9(GeneBank號:NM_004994)啟動子區(qū)內(nèi)的Runx2結(jié)合區(qū)域(-1133 bp:ACTCCAG)。上游引物和下游引物分別為:5'-TGG AGC AGG GCT GGA GA-3'和5'-CCT GCC AAA AGA CCA TGA TTC T-3'。擴增條件為:95°C 15min后進入30個循環(huán)的擴增:95℃15 s,56℃30 s,72℃30 s。循環(huán)結(jié)束后,RCP產(chǎn)物置于72℃10 min。實驗中,采用未經(jīng)共沉淀處理的DNA作為input對照,其余處理與共沉淀組相同。
1.9蛋白提取和W estern blot檢測蛋白表達
收集各處理組細胞,采用總蛋白提取試劑盒(碧云天,P0027)提取總蛋白,并測定含量。取等量蛋白在10%的SDS-聚丙烯酰胺凝膠中電泳,電泳結(jié)束后,轉(zhuǎn)膜、封閉,加入一抗(1∶500)4℃孵育過夜,TTBS洗膜,將二抗按1∶1000稀釋后與硝酸纖維素膜室溫孵育1 h。經(jīng)過2次洗滌后,加入顯色劑顯色、拍照。
1.10統(tǒng)計學(xué)方法
應(yīng)用SPSS 13.0統(tǒng)計軟件包進行分析,計量資料采用均數(shù)±標準差(x±s)表示,采用單因素方差分析,方差齊性采用LSD檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1SKN對MDA-MB-231細胞體外遷移能力的影響極顯著差異,差異有高度統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。
2.3SKN對MMPs活性的影響
圖3所示為SKN對MMPs活性的影響。SKN可顯著抑制MMP-9對明膠的分解,而對于MMP-2的分解作用則沒有明顯影響(圖3A)。Western blot結(jié)果
圖2 SKN對MDA-MB-231細胞體外侵襲能力的影響
與空白組比較(圖1A),經(jīng)25 ng/mLEGF孵育24 h后,MDA-MB-231細胞向中央空白區(qū)域遷移的細胞數(shù)量顯著增加(圖1B)。而陽性對照藥BB-94和SKN均可顯著抑制MDA-MB-231細胞的這種遷移能力,并呈現(xiàn)劑量依賴關(guān)系(圖1C~E)。
圖1 SKN對MDA-MB-231細胞體外遷移能力的影響
2.2SKN對MDA-MB-231細胞體外侵襲能力的影響
圖2所示為SKN對MDA-MB-231細胞體外侵襲能力的影響??瞻捉M的侵襲細胞數(shù)為(738.5±126.1)個,而各SKN劑量組的侵襲細胞數(shù)分別為(514.3±76.8)、(426.3±87.0)個,與空白組比較差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),其中20μmol/L劑量組的抑制作用呈現(xiàn)顯示,SKN可顯著抑制MMP-9的表達(P<0.01,圖3B)。提示SKN可能可以通過抑制MMP-9的表達,從而抑制MDA-MB-231細胞的體外遷移和侵襲。
2.4SKN對MDA-MB-231細胞Runx2活性的影響
Ch IP實驗結(jié)果顯示,SKN可顯著抑制Runx2與MMP-9基因啟動子區(qū)域內(nèi)的靶序列結(jié)合,并呈現(xiàn)劑量依賴性(圖4A)。Western blot結(jié)果顯示,SKN可顯著抑制磷酸化Runx2的表達,而對Runx2總蛋白的表達則無顯著影響(圖4B),提示SKN可能可以通過抑制Runx2的活化,下調(diào)其轉(zhuǎn)錄調(diào)控活性。
圖3 SKN對MDA-MB-231細胞MMPs的影響
圖4 SKN對MDA-MB-231細胞Runx2活性的影響
紫草為傳統(tǒng)中藥,其化學(xué)成分復(fù)雜、藥理作用廣泛,抗腫瘤作用是其中之一。作為紫草的主要活性成分,SKN及其衍生物具有誘導(dǎo)腫瘤細胞凋亡[5]、激活促細胞分裂原激活蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)[6]、抑制蛋白酪氨酸激酶和DNA拓撲異構(gòu)酶Ⅰ的活性[6-7]。鑒于紫草良好的臨床療效和廣泛的民間使用基礎(chǔ),本文探討了SKN的體外抗轉(zhuǎn)移作用及其可能的作用機制,為紫草的深度開發(fā)和利用提供資料。
本研究發(fā)現(xiàn),SKN可顯著抑制人乳腺癌細胞系MDA-MB-231的體外遷移和侵襲能力。進一步研究發(fā)現(xiàn),SKN可顯著抑制乳腺癌細胞MMP-9的表達,從而抑制其活性。另外,SKN還可顯著降低磷酸化Runx2的表達,并下調(diào)Runx2與MMP-9基因啟動子區(qū)內(nèi)特定序列的結(jié)合能力。
Runx2又稱核心結(jié)合因子a1(core-binding factor a1,CBFA1),屬于runt結(jié)構(gòu)域基因家族的轉(zhuǎn)錄因子,目前已發(fā)現(xiàn)該家族包括三個成員,即Runx1、Runx2和Runx3,它們的共同特點是在分子結(jié)構(gòu)中含有一個由128個氨基酸組成的高度保守的DNA結(jié)合結(jié)構(gòu)域——runt結(jié)構(gòu)域[8]。在成骨細胞分化和骨形態(tài)的形成過程中,Runx2扮演了非常重要的作用[9-11]。近年來,研究顯示作為一種DNA結(jié)合的轉(zhuǎn)錄因子,Runx2通過調(diào)控其靶基因的表達,在乳腺癌的轉(zhuǎn)移過程中扮演重要角色,是一個關(guān)鍵性的轉(zhuǎn)移因子,并成為轉(zhuǎn)移性乳腺癌治療藥物設(shè)計的潛在靶點[12-13]。在轉(zhuǎn)移能力較強的乳腺癌細胞系MDA-MB-231中,Runx2異?;罨藘?nèi)的表達及活性明顯高于低轉(zhuǎn)移性乳腺癌細胞系MCF-7[13]。研究人員通過點突變方法,破壞Runx2基因形成轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)復(fù)合物的能力,可以使得表達該突變蛋白的MDA-MB-231細胞體外侵襲能力以及體內(nèi)形成溶骨性骨損傷的特性下降。另外將這種帶有突變Runx2基因的細胞接種至免疫缺陷小鼠的脛骨骨髓,結(jié)果發(fā)現(xiàn)與其親本細胞比較,其腫瘤大小明顯降低,同時骨髓內(nèi)腫瘤引起的溶骨性疾病完全消失[14]。此外,Chimge等[15]的研究還表明,Runx2也參與了乳腺癌細胞上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化的調(diào)控。
MMPs是一組結(jié)構(gòu)和功能相關(guān)的鋅離子依賴蛋白酶。目前已經(jīng)發(fā)現(xiàn)了23種人MMPs,其中17種為可溶性MMPs[16]。這一蛋白酶家族成員通過水解細胞外基質(zhì)、調(diào)節(jié)細胞黏附、遷移等方式廣泛參與腫瘤細胞的侵襲和轉(zhuǎn)移[16]。研究表明,多種MMPs家族成員均為Runx2的靶點。Jiménez等[17]和Selvamurugan等[18]均證實在MDA-MB-231細胞的MMP-13啟動子區(qū)內(nèi)存在2個Runx2結(jié)合位點。Pratap等[19-20]的研究則提示MMP-9是Runx2下游的另一個調(diào)控靶點。研究人員發(fā)現(xiàn),在Runx2突變的小鼠內(nèi),MMP-9的表達幾乎完全被抑制;ChIP和EMSA實驗顯示,在MMP-9基因啟動子區(qū)內(nèi)有大量Runx2蛋白募集。進一步的knock-in和knock-out實驗也提示了MMP-9的表達可以調(diào)控MMP-9基因的表達,從而影響腫瘤細胞的轉(zhuǎn)移特性。
綜上所述,本研究結(jié)果提示,SKN可顯著抑制乳腺癌細胞的體外遷移和侵襲能力,其機制可能與抑制Runx2的活化,進而q降低Runx2的轉(zhuǎn)錄活性、抑制MMP-9表達有關(guān)。
[1]國家藥典委員會.中國藥典[S].一部.北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2015.
[2]黃河,劉宗潮.紫草素及其衍生物的抗腫瘤作用[J].腫瘤防治雜志,2005,12(1):75-78.
[3]黎玉紅,周曉榮.新疆紫草的研究進展[J].新疆中醫(yī)藥,2002,20(4):75-77.
[4]WangW,Chen B,Zou R,et al.Codonolactone,a sesquiterpene lactone isolated from Chloranthus henryi Hemsl,inhibits breast cancer cell invasion,migration and metastasis by downregulating the transcriptional activity of Runx2[J]. Int JOncol,2014,45(5):1891-1900.
[5]Gaddipati JP,Mani H,Shefali,et al.Inhibition of growth and regulation of IGFs and VEGF in human prostate cancer cell lines by shikonin analogue 93/637(SA)[J].Anticancer Res,2000,20(4):2547-2552.
[6]Singh F,Gao D,Lebwohl MG,et al.Shikonin modulates cell proliferation by inhibiting epidermal growth factor receptor signaling in human epidermoid carcinoma cells[J]. Cancer Lett,2003,200(2):115-121.
[7]Ahn BZ,Baik KU,Kweon GR,et al.Acylshikonin analogues:synthesis and inhibition of DNA topoisomerase-I[J].JMed Chem,1995,38(6):1044-1047.
[8]Lian JB,Stein JL,Stein GS,et al.Runx2/Cbfa1 functions:diverse regulation of gene transcription by chromatin remodeling and co-regulatory protein interactions[J].Connect Tissue Res,2003,44(S1):141-148.
[9]Karsenty G.Role of Cbfa1 in osteoblast differentiation and function[J].Semin Cell Dev Biol,2000,11(5):343-346.
[10]Komori T.Runx2,amultifunctional transcription factor in skeletal development[J].JCell Biochem,2002,87(1):1-8.
[11]Stein GS,Lian JB,van Wijnen AJ,etal.Runx2 control of organization,assembly and activity of the regulatory machinery for skeletal gene expression[J].Oncogene,2004,23(24):4315-4329.
[12]Owens TW,Rogers RL,Best SA,et al.Runx2 is a novel regulator ofmammary epithelial cell fate in development and breast cancer[J].Cancer Res,2014,74(18):5277-5286.
[13]Shore P.A role for Runx2 in normalmammary gland and breast cancer bonemetastasis[J].JCell Biochem,2005,96(3):484-489.
[14]Blyth K,Cameron ER,Neil JC.The RUNX genes:gain or loss of function in cancer[J].NatRev Cancer,2005,5(5):376-387.
[15]Chimge NO,Baniwal SK,Little GH,et al.Regulation of breast cancer metastasis by Runx2 and estrogen signaling:the role of SNAI2[J].Breast Cancer Res,2011,13(6):R127.
[16]Chambers AF and Matrisian LM.Changing views of the role ofmatrixmetalloproteinases in metastasis[J].JNatl Cancer Inst,1997,89(17):1260-1270.
[17]Jiménez MJ,Balbín M,López JM,et al.Collagenase 3 is a target of Cbfa1,a transcription factor of the runt gene family involved in bone formation[J].Mol Cell Biol,1999,19(6):4431-4442.
[18]Selvamurugan N,Kwok S,Partridge NC.Smad3 interacts with JunB and Cbfa1/Runx2 for transforming growth factor-beta1-stimulated collagenase-3 expression in human breast cancer cells[J].JBiolChem,2004,279(26):27764-27773.
[19]Pratap J,Javed A,Languino LR.The Runx2 osteogenic transcription factor regulates matrix metalloproteinase 9 in bonemetastatic cancercellsand controlscellinvasion[J]. Mol Cell Biol,2005,25(19):8581-8591.
[20]Pratap J,Imbalzano KM,Underwood JM,et al.Ectopic runx2 expression in mammary epithelial cells disrupts formation of normal acini structure:implications for breast cancer progression[J].Cancer Res,2009,69(17):6807-6814.
Influence of shikonin for the motility in vitro of breast cancer cells via down-regulating transcriptional activity of Runx2
WANG Fang1LU Hong2JIA Juandi2HANWei2FU Jianjiang3
1.Department of Nephrology,Chinese PLA General Hospital,Beijing 100853,China;2.Network and Modern Education Technology Center,JiangxiUniversity of Traditional Chinese Medicine,Jiangxi Province,Nanchang 330004,China;3.School of Pharmacy,Jiangxi University of Traditional Chinese Medicine,Jiangxi Province,Nanchang 330004,China
Ob jective To investigate the influence of shikonin(SKN)for the motility in vitro of breast cancer cells. M ethods The influence of SKN for themigration and invasion in vitro of MDA-MB-231 cells was detected by OrisTMmigration assay and reconstituted basementmembrane invasion assay.Gelatin zymography was used to observe the effects of SKN on MDA-MB-231 cells in secreting matrix metalloproteinase(MMPs).Chromatin immunoprecipitation(Ch IP)assay and Western blot test were used to detect the influence of SKN for transcriptional activity and expression of Runx2 in MDA-MB-231 cells.Results After administration,20μmol/L SKN could significantly inhibit the cellmigration induced by epidermal growth factor;in the reconstituted basementmembrane invasion assay,the number of invaded cells of 10,20μmol/L of SKN was(514.3±76.8),(426.3±87.0)respectively,which had statistically significant differences compared with that of blank group(738.5±126.1)(P<0.05);Gelatin zymography showed that SKN could down-regulate the activity ofmatrixmetalloproteinase-9(MMP-9);furtherWestern blot showed that,the expression of MMP-9 was decreased significantly(P<0.01).The Ch IP assay showed that SKN could down-regulate the combining capacity of Runx2 with the specific sequences of HTT gene-linked polymorphic region in MMP-9,while the results of Western blot found that SKN could inhibit the expression of phosphorylation Runx2(P<0.01).Conclusion SKN has significant inhibitory effect for the motility in vitro of MDA-MB-231 cells,which may be related to inhibiting excitation of Runx2,down-regulating the transcriptional activity of Runx2,inhibiting the expression of MMP-9.
Shikonin;Motility in vitro;Matrix metalloproteinase-9;Runx2;Breast cancer
R737.9
A
1673-7210(2016)06(c)-0004-05
國家自然科學(xué)基金資助項目(81160530、81260656、81560639)。
付劍江(1975.9-),博士,副教授,從事中藥抗腫瘤藥理工作。
(2016-02-26本文編輯:張瑜杰)