陳玉珂,藺麗麗,劉洪建,王秋舉,楊翼羽,羅 莎,高永生,張東鳴
(1 吉林農(nóng)業(yè)大學(xué) 動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,吉林 長春130118;2 吉林省水產(chǎn)技術(shù)推廣總站,吉林 長春 130012)
?
L-肉堿對圓型臂尾輪蟲種群增長和個(gè)體大小的影響
陳玉珂1,藺麗麗2,劉洪建2,王秋舉1,楊翼羽1,羅莎1,高永生1,張東鳴1
(1 吉林農(nóng)業(yè)大學(xué) 動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,吉林 長春130118;2 吉林省水產(chǎn)技術(shù)推廣總站,吉林 長春 130012)
【目的】 探索L-肉堿對圓型臂尾輪蟲(Brachionusrotundiformis)(簡稱輪蟲)種群增長、懷卵率和個(gè)體大小的影響。【方法】 用0.012 5 mg/mL氯霉素作為輪蟲培養(yǎng)液中的抑菌藥物,1 mg/L L-肉堿作為輪蟲的營養(yǎng)強(qiáng)化劑,以正常培養(yǎng)條件下不添加L-肉堿和氯霉素的培養(yǎng)組為對照,分別設(shè)添加L-肉堿、氯霉素和L-肉堿+氯霉素處理,以純酵母菌投喂培養(yǎng)輪蟲5 d。每天測定各組輪蟲的種群密度、培養(yǎng)液中的細(xì)菌含量以及第5天時(shí)各組輪蟲的背甲長、背甲寬?!窘Y(jié)果】 3~5 d L-肉堿組的細(xì)菌含量均顯著高于其他3組(P<0.05);2~4 d氯霉素組和L-肉堿+氯霉素組的細(xì)菌含量顯著低于對照組(P<0.05),但這兩組之間的差異不顯著(P>0.05);第5天除L-肉堿組外其他3組之間細(xì)菌含量差異不顯著(P>0.05)。1~5 d各處理組輪蟲的種群密度均呈上升趨勢,L-肉堿組輪蟲的種群密度均高于其他3組。各組輪蟲的懷卵率差異不顯著(P>0.05);添加氯霉素組輪蟲的背甲長和背甲寬顯著大于其他3組(P<0.05)?!窘Y(jié)論】 L-肉堿對輪蟲種群生長和繁殖的影響可能主要是通過影響細(xì)菌數(shù)量而起作用的。
圓型臂尾輪蟲;L-肉堿;氯霉素;種群增長;懷卵率
L-肉堿是生物體內(nèi)參與調(diào)控脂肪酸代謝的重要因子,也是重要的微量營養(yǎng)素。近年來,有關(guān)L-肉堿在水產(chǎn)動物營養(yǎng)領(lǐng)域的研究取得了許多成果[1-5],但對其在水產(chǎn)生物餌料領(lǐng)域的研究很少[6-8]。Zhang等[6]研究了L-肉堿對圓型臂尾輪蟲(Brachionusrotundiformis)(以下簡稱輪蟲)種群增長、懷卵率和個(gè)體大小的影響,發(fā)現(xiàn)適宜質(zhì)量濃度(1~100 mg/L)的L-肉堿強(qiáng)化對輪蟲種群增長和繁殖均有顯著的促進(jìn)作用,并提出L-肉堿很可能是通過參與輪蟲的脂肪酸代謝來促進(jìn)輪蟲種群增長的。然而,Wilde等[7]研究發(fā)現(xiàn),L-肉堿能夠促進(jìn)輪蟲種群增長與其參與輪蟲的脂肪酸代謝沒有關(guān)系,而是因?yàn)檩喯x培養(yǎng)水體中有很多細(xì)菌,這些細(xì)菌不僅對輪蟲的種群增長和繁殖起到調(diào)節(jié)作用,還會影響輪蟲對L-肉堿的利用程度。有研究報(bào)道,L-肉堿可以促進(jìn)細(xì)菌的生長,且不同種類的細(xì)菌會通過不同方式代謝L-肉堿[9-10]。因此,L-肉堿能夠促進(jìn)輪蟲種群增長和繁殖的作用機(jī)理可能主要有以下兩點(diǎn):一是L-肉堿直接作用于輪蟲,通過參與輪蟲體內(nèi)的某種代謝促進(jìn)輪蟲的種群增長和繁殖;二是L-肉堿首先作用于細(xì)菌,促進(jìn)細(xì)菌的代謝和繁殖,為輪蟲提供豐富的餌料,進(jìn)而促進(jìn)輪蟲的種群增長和繁殖[6]。本試驗(yàn)以氯霉素作為抑菌劑,采用正常培養(yǎng)與抑菌培養(yǎng)兩種培養(yǎng)方式,探討L-肉堿對輪蟲種群增長和繁殖的影響,旨在探索輪蟲強(qiáng)化過程中L-肉堿、輪蟲和細(xì)菌的相互關(guān)系,為進(jìn)一步揭示細(xì)菌在L-肉堿強(qiáng)化輪蟲中的作用提供參考。
1.1試驗(yàn)材料
圓型臂尾輪蟲,由吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)水產(chǎn)實(shí)驗(yàn)室提供;L-肉堿(貨號:C0158),購自Sigma公司;97-B型“魚蝦寶”速溶海水晶,廣東茂名鹽業(yè)總公司生產(chǎn);“安琪”牌高活性干酵母,湖北安琪酵母股份有限公司生產(chǎn);氯霉素,成都錦華藥業(yè)有限責(zé)任公司生產(chǎn),使用前將其配成高濃度的溶液。
1.2方法
1.2.1輪蟲的培養(yǎng)試驗(yàn)前輪蟲在裝鹽水的10 L廣口瓶中培養(yǎng)(鹽度為20‰(質(zhì)量分?jǐn)?shù),下同)),培養(yǎng)時(shí)保持連續(xù)充氣,自然光照,培養(yǎng)溫度為(25±1) ℃,輪蟲餌料為酵母溶液,每天投餌一次,餌料投喂量為 8×106mL-1。
1.2.2培養(yǎng)用水的配制試驗(yàn)用海水有兩種:(1)人工海水。先用沸水將海水晶融化,再用自來水與其混合配制成鹽度為20‰的人工海水,經(jīng)55 μm篩絹過濾后再充分曝氣24 h,備用。(2)無菌海水。將人工海水高壓滅菌(103 kPa、121 ℃下滅菌30 min)。
1.2.3酵母投喂量的確定及純酵母的制備試驗(yàn)開始前,先進(jìn)行酵母投喂量預(yù)試驗(yàn):選取活力較好且不攜卵的輪蟲作為試驗(yàn)對象,將輪蟲按照1 mL-1的密度接種在不同密度(1,5,8,10,12,15,20mL-1)的酵母溶液中,(25±1) ℃、自然光照下培養(yǎng)48 h,培養(yǎng)體積為3 mL,培養(yǎng)液由酵母和人工海水配制而成,鹽度為20‰,期間每12 h更換1次培養(yǎng)液,確保各組培養(yǎng)液中酵母細(xì)胞密度的相對恒定。每個(gè)處理6次重復(fù)。最終根據(jù)各組輪蟲的瞬時(shí)增長率確定酵母的最佳投喂量為8×106mL-1。
純酵母的制備:用干酵母與無菌海水配成酵母菌溶液,將菌液接種于固體馬鈴薯培養(yǎng)基上培養(yǎng)24 h,然后挑取單個(gè)酵母菌落,接種于液體馬鈴薯培養(yǎng)基中,再置于恒溫水浴振蕩搖床中振蕩培養(yǎng)48 h。投喂前將純培養(yǎng)的酵母溶液用低溫冷凍離心機(jī)離心20 min(轉(zhuǎn)速為3 000 r/min),棄去上清液,底部固體即為純酵母菌。
1.3試驗(yàn)設(shè)計(jì)
試驗(yàn)共設(shè)4個(gè)處理,分別為對照組、L-肉堿組、氯霉素組、L-肉堿+氯霉素組,各組培養(yǎng)條件見表1。培養(yǎng)容器為1 L錐形瓶,培養(yǎng)液體積為500 mL,輪蟲接種密度為250 mL-1,酵母投喂量為8×106mL-1,肉堿添加量為1 mg/L(僅在試驗(yàn)開始時(shí)添加),氯霉素添加量為0.012 5 mg/mL[11](每24 h添加1次),每組3個(gè)重復(fù)。試驗(yàn)在恒溫培養(yǎng)箱中進(jìn)行,溫度為(25±1) ℃,試驗(yàn)期5 d。所有儀器設(shè)備在試驗(yàn)開始前均進(jìn)行滅菌處理。
表 1 不同組圓型臂尾輪蟲的處理?xiàng)l件Table 1 Treatment conditions of Brachionus rotundiformis in different treatments
注:“+”表示添加;“-”表示不添加。
Note:“+” Indicates addition;“ -” Indicates no addition.
1.4測定指標(biāo)及方法
1.4.1細(xì)菌含量每24 h從各錐形瓶中抽取5 mL輪蟲培養(yǎng)液,經(jīng)孔徑55 μm篩絹過濾,將濾液稀釋10-2,10-3,10-4倍后涂布于2216E固體海水培養(yǎng)基上,培養(yǎng)36 h,統(tǒng)計(jì)菌落數(shù)[12]。
1.4.2輪蟲的種群密度和懷卵率每24 h從各錐形瓶中隨機(jī)取3 mL輪蟲培養(yǎng)液,統(tǒng)計(jì)輪蟲的種群密度和懷卵率[6]。取樣在無菌操作臺上進(jìn)行。
懷卵率=卵個(gè)數(shù)/輪蟲總數(shù)量×100%。
1.4.3輪蟲的個(gè)體大小在試驗(yàn)最后一天,從每試驗(yàn)組中隨機(jī)取120個(gè)輪蟲,用體積分?jǐn)?shù)6.5%的鹽酸固定,測定其背甲長和背甲寬[6]。
1.5數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析
應(yīng)用單因子方差分析(One-way ANOVA)比較各試驗(yàn)組輪蟲的種群密度、懷卵率及背甲長、寬的差異顯著性;應(yīng)用LSD多重檢驗(yàn)比較各處理差異,差異顯著性水平值設(shè)為0.05,所有統(tǒng)計(jì)分析均采用SPSS16.0軟件完成。誤差和置信區(qū)間用“平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(Mean±SE)”表示。
2.1L-肉堿對輪蟲培養(yǎng)液中細(xì)菌含量的影響
L-肉堿對圓型臂尾輪蟲培養(yǎng)液中細(xì)菌數(shù)量的影響結(jié)果見圖1。
圖 1L-肉堿對圓型臂尾輪蟲培養(yǎng)液中細(xì)菌含量的影響
圖柱上不同字母表示各處理組間差異顯著(P<0.05)。圖2同
Fig.1Effects of L-carnitine on bacteria content ofBrachionusrotundiformisin different treatments
Different letters indicate significant difference among treatments(P<0.05).The same as Fig.2
由圖1可見,4個(gè)處理輪蟲培養(yǎng)液中細(xì)菌含量均隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長而增多。3~5 d L-肉堿組的細(xì)菌含量均顯著高于其他3組(P<0.05);2~4 d氯霉素組和L-肉堿+氯霉素組的細(xì)菌含量顯著低于對照組(P<0.05),但這兩組之間的差異不顯著(P>0.05);第5 天除L-肉堿組外其他3組之間細(xì)菌含量差異不顯著(P>0.05)。2~5 d氯霉素組的細(xì)菌含量分別為L-肉堿組的21.45%,51.53%,60.02%和 61.66%,L-肉堿組的細(xì)菌數(shù)量分別為對照組的1.21,1.4,1.05和1.55倍。
2.2L-肉堿對輪蟲種群密度的影響
圖2顯示,隨培養(yǎng)時(shí)間的延長,4個(gè)處理組輪蟲的種群密度均呈上升趨勢,其中L-肉堿組輪蟲的種群密度均高于其他3組。1~3 d各處理組輪蟲的種群密度無顯著差異(P>0.05);4~5 d L-肉堿組輪蟲的種群密度顯著高于其他3組(P<0.05),而其他3組之間差異不顯著(P>0.05)。
2.3L-肉堿對輪蟲懷卵率的影響
圖2顯示,4個(gè)處理組輪蟲懷卵率均在試驗(yàn)第2天達(dá)到峰值。除第2天外,其他4 d對照組和L-肉堿+氯霉素組輪蟲的懷卵率均高于L-肉堿組和氯霉素組,但各組輪蟲的懷卵率差異均未達(dá)到顯著水平(P>0.05)。
圖 2L-肉堿對圓型臂尾輪蟲種群密度和懷卵率的影響
Fig.2Effects of L-carnitine on population density and egg ratio ofBrachionusrotundiformis
2.4L-肉堿對輪蟲個(gè)體大小的影響
圖3顯示,氯霉素組和L-肉堿+氯霉素組輪蟲的背甲長差異不顯著,但均極顯著大于對照組和L-肉堿組(P<0.01);L-肉堿組輪蟲的背甲長極顯著大于對照組(P<0.01)。氯霉素組的輪蟲背甲寬顯著大于其他3組(P<0.05),而其他3組差異不顯著(P>0.05)。
圖 3 L-肉堿對輪蟲個(gè)體大小的影響(n=120)圖柱上不同大寫字母表示各處理組間 背甲長差異極顯著(P<0.01);不同小寫字母表示各處理組間背甲寬差異顯著(P<0.05)Fig.3 Effects of L-carnitine on body size ofBrachionus rotundiformis (n=120) Different capitals letters indicate extremely significant difference in length among treatments(P<0.01) and different lowercase indicate significant difference in width among treatments(P<0.05)
高等動物體內(nèi)L-肉堿的主要功能是在線粒體內(nèi)參與機(jī)體的β氧化,但細(xì)菌對L-肉堿的利用與高等動物不同,因?yàn)榧?xì)菌體內(nèi)沒有線粒體[13],可能不能進(jìn)行β氧化反應(yīng)[14-15],所以細(xì)菌可能不是通過脂肪酸β氧化的方式利用L-肉堿的,而是將L-肉堿作為能量來源并將其代謝成其他物質(zhì)[9-10]。不同種類的細(xì)菌代謝L-肉堿的方式不同:第1種方式是一些腸道桿菌,如大腸桿菌(Escherichiacoil)、變形桿菌(Proteusvulgaris)和沙門氏菌(Salmonellatyphimurium)等,能在厭氧及碳源、氮源存在的條件下將L-肉堿經(jīng)巴豆甜菜堿轉(zhuǎn)變?yōu)棣?丁基甜菜堿;第2種方式是不動桿菌(Acinetobacter)等細(xì)菌以L-肉堿為惟一的碳源,分解其碳架而形成三甲胺;第3種方式是一些細(xì)菌在有氧條件下以L-肉堿為惟一的碳源及氮源,如假單胞菌(Pseudomonas)[10]。海水輪蟲培養(yǎng)水體中的細(xì)菌主要屬于假單胞桿菌屬(Pseudomonas)、不動桿菌屬(Acinetobacter)、弧菌屬(Vibrio)、黃桿菌屬(Flavobacterium)[16],其中假單胞菌屬和不動桿菌屬的細(xì)菌數(shù)量較多,所以本試驗(yàn)輪蟲培養(yǎng)液中的細(xì)菌應(yīng)是主要通過后2種方式利用L-肉堿。本試驗(yàn)結(jié)果顯示,3~5 d L-肉堿組的細(xì)菌數(shù)量顯著高于其他3組(P<0.05),4~5 d輪蟲種群密度顯著高于其他3組(P<0.05),說明L-肉堿對細(xì)菌的影響比對輪蟲種群密度的影響明顯;各組細(xì)菌含量在第2 天就出現(xiàn)了顯著差異,而各組輪蟲的種群密度到第4 天才有顯著性差異。這說明L-肉堿很可能是先作用于細(xì)菌,促進(jìn)細(xì)菌的繁殖,之后細(xì)菌又作為輪蟲的餌料促進(jìn)了輪蟲的種群增長。輪蟲培養(yǎng)液中的一些細(xì)菌能夠?qū)-肉堿代謝成其自身需要的能量和營養(yǎng)物質(zhì)[10,16],因此在輪蟲培養(yǎng)液中添加L-肉堿能夠促進(jìn)細(xì)菌的繁殖。細(xì)菌數(shù)量的增多,不僅為輪蟲提供了豐富的餌料,促進(jìn)輪蟲的生長繁殖,而且細(xì)菌在生長和繁殖過程中產(chǎn)生的大量代謝產(chǎn)物(包括氨基酸、核苷酸、多糖、脂類和維生素等[17]),對輪蟲的生長也有促進(jìn)作用[18-21]。本試驗(yàn)結(jié)果還顯示,2~4 d氯霉素組和L-肉堿+氯霉素組的細(xì)菌數(shù)量顯著低于對照組(P<0.05),而到第5 天這3組的細(xì)菌含量沒有顯著差異(P>0.05),這很可能與氯霉素的自身特性和細(xì)菌耐藥性的產(chǎn)生有關(guān)。氯霉素在臨床上的抑菌給藥劑量為0.02~0.08 mg/(g·d),在養(yǎng)殖實(shí)踐中為減少藥物對養(yǎng)殖動物的毒性常適當(dāng)降低其給藥劑量,本試驗(yàn)采用的氯霉素質(zhì)量濃度為0.012 5 mg/mL,比臨床用量略低,只能起到抑菌的效果,不能絕對殺死細(xì)菌[11],且氯霉素在水生動物體內(nèi)的半衰期約為24 h,24 h后殺菌作用就會降低[22];有研究表明,在連續(xù)使用低劑量抗生素的環(huán)境下,細(xì)菌會逐漸產(chǎn)生一定的抗藥性[23]。因此,在整個(gè)試驗(yàn)過程中,對照組、氯霉素組和L-肉堿+氯霉素組之間細(xì)菌含量的變化是符合實(shí)際的。王金秋等[11]研究表明,0.012 5 mg/mL氯霉素在有效抑制細(xì)菌生長的同時(shí),能夠通過影響輪蟲生殖方式促進(jìn)輪蟲種群增長,因此本試驗(yàn)中 2~4 d對照組與氯霉素處理組(氯霉素組和L-肉堿+氯霉素組)的細(xì)菌含量雖然差異顯著(P<0.05),但輪蟲的種群密度并沒有顯著差異(P>0.05)。同時(shí),本研究中各組輪蟲懷卵率并沒有顯著差異(P>0.05),這與Zhang等[6]和王金秋等[11]的研究結(jié)果相似。添加的1 mg/L L-肉堿主要被輪蟲培養(yǎng)液中細(xì)菌代謝所利用,促進(jìn)了細(xì)菌的繁殖,不能影響輪蟲的生殖方式和懷卵率。而添加0.012 5 mg/mL氯霉素能夠抑制輪蟲種群中的有性生殖,保持輪蟲的孤雌生殖狀態(tài),但不會提高輪蟲懷卵率。
本試驗(yàn)結(jié)果表明,氯霉素對輪蟲個(gè)體大小有顯著影響(P<0.05),氯霉素組輪蟲背甲長和背甲寬顯著大于L-肉堿組和對照組(P<0.05)。輪蟲是魚、蝦、蟹等水生動物的優(yōu)良餌料,其個(gè)體大小會影響某些開口魚苗的攝食率。大量研究結(jié)果表明,重金屬、食物含量等因素均會通過影響輪蟲的種群密度影響輪蟲的個(gè)體大小[24-25]。然而,本研究中氯霉素處理組(氯霉素組和L-肉堿+氯霉素組)與對照組輪蟲種群密度并沒有顯著差異,這說明氯霉素對輪蟲個(gè)體大小的影響不是通過影響輪蟲種群密度產(chǎn)生的。黨志超等[26]研究了三丁基錫(TBT)對褶皺臂尾輪蟲(Brachionusplicatilis)的影響,結(jié)果表明2.0 μg/L以上的三丁基錫(TBT)可以導(dǎo)致輪蟲個(gè)體變大。三丁基錫和氯霉素都有殺菌作用,它們在輪蟲培養(yǎng)液中很可能會抑制輪蟲的生物反應(yīng)速率,進(jìn)而影響輪蟲的個(gè)體大小,其具體機(jī)理有待于進(jìn)一步研究。
[1]Rigault C,Bernard A,Demarquoy J,et al.Changes in L-carnitine content of fish and meat during domestic cooking [J].Meat Science,2008,78(3):331-335.
[2]Harpaz S.L-carnitine and its attributed functions in fish culture and nutrition:a review [J].Aquaculture,2005,249(1/2/3/4):3-21.
[3]Harpaz S,Becker K,Blum R.The effect of dietary L-carnitine supplementation on cold tolerance and growth of the ornamental cichlid fish Pelvicachromis pulcher-preliminary results [J].Thermal Biology,1999,24(1):57-62.
[4]Gutieres S,Damon M,Panserat S,et al.Cloning and tissue distribution of a carnitine palmitoyltransferasⅠgene in rainbow trout (Oncorhynchusmykiss) [J].Comparative Biochemistry and Physiology Part B,2003,135(1):139-151.
[5]Chatzifotis S,Takeuchi T,Seikai T.The effect of dietary carnitine supplementation on growth of red sea bream (Pagrusmajor) fingerlings at two levels of dietary lysine [J].Aquaculture,1996,147(3/4):235-248.
[6]Zhang D M,Yoshimatsu T,Furuse M.Effects of L-carnitine enrichment on the population growth,egg ratio and body size of the marine rotifer,Brachionusrotundiformis[J].Aquaculture, 2005, 248(1/2/3/4): 51-57.
[7]Wilde R D,Dierckens K, Bossier P.Rotifer (Brachionus“cayman”) culture performance improvement through L-carnitine addition is not related to fatty acid metabolism [J].Journal of Experimental Marine Biology and Ecology,2010,393(S1/2):114-123.
[8]Zhang D M,Yoshimatsu T,Furuse M.The presence of endogenous L-carnitine in live foods used for larviculture [J].Aquaculture,2006,255(1): 272-278.
[9]Rebouche C J,Seim H.Carnitine metabolism and its regulation in microorganisms and mammals [J].Annual Review of Nutrition,1998,18(1):39-61.
[10]Kleber H P.Bacterial carnitine metabolism [J].FEMS Microbiology Letters,1997,147(1):1-9.
[11]王金秋,周葉平,林雋姬,等.兩種抗生素對褶皺臂尾輪蟲種群增長的影響 [J].復(fù)旦學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2008,47(3):347-353.
Wang J Q,Zhou Y P,Lin J J,et al.Effects of two antibiotics on the population growth of rotiferBrachionusplicatilis[J].Journal of Fudan University (Natural Science),2008,47(3):347-353.
[12]Maeda M.Microbial processes in aquaculture [M].Tokyo:National Research Institute of Aquaculture,1999:42.
[13]Patrick F M.The use of membrane filtration and Marine Agar 2216E to enumerate marine heterotrophic bacteria [J].Aquaculture,1978,13(4):369-372.
[14]Kunau W,Dommes V,Schulz H.β-oxidation of fatty acids in mitochondria,peroxisomes,and bacteria:a century of continued progress [J].Progress in Lipid Research,1995,34(4):267-342.
[15]Hansen K H,Ahring B K,Raskin L.Quantification of syntrophic fatty acid-β-cxidizing bacteria in a mesophilic biogas reactor by oligonucleotide probe hybridization [J].Applied and Environmental Microbiology,1999,11(65):4767-4774.
[16]Prescott L M,Harley J P,Klein D A. Microbiology [M].New York:McGraw-Hill Higher Education,2004:20.
[17]車振明.微小生物學(xué) [M].武漢:華中科技大學(xué)出版社,2008:126-165.
Che Z M.Microbiology [M].Wuhan:Huazhong University of Science and Technology Press Co.Ltd,2008:126-165.
[18]Srivastava A,Stossc J,Hamre K.A study on enrichment of the rotiferBrachionus“Cayman” with iodine and selected vitamins [J].Aquaculture,2011,319(3/4):430-438.
[19]Haga Y,Tarui F,Ohta K,et al.Effect of light irradiation on dynamics of vitamin A compounds in rotifers and Artemia [J].Fisheries Science,2006,72(5):1020-1026.
[20]Hayashi M,Yukino T,Watanabe F,et al.Effect of vitamin B12-enriched thraustochytrids on the population growth of rotifers [J].Biosci Biotechnol Biochem,2007,71(1):222-225.
[21]Gallardo W G,Hagiwara A,Snell T W.Effect of juvenile hormone and serotonin(5-HT) on mixis induction of the rotiferBrachionusplicatilisMuller [J].Journal of Experimental Marine Biology and Ecology,2000,252(1):97-107.
[22]黃志勇,沈金燦,彭愛紅,等.鯉魚組織中氯霉素的代謝速率及其色譜-質(zhì)譜的表征方法研究 [J].中國食品學(xué)報(bào),2006,6(5):72-75.
Huang Z Y,Shen J C,Peng A H,et al.Studies on the metabolic rate of chloraphenicol inCyprinuscarpiolinnaeus and its characterization by HPLC-ESI-MS [J].Journal of Food Science and Technology,2006,6(5):72-75.
[23]呂玄文.淡水養(yǎng)殖池塘中氯霉素污染及為生物降解研究 [D].廣州:華南理工大學(xué),2009.
Lü X W.Inveatigation of chloramphenicol pollution in the frechwater aquaculture and the biodegradation of chloramphenicol [D].Guangzhou:South China University of Technology,2009.
[24]Sarma S S,Brena-Bustamante P,Nandini S.Body size and population growth ofBrachionuspatulus(Rotifera) in relation to heavy metal (copper and mercury) concentrations [J].Environmental Science and Health,2008,43(5):547-553.
[25]耿紅,席貽龍,胡好遠(yuǎn).食物濃度對萼花臂尾輪蟲種群增長、個(gè)體大小和卵大小的影響 [J].安徽師范大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2002,25(1): 59-62.
Geng H,Xi Y L,Hu H Y.The effect of food concentration on population growth,body size and egg size of the rotiferBrachionuscalyciflouus[J].Journal of Anhui Normal University (Natural Science),2002,25(1):59-62.
[26]黨志超,于春燕,李永祺.三丁基錫(TBT)對褶皺臂尾輪蟲(Brachionusplicatilis)的影響 [J].海洋環(huán)境科學(xué),1993,12(2):6-10.
Dang Z C,Yu C Y,Li Y Q,et al.Effects of tributyltin on the rotiferBrachionusplicatilis[J].Marine Environmental Science,1993,12(2):6-10.
Effects of L-carnitine on population growth and body size of rotifers,Brachionusrotundiformis
CHEN Yuke1,LIN Lili2,LIU Hongjian2,WANG Qiuju1,YANG Yiyu1,LUO Sha1,GAO Yongsheng1,ZHANG Dongming1
(1CollegeofAnimalScienceandTechnology,JilinAgriculturalUniversity,Changchun,Jilin130118,China;2FisheryTechnicalExtensionStationofJilinProvince,Changchun,Jilin130012,China)
【Objective】 The effects of L-carnitine(LC) on population growth,body size and egg ratio of rotifersBrachionusrotundiformiswere studied. 【Method】 Rotifers were enriched with 1 mg/L L-carnitine supplements dissolved in culturing medium on the first day in a 1 L batch culture trial for 5 days and fed with pure cultured yeast.The bacteria community in culture medium was controlled by daily addition of 0.012 5 mg/mL chloramphenicol.Four treatments including control group (no added chloramphenicol and carnitine),carnitine groups (LC groups),chloramphenicol groups (CAP groups),and carnitine+chloramphenicol groups(LC+CAP groups) were designed and the population density,bacterial quantity,lorica length and lorica width of each group were detected every day.【Result】 The bacteria number of carnitine groups was significantly (P<0.05) higher than that of other groups during 3-5 days.In comparison with the control,the bacteria numbers of CAP group and LC+CAP group were significantly lower (P<0.05) during 2-4 days,but there was no significant difference between them (P>0.05).There were no significant differences(P>0.05)in bacteria number among the control,CAP and LC+CAP in the 5th day.The population density in all treatments had an increase trend,with the highest value in LC treatment.No significant differences were found (P>0.05) in egg ratios of all groups.The daily addition of chloramphenicol significantly affected body size of treated rotifers,and the lorica length and lorica width of rotifers were significantly larger(P<0.05) in CAP treatment compared to other treatments.【Conclusion】 L-carnitine affected the population growth of rotifers through the effects on bacteria community.
Brachionusrotundiformis;L-carnitine;chloramphenicol;population growth;egg ratio
網(wǎng)絡(luò)出版時(shí)間:2016-07-1208:4510.13207/j.cnki.jnwafu.2016.08.002
2015-01-09
國家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(30671621,31372540,30972191);吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)青年啟動基金項(xiàng)目(201324);吉林省發(fā)改委產(chǎn)業(yè)技術(shù)研究與開發(fā)項(xiàng)目(2011002-1);東北老工業(yè)基地外貿(mào)發(fā)展項(xiàng)目
陳玉珂(1983-),男,河南鄭州人,博士,主要從事水生動物營養(yǎng)與飼料學(xué)研究。E-mail:chenyuke0316@163.com
張東鳴(1962-),男,吉林長春人,教授,博士,博士生導(dǎo)師,主要從事水生動物營養(yǎng)與飼料學(xué)研究。
E-mail:dongmingzhang0431@aliyun.com
S963.16
A
1671-9387(2016)08-0007-06
網(wǎng)絡(luò)出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/61.1390.S.20160712.0845.004.html