新城疫病毒F蛋白納米抗體的篩選及活性鑒定

高小龍，胡湘云，付向晶，王燕平，仝麗娜，王海新，王興龍，張淑霞，蕭　颯，杜恩岐，楊增岐

(西北農(nóng)林科技大學(xué) 動(dòng)物醫(yī)學(xué)院，楊凌 712100)

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新城疫病毒F蛋白納米抗體的篩選及活性鑒定

高小龍△，胡湘云△，付向晶，王燕平，仝麗娜，王海新，王興龍，張淑霞，蕭颯，杜恩岐*，楊增岐*

(西北農(nóng)林科技大學(xué) 動(dòng)物醫(yī)學(xué)院，楊凌 712100)

旨在篩選新城疫病毒(NDV)F蛋白的納米抗體，并對(duì)篩選的抗體活性進(jìn)行初步鑒定。以NDV F蛋白中和表位構(gòu)建誘餌，利用酵母雙雜交技術(shù)對(duì)雙峰駝天然重鏈抗體可變區(qū)(VHH)酵母雙雜交文庫(kù)進(jìn)行篩選，獲得4株VHH抗體序列。挑選其中2株最符合VHH特征的進(jìn)行原核表達(dá)與純化，并對(duì)2株VHH活性進(jìn)行鑒定。ELISA結(jié)果顯示，VHH1與VHH2與NDV病毒的反應(yīng)性顯著高于陰性對(duì)照(P<0.05)，表明VHH與NDV病毒反應(yīng)活性良好；Western blot結(jié)果顯示，2株VHH可特異性識(shí)別F蛋白；細(xì)胞中和試驗(yàn)結(jié)果表明，2株VHH抗體均具有一定的中和活性。以上結(jié)果提示本研究成功篩選出2株活性較好的抗NDV F蛋白的VHH抗體，為VHH在NDV防控中的應(yīng)用奠定了基礎(chǔ)。

新城疫病毒；F蛋白；VHH抗體；酵母雙雜交

新城疫(Newcastle disease，ND)是由新城疫病毒(Newcastle disease virus，NDV)引起的一種嚴(yán)重危害養(yǎng)禽業(yè)的重要疫病，被OIE列為必須報(bào)告的疫病。NDV屬于副黏病毒科禽腮腺炎病毒屬，其基因組為不分節(jié)段的單鏈負(fù)股RNA，大小約15 kb，依次編碼6種結(jié)構(gòu)蛋白。融合蛋白(fusion protein，F(xiàn))是病毒囊膜上一個(gè)非常重要的糖蛋白，可介導(dǎo)病毒與宿主細(xì)胞的膜融合，同時(shí)還是誘導(dǎo)機(jī)體保護(hù)性免疫應(yīng)答的主要抗原。研究表明，針對(duì)F蛋白的抗體可有效阻止病毒對(duì)宿主細(xì)胞和機(jī)體的侵染[1]。因此，F(xiàn)蛋白是NDV防控中的理想靶標(biāo)。

NDV疫苗的廣泛使用使ND大規(guī)模流行得到了有效控制。然而，近年來(lái)ND的流行出現(xiàn)了新的特點(diǎn)，如免疫雞群仍可發(fā)生ND，且可從中分離到致病性NDV[2-4]。研究表明，現(xiàn)有商品化疫苗和基于常規(guī)抗體的治療類制劑不能完全阻止ND發(fā)生[5-6]。同時(shí)，珍稀野生鳥(niǎo)類發(fā)生ND后往往缺乏特異性治療藥物[7]，且在應(yīng)用傳統(tǒng)的多抗和單抗做治療時(shí)存在免疫原性強(qiáng)、潛在的生物安全不明確等缺點(diǎn)。因此，開(kāi)發(fā)新的治療性藥物尤為必要。

VHH(variable domains of camelid heavy-chain antibodies，VHH)抗體衍生于駱駝科動(dòng)物體內(nèi)存在的重鏈抗體[8-9]。由于其相對(duì)分子質(zhì)量小(～15 ku)、結(jié)構(gòu)穩(wěn)定、可溶性好、組織穿透力強(qiáng)、免疫原性低且可識(shí)別隱蔽表位等特點(diǎn)，使其在病毒性疾病診斷和治療上具有廣闊的前景[10]，但目前仍未見(jiàn)抗NDV的VHH報(bào)道。本研究為了獲得F蛋白的VHH抗體，以F蛋白表位為誘餌對(duì)VHH抗體文庫(kù)進(jìn)行了篩選，成功獲得2株VHH抗體，并對(duì)其活性進(jìn)行了初步鑒定，為應(yīng)用VHH防控ND奠定基礎(chǔ)。

1　材料與方法

1.1病毒、菌株、質(zhì)粒、試劑

NDV La Sota毒株和F48E9毒株均由本實(shí)驗(yàn)室保存。Y2H Gold菌株、pGBKT7、pGADT7、pGADT7-T、pGADT7-p53、pGADT7-Lam質(zhì)粒及篩庫(kù)所用試劑購(gòu)自Clontech公司。雙峰駝天然重鏈抗體可變區(qū)酵母雙雜交文庫(kù)由本實(shí)驗(yàn)構(gòu)建與保存[11]。pHSIE原核表達(dá)質(zhì)粒(帶6×His標(biāo)簽和SUMO標(biāo)簽)由本實(shí)驗(yàn)室保存。2×Taq Master mix、HRP標(biāo)記抗His單克隆抗體和cECL發(fā)光試劑盒購(gòu)自康為世紀(jì)公司。IPTG購(gòu)自Sigma公司，TMB購(gòu)自天根生化科技(北京)有限公司，2K plus DNA marker購(gòu)自全式金生物有限公司，限制性內(nèi)切酶均購(gòu)自Fermentas公司。其他無(wú)機(jī)試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。

1.2引物及基因合成

根據(jù)GenBank上公布的VHH序列，設(shè)計(jì)1對(duì)克隆VHH的引物。參考文獻(xiàn)中NDV F蛋白線性中和表位序列(LLPNLPKDKEACAKAPL)[12]，合成一段由Linker(GGGS)串聯(lián)重復(fù)3次的中和表位DNA片段，命名為F-neu，并在前段和末端分別引入EcoRⅠ、SalⅠ酶切位點(diǎn)(圖1)。引物和基因片段均由蘇州金唯智生物科技有限公司合成。

圖1　F-neu編碼序列結(jié)構(gòu)Fig.1　The structure of synthesised F-neu

1.3誘餌質(zhì)粒構(gòu)建

將合成的F-neu和pGBKT7質(zhì)粒用EcoRⅠ和SalⅠ雙酶切，回收切出的F-neu片段和pGBKT7質(zhì)粒，在T4 DNA連接酶的作用下16 ℃連接過(guò)夜；次日將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細(xì)胞，挑取單克隆搖菌后抽提質(zhì)粒并做雙酶切鑒定，酶切和測(cè)序正確后命名為pGBKT7-F-neu。

1.4文庫(kù)篩選

將pGBKT7-F neu質(zhì)粒按照Clontech公司酵母細(xì)胞轉(zhuǎn)化手冊(cè)轉(zhuǎn)化Y2HGold酵母菌，進(jìn)行誘餌的自激活和毒性驗(yàn)證。文庫(kù)篩選時(shí)，取Y2H Gold(pGBKT7-F neu)與文庫(kù)菌Y187(pGADT7-VHH)做雜交，方法參照Clontech公司MatchmakerTMGold Yeast Two-Hybrid protocol。雜交產(chǎn)物涂布70個(gè)150 mm的DDO/X/A平板，30 ℃倒置培養(yǎng)5 d后，將平板上發(fā)藍(lán)的菌落挑到QDO/X/A平板上再次做篩選。QDO/X/A平板上仍生長(zhǎng)且發(fā)藍(lán)的菌落進(jìn)行酵母質(zhì)粒拯救，拯救的文庫(kù)質(zhì)粒與誘餌質(zhì)粒共轉(zhuǎn)Y2H Gold酵母菌做進(jìn)一步回轉(zhuǎn)驗(yàn)證?；剞D(zhuǎn)驗(yàn)證仍然發(fā)藍(lán)的質(zhì)粒進(jìn)行測(cè)序比對(duì)分析，以確定篩選出的VHH抗體序列信息。

1.5VHH的表達(dá)與純化

以拯救的pGADT7-VHH質(zhì)粒為模板，用引物VHH-PF (5′-CGGGATCCCAGGTGCAGCTGGT-GGAGTCTGGRGGAGG-3′)和VHH-PR (5′-GC-GTCGACTTAGCTGGAGACGGTGACCWGGG-T-3′)在TaqDNA聚合酶的作用下進(jìn)行PCR擴(kuò)增，回收擴(kuò)增出的VHH片段，通過(guò)BamHⅠ和SalⅠ酶切位點(diǎn)將VHH克隆至pHSIE載體6×His-SUMO標(biāo)簽下游以進(jìn)行融合表達(dá)，酶切和測(cè)序鑒定正確后命名為pHSIE-VHH。

將pHSIE-VHH質(zhì)粒轉(zhuǎn)化Rosetta感受態(tài)細(xì)胞進(jìn)行原核表達(dá)。表達(dá)時(shí)，從平板上挑取單菌落接種于氨芐LB培養(yǎng)基中，37 ℃振蕩培養(yǎng)至OD600nm值為0.4～0.6時(shí)，加入終濃度為0.4 mmol·L-1的IPTG，于20 ℃誘導(dǎo)6 h后收集菌體，超聲裂解破碎后取上清按Talon Metal Affinity Resin(Clontech)說(shuō)明書(shū)進(jìn)行蛋白質(zhì)純化，純化產(chǎn)物進(jìn)行12% SDS-PAGE電泳分析。

1.6間接ELISA

將NDV病毒用包被液稀釋后包被酶標(biāo)板，4 ℃過(guò)夜；次日棄包被液，PBST洗4次，用5%的脫脂奶粉進(jìn)行封閉，37 ℃孵育1 h；棄封閉液，PBST洗板4次，每孔加100 μL稀釋好的VHH，37 ℃孵育2 h；棄掉孔中的抗體，PBST洗4次，加入100 μL HRP標(biāo)記的抗His單克隆抗體(1∶5 000)，37 ℃孵育1 h；棄去孔中的抗體，PBST洗板4次，加入100 μL TMB顯色液，室溫避光顯色20 min，加入50 μL 2 mol·L-1H2SO4終止反應(yīng)，于OD450 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度值。

1.7Western blot

將純化的LaSota病毒200倍稀釋進(jìn)行SDS-PAGE電泳，電泳結(jié)束后轉(zhuǎn)膜。轉(zhuǎn)膜完成后，5%脫脂牛奶4 ℃封閉過(guò)夜；次日，TBST洗膜，加入稀釋的VHH抗體室溫孵育3 h；TBST洗膜，加入HRP標(biāo)記抗His單克隆抗體(1∶6 000)室溫孵育1.5 h；TBST洗膜后，用ECL發(fā)光試劑于暗室中壓片。

1.8中和試驗(yàn)

將DF-1細(xì)胞鋪96孔板，次日，待細(xì)胞長(zhǎng)滿80%～90%時(shí)，進(jìn)行以下操作：用PBS將VHH做梯度稀釋，取50 μL VHH與50 μL F48E9(100 TCID50)混勻后，置37 ℃孵育1 h；用PBS洗細(xì)胞一次，將孵育的VHH-病毒混合液加到細(xì)胞中，于CO2培養(yǎng)箱中37 ℃孵育1 h，每隔15 min振蕩混勻一次；棄掉各孔中的VHH-病毒混合液，PBS洗細(xì)胞一次，加入100 μL維持液于CO2培養(yǎng)箱中37 ℃培養(yǎng)36～72 h，每個(gè)稀釋度重復(fù)8個(gè)孔，24 h后觀察并記錄每孔細(xì)胞病變，按下列公式計(jì)算中和活性：中和活性(%)=(無(wú)病變孔數(shù)/總接種孔數(shù))×100。

2　結(jié)　果

2.1誘餌質(zhì)粒構(gòu)建

將構(gòu)建的pGBKT7-F-neu質(zhì)粒用EcoRⅠ和SalⅠ做雙酶切，切出了204 bp的目的條帶，結(jié)果如圖2所示。并且測(cè)序結(jié)果正確，表明誘餌質(zhì)粒構(gòu)建成功。

M.5 000的DNA相對(duì)分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)標(biāo)準(zhǔn)；1.pGBKT7-F-neu雙酶切M.5000 DNA marker；1.Digestion of pGBKT7-F-neu圖2　誘餌質(zhì)粒pGBKT7-F-neu雙酶切鑒定Fig.2　Restriction enzyme digestion of bait plasmid pGBKT7-F-neu

2.2文庫(kù)篩選

將篩選的陽(yáng)性克隆進(jìn)行質(zhì)粒拯救，拯救的pGADT7-VHH質(zhì)粒與pGBKT7-F-neu質(zhì)粒共轉(zhuǎn)Y2H Gold做回轉(zhuǎn)驗(yàn)證，同時(shí)設(shè)立pGBKT7-Lam+pGADT7-T和pGBKT7-p53+pGADT7-T為陰陽(yáng)性對(duì)照。結(jié)果如圖3所示，篩選出的4個(gè)VHH與pGBKT7-F-neu共轉(zhuǎn)后在DDO/X/A和QDO/X/A平板上菌落均為藍(lán)色，VHH與pGBKT7空載體共轉(zhuǎn)后在DDO/X/A和QDO/X/A上均不變藍(lán)或不生長(zhǎng)，且陰陽(yáng)性對(duì)照均成立，表明篩選到的4株VHH為真陽(yáng)性。

2.3序列分析

將4個(gè)陽(yáng)性克隆進(jìn)行測(cè)序和比對(duì)分析，結(jié)果如圖4所示，可知篩選出的4株VHH與駱駝源重鏈抗體重鏈可變區(qū)高度同源，且第1框架區(qū)(framework region 1，F(xiàn)R1)區(qū)和FR3區(qū)有2個(gè)保守的半胱氨酸，同時(shí)FR2區(qū)37位、44位、45位和47位存在特征性氨基酸替換。

2.4VHH表達(dá)與純化

從4株VHH中，挑選VHH1和VHH2進(jìn)行原核表達(dá)。以拯救的pGADT7-VHH1和pGADT7-VHH2質(zhì)粒分別為模板進(jìn)行PCR，擴(kuò)增出大小約400 bp的VHH片段，結(jié)果如圖5A。將VHH片段膠回收后，通過(guò)BamHⅠ和SalⅠ酶切位點(diǎn)克隆至pHISE表達(dá)載體上，雙酶切鑒定結(jié)果如圖5B所示，成功切出400 bp的目的條帶，且測(cè)序鑒定均正確。

A列.白色克隆表示誘餌蛋白無(wú)自激活和毒性；B列～E列.藍(lán)色克隆表示F-neu與VHH在酵母細(xì)胞內(nèi)可互作；F列.白色和藍(lán)色克隆分別表示陰性和陽(yáng)性對(duì)照Lane A.The white clones showed that the bait has no autoactivator activity in yeast；Lane B to E.When pBD-F and 4 positive pAD-VHH were cotransformed into Y2H Gold yeast strain，all cotransformants turned blue on DDO/X/A and QDO/X/A；Lane F.The white and blue clone indicated the negative and positive control，respectively圖3　誘餌蛋白F-neu與VHH在酵母細(xì)胞內(nèi)互作結(jié)果Fig.3　Interaction between F-neu and VHH in yeast

“.”表示與VHH1序列相同的氨基酸，不同的氨基酸用粉色字母表示；“-”表示此處氨基酸缺失；實(shí)線框內(nèi)的為保守型半胱氨酸殘基，虛線框內(nèi)的為4個(gè)特征性氨基酸殘基The dot indicate the same sequences compared with VHH1.Differences in the sequences are pinked，and the dash represent the missing sequences.Two hallmark Cys residues are labeled by the thick-line boxes.The four conservative hallmark residues of VHH in FR2 are labeled by the dotted line boxes圖4　4株篩選出來(lái)的VHH氨基酸序列比對(duì)結(jié)果Fig.4　Deduced amino acid alignment of four selected VHH

將pHSIE-VHH1和pHSIE-VHH2質(zhì)粒轉(zhuǎn)化Rosetta感受態(tài)細(xì)胞進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá)，表達(dá)產(chǎn)物用Talon樹(shù)脂進(jìn)行純化，最后用含200 mmol·L-1咪唑的洗脫液洗脫目的蛋白質(zhì)，結(jié)果如圖6所示，成功純化出約30 ku的VHH抗體。

2.5間接ELISA

用NDV LaSota病毒包被酶標(biāo)板，封閉結(jié)束后，先加入純化的VHH抗體進(jìn)行孵育，洗板后，再加入HRP標(biāo)記的抗His單克隆抗體進(jìn)行孵育，最后用TMB顯色液顯色，結(jié)果如圖7所示，VHH1和VHH2與NDV病毒的反應(yīng)性顯著高于陰性對(duì)照(P< 0.05)，與其他病毒不反應(yīng)(OD450 nm<0.1)，且陰性對(duì)照的OD450nm<0.1。表明VHH1和VHH2與NDV反應(yīng)性良好。

(A) VHH片段的PCR擴(kuò)增：M.5000 DNA相對(duì)分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)；1.VHH1的PCR擴(kuò)增結(jié)果；2.VHH2的PCR擴(kuò)增結(jié)果；3.陽(yáng)性對(duì)照；C.陰性對(duì)照。(B) pHSIE-VHH雙酶切鑒定：M.5000 DNA相對(duì)分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)；1.pHSIE-VHH1酶切結(jié)果；2.pHSIE-VHH2酶切結(jié)果(A) The amplification of VHH，M.5000 DNA marker；1.PCR products of VHH1；2.PCR products of VHH2；3.Positive control；C.Negative control.(B)Double enzyme digestion of pHSIE-VHH，M.5000 DNA marker；1.Digestion of pHSIE-VHH1；2.Digestion of pHSIE-VHH2圖5　VHH原核表達(dá)質(zhì)粒構(gòu)建Fig.5　Construction of VHH prokaryotic expression vector

M.蛋白質(zhì)相對(duì)分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)；1.VHH1；2.VHH2M.Protein marker；1.VHH1；2.VHH2圖6　VHH抗體的純化結(jié)果Fig.6　Purification of VHH

圖7　間接ELISA檢測(cè)VHH與NDV病毒的反應(yīng)性Fig.7　Detection the interaction between the selected VHHs and NDV virion by indirect ELISA

2.6Western blot

用純化的VHH抗體進(jìn)行Western blot后，結(jié)果如圖8所示，VHH1和VHH2均能識(shí)別大小約55 ku的F蛋白特異性條帶，而空載體不反應(yīng)，表明VHH1和VHH2可識(shí)別F蛋白。

M.蛋白質(zhì)相對(duì)分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)；1.VHH1；2.VHH2；3.空載體的表達(dá)菌裂解液M.Protein marker；1.VHH1；2.VHH2；3.The bacteria lysate of empty vector圖8　Western blot 結(jié)果Fig.8　The result of Western blot

2.7中和試驗(yàn)

將純化的2株VHH抗體稀釋后進(jìn)行中和試驗(yàn)。結(jié)果如圖9所示，24 h以內(nèi)VHH1和VHH2在低稀釋度時(shí)(≤ 23)均能有效中和F48E9病毒在DF-1細(xì)胞上的增殖，細(xì)胞無(wú)合胞體出現(xiàn)；當(dāng)抗體稀釋度高于24時(shí)，VHH抗體的中和活性逐漸下降，出現(xiàn)合胞體的孔數(shù)逐漸增多。隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng)，即36 h之后，各稀釋度孔中合胞體也會(huì)逐漸出現(xiàn)并增多。表明VHH1和VHH2在病毒感染早期具有一定的中和活性。

圖9　中和活性的測(cè)定Fig.9　Detection of neutralizing titer

3　討　論

VHH抗體來(lái)源于駱駝胚系基因組上一套獨(dú)特V基因片段的V-D-JH重排[13]，并且發(fā)現(xiàn)目前VHH至少存在4個(gè)獨(dú)特的亞群。盡管VHH抗體存在不同的亞群，但相對(duì)VH抗體而言各亞群均存在一些特征性氨基酸替換，即Val37-Phe/Tyr、Gly44-Glu/Gln、Leu45-Arg、Trp47-Gly/Leu，上述疏水性氨基酸向親水性氨基酸的替換增加了VHH抗體的親水性，同時(shí)彌補(bǔ)了缺失輕鏈而造成的不穩(wěn)定和易聚集的缺點(diǎn)。本研究中，通過(guò)用F蛋白中和表位構(gòu)建誘餌質(zhì)粒對(duì)天然VHH抗體文庫(kù)進(jìn)行篩選，初步得到4株VHH抗體；對(duì)篩選到的4株VHH進(jìn)行序列比對(duì)分析后發(fā)現(xiàn)，4株抗體37、44、45和47位存在VHH抗體的特征性氨基酸，與先前報(bào)道的一致[14]。同時(shí)發(fā)現(xiàn)所篩選的VHH抗體氨基酸差異主要集中在抗原互補(bǔ)決定區(qū)(complement determine region，CDR)，F(xiàn)R區(qū)則相對(duì)保守，與之前報(bào)道一致[13，15]。

VHH抗體由于相對(duì)分子質(zhì)量小，為單域結(jié)構(gòu)，并且FR2區(qū)4個(gè)疏水性氨基酸位點(diǎn)發(fā)生了替換，增強(qiáng)了親水性，使其可以在大腸桿菌和酵母菌中高效表達(dá)[16]。本研究中，前期在表達(dá)VHH抗體時(shí)選用了pColdTMI DNA載體，在進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá)時(shí)發(fā)現(xiàn)VHH可溶性差，多為包涵體形式存在，與X.J.Fu等報(bào)道的不一致[17]，可能與抗體自身序列有關(guān)。小泛素樣相關(guān)修飾蛋白(small ubiquitin-related modifier，SUMO)是一類廣泛存在于真核細(xì)胞的高度保守的蛋白質(zhì)[18]，研究表明，當(dāng)給異源蛋白N段融合SUMO后，不僅可以促進(jìn)異源蛋白質(zhì)的正確折疊和增加表達(dá)水平，而且還能保護(hù)靶蛋白免受降解，起到分子伴侶的作用[19]。為了增加VHH抗體的可溶性可表達(dá)量，本研究中后來(lái)選取了帶有SUMO助溶標(biāo)簽的pHSIE原核表達(dá)載體，誘導(dǎo)表達(dá)后發(fā)現(xiàn)重組VHH抗體表達(dá)量得到提高，并且多為可溶性表達(dá)。表明SUMO標(biāo)簽具有很好的助溶作用，與先前的報(bào)道一致[19-21]。

為了探究純化的VHH抗體與NDV病毒和F蛋白的反應(yīng)性，本研究進(jìn)行了ELISA和Western blot。ELISA結(jié)果顯示，篩選的VHH1抗體與LaSota病毒的反應(yīng)性顯著高于陰性和陽(yáng)性對(duì)照(P<0.05)，VHH2抗體與病毒反應(yīng)性顯著高于陰性對(duì)照(P<0.05)，但與陽(yáng)性對(duì)照差異不顯著(P>0.05)，表明表達(dá)的2株VHH與NDV病毒反應(yīng)性良好。Western blot結(jié)果顯示，表達(dá)的VHH1和VHH2可識(shí)別55 ku左右的特異性條帶，而陰性對(duì)照不反應(yīng)，表明篩選的VHH抗體能與F蛋白反應(yīng)。中和試驗(yàn)結(jié)果顯示，VHH在稀釋度低時(shí)(≤ 23)可有效中和病毒，但36 h后會(huì)細(xì)胞會(huì)逐漸出現(xiàn)合胞體病變，且中和能力顯著低于陽(yáng)性對(duì)照血清(≥ 28，P<0.05)；可能與以下因素有關(guān)：1)完全有效阻止病毒侵染機(jī)體和細(xì)胞依靠一種多抗體機(jī)制，即需要靠針對(duì)不同靶抗原不同表位的抗體共同協(xié)作[22]；因此靶向單個(gè)中和表位的抗體中和能力有限；2)由于VHH抗體體積和相對(duì)分子質(zhì)量小，只有常規(guī)抗體的1/10左右，因此組織穿透能力強(qiáng)于常規(guī)抗體，在某些方面具有無(wú)可比擬的優(yōu)勢(shì)；但是另一方面，小的體積和相對(duì)分子質(zhì)量可能使VHH抗體結(jié)合到靶標(biāo)后不足以形成足夠的空間位阻效應(yīng)來(lái)封閉靶位點(diǎn)活性，從而導(dǎo)致中和效價(jià)低。為了增加VHH的中和活性，后續(xù)可嘗試將上述2株抗體多聚化，構(gòu)建二價(jià)、三價(jià)等多價(jià)抗體以增強(qiáng)其活性。

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(編輯白永平)

Screening and Characterization of VHH against Newcastle Disease Virus Fusion Protein

GAO Xiao-long△，HU Xiang-yun△，F(xiàn)U Xiang-jing，WANG Yan-ping，TONG Li-na，WANG Hai-xin，WANG Xing-long，ZHANG Shu-xia，XIAO Sa，DU En-qi*，YANG Zeng-qi*

(CollegeofVeterinaryMedicine，NorthwestA&FUniversity，Yangling712100，China)

This study aimed to obtain VHH (variable domains of camelid heavy-chain antibodies，VHH) against Newcastle disease virus (NDV) fusion protein (F protein).The synthesised DNA sequence encoding neutralizing epitope of F protein was used to construct bait plasmid.Then，the constructed bait was used to screen a naiveCamelusBactrianusVHH yeast two-hybrid library through yeast two-hybrid technology.After screening，four positive clones were primarily obtained and two of four VHHs with hallmark of VHH sequence were picked out for expression and purification.Subsequently，the biological activities of purified VHH were evaluated.Indirect ELISA results showed that the reactivity between VHH1 or VHH2 and NDV virion was significant higher than negative control.Western blot results suggested that VHH could specifically react with F protein.Neutralization assay further demonstrated that these two VHH could inhibit the replication of virulent NDV at some extent.These results indicate that we successfully obtained two VHH against NDV F protein，which laid the foundation for its application in ND control.

Newcastle disease virus；fusion protein；VHH；yeast two-hybrid

10.11843/j.issn.0366-6964.2016.08.015

2016-02-29

國(guó)家自然科學(xué)基金(31272578)；西北農(nóng)林科技大學(xué)引進(jìn)人才科研啟動(dòng)基金(Z111021006)

高小龍(1988-)，男，陜西寶雞人，博士，主要從事動(dòng)物傳染病和基因工程抗體研究，E-mail：gaoxiaolong1017@163.com；△共同第一作者

楊增岐，教授，E-mail：yzq8162@163.com

S852.659.5；S852.43

A

0366-6964(2016)08-1645-07