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    臺灣泡桐體細(xì)胞同源四倍體的誘導(dǎo)及鑒定

    2016-07-25 15:59:46張變莉王楊劉榮寧范國強
    江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2016年6期
    關(guān)鍵詞:秋水仙素四倍體葉片

    張變莉++王楊++劉榮寧++范國強

    摘要:將臺灣泡桐葉片愈傷組織放置于含有不同質(zhì)量濃度秋水仙素的液體培養(yǎng)基上進(jìn)行四倍體植株的誘導(dǎo),采用根尖細(xì)胞染色體計數(shù)和葉片單細(xì)胞DNA含量測定的方法進(jìn)行倍性分析。結(jié)果表明,在27個試驗組合中,用 30 mg/L秋水仙素處理預(yù)培養(yǎng)6 d的臺灣泡桐葉片48 h時,四倍體誘導(dǎo)率最高,為5.83%。根尖染色體壓片結(jié)果也表明,臺灣泡桐二倍體染色體數(shù)為2n=2x=40,四倍體為2n=4x=80。此外,與二倍體相比,誘變出的四倍體植株,具有生長慢、莖加粗、葉片增寬、單個氣孔面積增大、氣孔密度減少等特征。

    關(guān)鍵詞:臺灣泡桐;葉片;秋水仙素;四倍體

    中圖分類號: S792. 430.4文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A文章編號:1002-1302(2016)06-0290-04

    收稿日期:2016-04-21

    基金項目:河南省杰出人才創(chuàng)新基金(編號:321001700);河南省高校杰出科研人才工程基金(編號:2002KYC-003);河南省鄭州市普通科技攻關(guān)項目(編號:153PKJGG423)。

    作者簡介:張變莉(1982—),女,河南通許人,碩士,講師,主要從事園林綠化及林木生物技術(shù)的教學(xué)和科研工作。E-mail:kfzbl@163.com。

    通信作者:范國強,博士,教授,主要從事泡桐豐產(chǎn)栽培理論與生物技術(shù)研究。E-mail:gqfan@ henau.edu.cn。植物多倍體具有抗逆性和適應(yīng)性強等特點,能滿足生產(chǎn)上高產(chǎn)、優(yōu)質(zhì)、抗病蟲害等要求,而且作為遺傳橋梁,對開展目的基因漸滲和轉(zhuǎn)移研究具有重要意義。目前,人工誘導(dǎo)植物多倍體已在楊樹、桑樹等林木樹種[ 1-12]上取得突破。泡桐在我國有著悠久的栽培歷史,由于其生長快、用途廣,廣受栽培者的歡迎。然而,泡桐叢枝病的頻發(fā)及“久治不愈”嚴(yán)重影響了其大面積栽植和應(yīng)用。近年來,范國強等[13-18]成功誘導(dǎo)了同源四倍體蘭考、白花、南方、豫雜一號等植株,但目前有關(guān)臺灣泡桐四倍體誘導(dǎo)研究鮮見報道。本試驗以臺灣泡桐組培苗葉片為材料,采用不同質(zhì)量濃度秋水仙素對其進(jìn)行了同源四倍體誘導(dǎo),為豐富泡桐四倍體種質(zhì)資源奠定基礎(chǔ)。

    1材料與方法

    1.1試驗材料

    本試驗所用材料為河南農(nóng)業(yè)大學(xué)林業(yè)試驗站的臺灣泡桐種子,采集后,先用70%乙醇消毒30 s,再用0.1% HgCl2 消毒 5 min,取出后,無菌水沖洗3~5次,之后將種子晾干,置于裝有40 mL MS 培養(yǎng)基 ( 含3.0 g/L瓊脂粉、25 g/L蔗糖) 的三角瓶中,在培養(yǎng)箱 [溫度(25±2) ℃,光照時間為 16 h/d,光照度為130 μmol/(m2·s)]內(nèi)培養(yǎng)。將生長 80 d 的同一株臺灣泡桐組培苗上部2片完全展開葉片置于其器官直接發(fā)生的培養(yǎng)基[19]上增殖后,取其葉片待用。

    1.2試驗方法

    1.2.1臺灣泡桐葉片的預(yù)培養(yǎng)取臺灣泡桐組培苗自頂部向下數(shù)的第 2~4 對葉片,剪成1.0 cm×1.0 cm小塊,分別置于裝有40 mL的MS+0.1 mg/L NAA+16.0 mg/L 6-BA的培養(yǎng)基[19] 的三角瓶中,在20 ℃的黑暗條件下進(jìn)行不同時間(表1)的預(yù)培養(yǎng)。

    1.2.2秋水仙素誘導(dǎo)臺灣泡桐四倍體植株將上述預(yù)培養(yǎng)不同時間的外植體(臺灣泡桐葉塊)分別接種于含有秋水仙素液體培養(yǎng)基[19]的三角瓶中,并按照設(shè)計組合(表1)置于 20 ℃ 的黑暗條件下進(jìn)行四倍體誘導(dǎo)。 誘導(dǎo)結(jié)束后,無菌水沖洗葉片3~5次,再將葉片表面水分用無菌濾紙吸干,之后轉(zhuǎn)入不含秋水仙素的MS+0.1 mg/L NAA+16.0 mg/L 6-BA的培養(yǎng)基上,于光照度為130 μmol/(m2·s) 、光照時間為 16 h/d、溫度為25 ℃的培養(yǎng)室內(nèi)進(jìn)行芽誘導(dǎo),每處理30瓶,每瓶2個葉塊。15 d后,統(tǒng)計臺灣泡桐外植體存活數(shù),30 d后統(tǒng)計外植體出芽數(shù),并計算其存活率[(存活的外植體個數(shù)/接種外植體總數(shù))×100%]和芽誘導(dǎo)率[(誘導(dǎo)出芽外植體數(shù)/接種外植體總數(shù))×100%]。 將誘導(dǎo)后長至2 cm的幼芽剪下,接種于1/2 MS 培養(yǎng)基上誘導(dǎo)生根,每30 d 繼代培養(yǎng)1次,共繼代5次。

    第5次繼代苗培養(yǎng)后,幼芽根長至1.5~2.0 cm時,先剪其根尖制成壓片[20]用于觀察染色體的加倍情況,再用流式細(xì)胞儀[21]確認(rèn)秋水仙素誘變的臺灣泡桐幼苗的倍性,并計算其四倍體誘導(dǎo)率( 流式細(xì)胞儀檢測四倍體幼芽數(shù)/外植體誘導(dǎo)出的總芽數(shù)) 。 每組試驗重復(fù)2次,數(shù)據(jù)采用 SPSS 軟件處理,并進(jìn)行F檢驗。

    1.2.3臺灣泡桐四倍體植株的鑒定(1)幼苗根尖染色體計數(shù)。臺灣泡桐二倍體幼苗及秋水仙素誘導(dǎo)變異幼苗的根尖細(xì)胞染色體觀察參照舒壽蘭等[ 20]的方法。在尼康TS-100熒光倒置顯微鏡(2 000×)下,觀察上述根尖臨時壓片中的染色體條數(shù)并拍照。(2)葉片單細(xì)胞DNA相對含量測定。分別將染色體加倍的及普通二倍體的臺灣泡桐葉片各50 mg置于2 mL緩沖液Ⅰ(0.5%T ween 和濃度為0.1 mol/L的檸檬酸) 中,然后用剪刀或鋒利的刀片將其切碎,用300目尼龍網(wǎng)過濾至BD專用試管中,重復(fù)過濾2次去除雜質(zhì)。留取1 mL濾液置于轉(zhuǎn)速為1 500 r/min的離心機中4 ℃離心5 min,棄除上清液,并加入1 mL鞘液輕微搖勻,然后再置入上述轉(zhuǎn)速離心機中4 ℃離心5 min。倒掉上清液,在沉淀中加入 0.5 mL 儀器所帶熒光染色液,輕微振蕩搖勻后避光放置 30 min,以便充分染色。然后用300目濾網(wǎng)過濾1次至試管中,用于測定葉片單細(xì)胞DNA相對含量。

    1.2.4植株形態(tài)特征比較觀察并記錄上面生長30 d第5次繼代的四倍體和二倍體臺灣泡桐幼苗葉形、葉色等差異。每一指標(biāo)測定10個樣品,求其平均值。

    1.2.5表皮細(xì)胞氣孔器的比較取苗齡60 d的四倍體和二倍體臺灣泡桐組培苗成熟葉片,放置于質(zhì)量分?jǐn)?shù)5% 的KOH溶液中煮沸3~5 min,然后置于冷水中。先在載玻片上滴一滴清水,再用鑷子挑取其表皮并展平放于載玻片的水滴上,用濾紙吸去過多的水分。然后蓋上蓋玻片并用目鏡中帶有測微尺鏡頭的顯微鏡觀察,在100×10的油鏡下觀察測量每個氣孔器的長度、寬度和氣孔器個數(shù),計算氣孔器密度,3次重復(fù),取平均值。

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