初志戰(zhàn) ,謝勇堯 , 胡 琛, 郭海濱, 劉耀光*
(1 華南農(nóng)業(yè)大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,亞熱帶農(nóng)業(yè)生物資源保護(hù)與利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣州 510642;2 華南農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品學(xué)院,廣州 510642;3 華南農(nóng)業(yè)大學(xué) 公共基礎(chǔ)課實(shí)驗(yàn)教學(xué)中心, 廣州 510642)
一個(gè)水稻半矮化和花發(fā)育異常突變體的遺傳分析和分子定位
初志戰(zhàn)1,謝勇堯1, 胡琛2, 郭海濱3, 劉耀光1*
(1 華南農(nóng)業(yè)大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,亞熱帶農(nóng)業(yè)生物資源保護(hù)與利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣州 510642;2 華南農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品學(xué)院,廣州 510642;3 華南農(nóng)業(yè)大學(xué) 公共基礎(chǔ)課實(shí)驗(yàn)教學(xué)中心, 廣州 510642)
摘要:從粳稻品種‘日本晴’經(jīng)60Co誘變的M2代材料中發(fā)現(xiàn)一個(gè)半矮化并且花發(fā)育異常突變體sd-df3,其表現(xiàn)為植株半矮化,分蘗增加,半包莖穗,雄蕊發(fā)育不良,無花粉。遺傳分析顯示,該突變體表型受1對隱性核基因控制。以雜合型突變體為母本,與廣親和品種Dular雜交,構(gòu)建F2分離群體,將該基因定位在水稻第3號染色體,In/Del標(biāo)記333591與333818之間的物理距離約為227 kb的范圍,目前該范圍內(nèi)沒有矮化相關(guān)基因報(bào)道。
關(guān)鍵詞:水稻;半矮化并花發(fā)育異常;基因定位;遺傳分析
株高是水稻最重要的農(nóng)藝性狀之一,它直接影響到水稻的高產(chǎn)與穩(wěn)產(chǎn)。由于矮稈作物通常表現(xiàn)出抗倒伏、葉挺、穗多、增產(chǎn)明顯等優(yōu)點(diǎn),因此日本在20世紀(jì)30年代末就開始粳稻品種的矮化育種研究。20世紀(jì)50年代末60年代初,半矮生基因sd1的發(fā)現(xiàn),促成了綜合性狀好的抗倒伏品種的培育,使水稻單產(chǎn)提高20%~30%,引發(fā)了全球水稻生產(chǎn)第一次綠色革命[1]。
根據(jù)水稻的矮化效應(yīng),可以將矮化分為:矮化、半矮化和極矮化3大類。Takahashi等[2]和Takeda[3]根據(jù)水稻各節(jié)間的分布將水稻矮稈突變體分成dn、dm、sh、d6和nl型等5種類型。
引起植物矮化的因素主要有兩方面,生長環(huán)境是一個(gè)重要的外在因素,矮化主效基因則是決定植株高矮的主要內(nèi)在因素。目前已發(fā)現(xiàn)鑒定近90個(gè)水稻矮化、半矮化突變體,現(xiàn)已克隆的水稻矮化基因有D1[4]、D2[5]、D3[6]、D10[7]、D11[8]、D14/D88[9]、D17[10]、D18[11]、D35[12]、D61[13]、GID1[14]、GID2[15]、BRD1[16]、SD1[17-19]和OSH15[20]。眾多研究表明,許多矮化基因參與到了植物激素尤其是赤霉素(GA)和油菜素類固醇(BR)的生物合成與信號轉(zhuǎn)導(dǎo),如D18[11]和D35[12]參與GA的合成;SD1[17-19]參與GA的信號轉(zhuǎn)導(dǎo),D2[5]和D11[8]參與了BR的合成,而D61[13]則通過影響B(tài)R的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)導(dǎo)致表型的產(chǎn)生。D3[6]、D10[7]、D14/D88[9]、D17[10]則參與到獨(dú)腳金內(nèi)酯(SLs,strigolactones)的合成與傳導(dǎo)途徑。獨(dú)腳金內(nèi)酯是一種新的植物激素,于2008年被發(fā)現(xiàn),具有抑制腋芽過度伸長的功能[21]。
盡管眾多的矮化材料被研究,甚至不少基因已經(jīng)被克隆,但是只有sd1(d-47)在育種中得到廣泛應(yīng)用,但是sd1單一資源的應(yīng)用,存在嚴(yán)重的遺傳脆弱性。因此發(fā)掘、克隆和利用新的矮化基因,不僅對研究矮化作用機(jī)理有重要理論意義,對實(shí)現(xiàn)水稻株高的定向改良,實(shí)現(xiàn)水稻穩(wěn)產(chǎn)增產(chǎn)也具有重要的應(yīng)用價(jià)值。
花器官發(fā)育是開花植物繁衍的基礎(chǔ),近30年來,花發(fā)育的相關(guān)研究取得了迅猛的發(fā)展,尤其在擬南芥和金魚草的研究中,大量的MADS-box基因的成功分離為花發(fā)育的分子生物學(xué)領(lǐng)域研究的一個(gè)重大突破。目前水稻中也發(fā)現(xiàn)有5類MADS-box基因參與了花器官的形成,水稻花器官的發(fā)育模型已從最初的“ABC”模型發(fā)展到“ABCDE”,并且還在不斷補(bǔ)充和完善[22]。
本實(shí)驗(yàn)室利用60Co誘變‘日本晴’,M2代獲得一個(gè)水稻半矮化并花發(fā)育異常突變體。突變體主要表現(xiàn)為各節(jié)間縮短,多分蘗,葉片直立,穗大部分包被于劍葉的葉鞘中,少部分露出葉鞘外,包被于葉鞘內(nèi)的小穗不結(jié)實(shí)。該突變體與ddf1[23]和ddf2[24]表現(xiàn)相似,但為半矮化,因此將突變體暫命名為sd-df3(semi-dwarfanddeformedflower3)。遺傳分析表明,該性狀是由1對隱性基因控制的。本研究對該突變體進(jìn)行形態(tài)特征分析,并對該突變基因進(jìn)行了定位,以期為該基因的克隆與應(yīng)用提供參考。
1材料和方法
1.1突變體材料
60Co誘變‘日本晴’獲得穩(wěn)定遺傳的sd-df3突變體,秧苗按照行距25 cm,株距15 cm插植。插秧后從第3周開始每周對株高、分蘗數(shù)進(jìn)行測量統(tǒng)計(jì)。齊穗后,剝?nèi)ァ毡厩纭蛃d-df3主莖葉鞘后逐一測定各節(jié)節(jié)間長。
1.2方法
1.2.1定位群體的構(gòu)建由于sd-df3 突變體小穂不結(jié)實(shí),因此不能直接用于雜交,獲得定位群體。因此定位群體的母本選用可分離出半矮化材料的M1群體中的正常植株,父本采用秈稻Dular,雜交后獲得F1種子。播種F1后,自交繁殖獲得F2種子,單株收種。分株系種植F2代,以能分離出半矮化苗的F2群體為定位群體。
1.2.2基因定位基因初步定位:采用SDS法[25]提取28株半矮化植株葉片總DNA用于基因定位?;蜻M(jìn)一步定位:根據(jù)初步定位結(jié)果,采用快速打葉法[26]對635株定位群體植株進(jìn)行兩側(cè)標(biāo)記檢測,并利用內(nèi)部In/Del引物進(jìn)一步縮小定位區(qū)間。
本研究用于基因定位的分子標(biāo)記為In/Del標(biāo)記:一部分為本實(shí)驗(yàn)室已有的,另一部分為根據(jù)已公布的水稻品種‘93-11’和‘日本晴’全基因組序列自行開發(fā)。這些標(biāo)記均勻分布于水稻12條染色體,共147對。
2結(jié)果與分析
2.1突變體表型及農(nóng)藝性狀鑒定
由圖1可以看出,與野生型相比,突變體sd-df3在拔節(jié)期就表現(xiàn)出明顯的矮化表型,葉片短而窄,隨著生育期的推移,表型愈發(fā)明顯。抽穗期,突變體sd-df3株高僅為野生型的58.6%。通過節(jié)間長度調(diào)查發(fā)現(xiàn),sd-df3穗下第1、2、3、4節(jié)的節(jié)間長度均縮短,分別是野生型的40.7%、51.7%、50.8%和49.1%,可以發(fā)現(xiàn),各節(jié)間縮短幅度差別不大。根據(jù)節(jié)間長度縮短特點(diǎn),可以將突變體sd-df3劃為dn類。除了半矮化性狀外,突變體sd-df3還表現(xiàn)小穂不結(jié)實(shí),無花粉型(圖2)。
A. 成熟期野生型和突變體的植株形態(tài); B~D. 野生型與突變體節(jié)間長度、分蘗數(shù)及株高的統(tǒng)計(jì)分析:Ⅰ~Ⅳ.穗下第1節(jié)至第4節(jié);**表示該性狀在0.01水平上差異極顯著圖1 水稻日本晴野生型和sd-df3的形態(tài)學(xué)比較特征A. Plant phenotypes of wild type and sd-df3;B-D. The comparison of internodes length, plant height and number of tillers between wild type and sd-df3 :Ⅰ-Ⅳ. The upper four internodes down panicle; ** indicate a statistically significant difference (P<0.01)Fig. 1 Comparison of morphological characters between Nipponbare and sd-df3
A. 小穗去除內(nèi)外稃后的表型; B. 雄蕊經(jīng)I2-KI染色后表型圖2 野生型(WT)和sd-df3突變體(MT)小穗形態(tài)分析The spikelets removed lemma and palea; B. The stamen stained with I2-KIFig. 2 Phenotypes of spikelet in sd-df3 mutant (MT) and wild type (WT)
2.2突變體的遺傳分析及定位結(jié)果
選取在兩親本間有多態(tài)性的In/Del標(biāo)記,共有147個(gè),均勻分布于水稻12條染色體上。用28株突變植株進(jìn)行初定位,將突變基因初步定位在第3號染色體的短臂上, In/Del分子標(biāo)記 333050與334307之間,物理距離約為1 257 kb的范圍。
表1 F2群體株高性狀分離調(diào)查
表2 用于精細(xì)定位的新In/Del標(biāo)記
為了進(jìn)一步縮小定位區(qū)間,選取了F2群體中635株半矮化突變植株做為精細(xì)定位群體。根據(jù)公布的粳稻‘日本晴’與秈稻‘93-11’序列,在In/Del標(biāo)記333050與334307之間,目前只找到了4對在2個(gè)親本有差異的新標(biāo)記(表2),并最終將突變基因sd-df3定位在In/Del標(biāo)記333591與333818之間,物理距離約為227 kb的范圍(圖3)。
3. 討論
水稻是世界上最重要的糧食作物之一, 半矮生基因sd1的發(fā)現(xiàn)促成了綜合性狀好的、抗倒水稻品種的產(chǎn)生,使水稻產(chǎn)量實(shí)現(xiàn)了巨大突破。對中國南方稻區(qū)育成的313個(gè)秈稻品種的系譜分析表明,約75.6%具有sd1矮源血統(tǒng),而粳稻品種矮生性主要來源于‘農(nóng)墾58’和Balila,因此矮化基因單一,存在風(fēng)險(xiǎn)[27]。
圖3 sd-df3在水稻第3號染色體的定位Fig. 3 Location of sd-df3 on rice chromosome 3
本研究通過物理方法誘變獲得一個(gè)半矮化突變體,從拔節(jié)期開始突變體就呈現(xiàn)明顯的矮化特點(diǎn),分蘗增多,葉片直立,穗大部分包被于劍葉的葉鞘中,并且雄蕊發(fā)育異常,無花粉,小穗不結(jié)實(shí)。由于獨(dú)腳金內(nèi)酯具有抑制腋芽過度伸長的功能,因此該激素導(dǎo)致的水稻矮化往往與分蘗增多相關(guān)聯(lián)[6-9,28]。矮化引起小穗育性下降甚至不育,部分由于矮化植株?duì)I養(yǎng)器官如根、莖、葉等顯著減小,生長弱勢造成,部分由于矮化基因引起了赤霉素的表達(dá)和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)發(fā)生障礙[29-30],也有部分是由于某個(gè)矮化基因同時(shí)直接控制水稻莖/葉和花器官的發(fā)育,即具有“一因多效”的遺傳性狀表現(xiàn),如ddf1[23]、ddf2[24]和dtl1[31]。本研究sd-df3突變體矮化與雄性不育共遺傳,遺傳分析表明該性狀受單隱性基因調(diào)控,通過圖位克隆將該矮化基因定位于第3號染色體,In/Del標(biāo)記333591與333818之間,物理距離約為227 kb范圍。目前定位于3號染色體的矮化、半矮化基因有ipd1、dlt2、d88/d14/htd2、OsTB1/fc1、OSDWARF4、Brd1、d162(t)和ssd1共8個(gè),但它們均與sd-df3位置相差較遠(yuǎn),更非等位基因。目前已報(bào)道的,在第3染色體控制花藥發(fā)育的基因有PAIR1[32]、MEL1[33]、OsAM1[34]、OsSDS[35]、CYP704B2[36]和DPW[37],它們和sd-df3也非等位基因,表型也不同,而ddf1和ddf2分別位于第6和第11染色體,因此可以確認(rèn)sd-df3為一個(gè)新的調(diào)控水稻矮化并花發(fā)育的基因。由于Dular和‘日本晴’在In/Del標(biāo)記333591與333818之間難以找到新的標(biāo)記,因此準(zhǔn)備以‘黃華占’和‘93-11’為新的父本,構(gòu)建新的精細(xì)定位群體。
參考文獻(xiàn):
[1]林世成,閔紹楷.中國水稻品種及其系譜[M].上海:上??茖W(xué)技術(shù)出版社,1991: 6-9.
[2]TAKAHASHI M, TAKEDA K. Type and grouping of internode pattern in rice culm-genetical studies on rice plant[J].JournaloftheFacultyofAgriculture,HokkaidoUniversity, 1969, 7: 32-43.
[3]TAKEDA K. Internode elongation and dwarfismin some gramineous plants[J].GammaFieldSymposia, 1977, 16: 1-18.
[4]ASHIKARI M, WU J, YANO M,etal. Rice gibberellin-insensitive dwarf mutant gene Dwarf1 encodes the α-subunit of GTP binding protein[J].ProceedingsoftheNationalAcademyofSciencesoftheUnitedStatesofAmerica, 1999, 96(18): 10 284-10 289.
[5]HONG Z, UEGUCHI-TANAKA M, UMEMURA K,etal. A rice brassinosteroid-deficient mutant, Ebisu Dwarf(D2),is caused by loss of function of a new member of cytochrome P450[J].ThePlantCell, 2003, 15(12): 2 900-2 910.
[6]ISHIKAWA S, MAEKAWA M, ARITE T,etal. Suppression of tiller bud activity in tillering dwarf mutants of rice[J].PlantCellPhysiology, 2005, 46(1): 79-86.
[7]ARITE T, IWATA H, OHSHIMA K,etal. DWARF10, an RMS1 /MAX4 /DAD1 ortholog, controls lateral bud outgrowth in rice[J].ThePlantJournal, 2007, 51(6): 1 019-1 029.
[8]TANABE S, ASHIKARI M, FUJIOKA S,etal. A novel cytochrome P450 is implicated in brassinosteroid biosynthesis via the characterization of a rice dwarf mutant, dwarf11, with reduced seed length[J].ThePlantCell, 2005, 17(3): 776-790.
[9]ZHAO L H, ZHOU X E, WU Z S,etal. Crystal structures of two phytohormone signal-transducing α / β hydrolases: karrikin-signaling KAI2 and strigolactone signaling DWARF14[J].CellResearch, 2013, 23(3): 436-439.
[10]ZOU J, ZHANG S, ZHANG W,etal. The rice HIGH-TILLERING DWARF1 encoding an ortholog ofArabidopsisMAX3 is required for negative regulation of the outgrowth of axillary buds[J].ThePlantJournal, 2006, 48(5): 687-698.
[11]ITOH H, UEGUCHI-TANAKA M, SENTOKU N,etal. Cloning and functional analysis of two gibberellin 3β-hydroxylase genes thatare differently expressed during the growth of rice[J].Proc.Natl.Acad.Sci.USA, 2001, 98(15): 8 909-8 914.
[12]ITOH H, TATSUMI T, SAKAMOTO T,etal. A rice semi-dwarf gene, Tan-Ginbozu(D35), encodes the gibberellin biosynthesis enzyme, ent-kaurene oxidase[J].PlantMolecularBiology, 2004, 54(4): 533-547.
[13]YAMAMURO C, IHARA Y, WU X,etal. Loss of function of a rice brassinosteroid insensitive1 homolog prevents internode elongation and bending of the lamina joint[J].PlantCell, 2000, 12(9): 1 591-1 605.
[14]UEGUCHI-TANAKA M, ASHIKARI M, NAKAJIMA M, et al. GIBBERELLIN INSENSITIVE DWARF1 encodes a soluble receptor for gibberellin[J].Nature, 2005, 437(7 059): 693-698.
[15]SASAKI A, ITOH H, GOMI K,etal. Accumulation of phosphorylated repressor for gibberellin signaling in an F-box mutant[J].Science, 2003, 299(5 614): 1 896-1 898.
[16]MORI M, NOMURA T, OOKA H,etal. Isolation and characterization of a rice dwarf mutant with a defect in brassinosteroid biosynthesis[J].PlantPhysiology, 2002, 130(3): 1 152-1 161.
[17]SPIEMYER W, ELLIS M H, CHANDLER P M. Semi-dwarf(sd-1),“green revolution” rice, contains a defective gibberellin 20-oxidase gene[J].ProceedingsoftheNationalAcademyofSciencesoftheUnitedStatesofAmerica, 2002, 99(13): 9 043-9 048.
[18]SASAKI A, ASHIKARI M, UEGUCHI-TANAKA M,etal. Green revolution: a mutant gibberellin- synthesis gene in rice [J].Nature, 2002, 416(6 882): 701-702.
[19]MONNA L, KITAZAWA N, YOSHINO R,etal. Positional cloning of rice semi-dwarfing gene, sd-1: Rice “green revolution gene” encodes a mutant enzyme involved in gibberellin synthesis[J].DNAResearch, 2002, 9(1): 11-17.
[20]SATO Y, SENTOKU N, MIURA Y,etal. Loss-of-function mutations in the rice homeobox gene OSH15 affect the architecture of internodes resulting in dwarf plants[J].EMBOJournal, 1999, 18(4): 992-1 002.
[21]GOMEZ-ROLDAN V, FERMAS S, BREWER P B,etal. Strigolactone inhibition of shoot branching[J].Nature,2008,455(7 210): 189-194.
[22]肖巧珍, 江立庚, 秦華東. 水稻花發(fā)育研究進(jìn)展[J]. 南方農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2012, 43(7): 913-917.
XIAO Q Z, JIANG L G, QIN H D. Advance in flower development of rice[J].JournalofSouthernAgriculture, 2012, 43(7): 913-917.
[23]DUAN Y, LI S, CHEN Z,etal. Dwarf and deformed flower 1, encoding an F-box protein, is critical for vegetative and floral development in rice (OryzasativaL.)[J].ThePlantJournal, 2012, 72(5): 829-842.
[24]張玲, 郭爽, 汪玲, 等. 水稻矮化并花發(fā)育異常突變體 dwarf and deformed flower 2 (ddf2) 的基因定位與候選基因分析[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué), 2015, 48(10): 1873-1881.
ZHANG L, GUO S, WANG L,etal. Gene mapping and candidate gene analysis of a dwarf and deformed flower 2 (ddf2)mutant in rice (oryzasativa)[J].ScientiaAgricultureSinica, 2015, 48(10): 1 873-1 881.
[25]GUILLEMAUT P, MARDCHAL-DROUARD L. Isolation of plant DNA: a fast, inexpensive, and reliable method[J].PlantMolecularBiologyReporter, 1992, 10(1): 60-65.
[26]王慧娜, 初志戰(zhàn), 馬興亮, 等. 高通量 PCR 模板植物基因組 DNA 制備方法[J]. 作物學(xué)報(bào), 2013, 39(7): 1 200-1 205.
WANG H N, CHU Z Z, MA X L,etal. A high through-put protocol of plant Genomic DNA preparation for PCR[J].ActaAgronomicaSinica, 2013, 39(7): 1 200-1 205.
[27]李金華, 王豐, 廖亦龍, 等. 水稻矮生性及其相關(guān)基因的研究進(jìn)展[J]. 雜交水稻, 2007, 22(3): 1-5.
LI J H, WANG F, LIAO Y L,etal. Research progress on the dwarfness and its related genes in rice[J].HybridRice, 2007, 22(3): 1-5.
[28]LIN H, WANG R, QIAN Q,etal. DWARF27, an iron-containing protein required for the biosynthesis of strigolactones, regulates rice tiller bud outgrowth[J].ThePlantCell, 2009, 21(5): 1 512-1 525.
[29]FRIDBORG I, KUUSK S, ROBERTSON M,etal. The Arabidopsis protein SHI represses gibberellin responses inArabidopsisand barley[J].PlantPhysiology, 2001, 127(3): 937-948.
[30]ERIKSSON S, B?HLENIUS H, MORITZ T,etal. GA4 is the active gibberellin in the regulation of LEAFY transcription andArabidopsisfloral initiation[J].ThePlantCell, 2006, 18(9): 2 172-2 181.
[31]張帆濤, 方軍, 孫昌輝, 等. 水稻矮稈突變體dtl1 的分離鑒定及其突變基因的精細(xì)定位[J]. 遺傳, 2012, 34(1): 79-86.
ZHANG F T, FANG J, SUN C H,etal. Characterisation of a ricedwarfandtwistleaf1 (dtl1) mutant and fine mapping ofDTL1 gene][J].Hereditas(Beijing), 2012, 34(1): 79-86.
[32]NONOMURA K I, NAKANO M, FUKDA T,etal. The novel gene HOMOLOGOUS PAIRING ABERRATION IN RICE MEIOSIS1 of rice encodes a putative coiled-coil protein required for homologous chromosome pairing in meiosis[J].ThePlantCell, 2004, 16(4): 1 008-1 020.
[33]NONOMURA K I, MOROHOSHI A, NAKANO M,etal. A germ cell-specific gene of the ARGONAUTE family is essential for the progression of premeiotic mitosis and meiosis during sporogenesis in rice[J].ThePlantCell, 2007, 19(8): 2 583-2 594.
[34]CHE L, TANG D, WANG K,etal. OsAM1 is required for leptotene-zygotene transition in rice[J].Cellresearch, 2011, 21(4): 654-665.
[35]CHANG L, MA H, XUE H W. Functional conservation of the meiotic genes SDS and RCK in male meiosis in the monocot rice[J].CellResearch, 2009, 19(6): 768-782.
[36]LI H, PINOT F, SAUVEPLANE V,etal. Cytochrome P450 family member CYP704B2 catalyzes the ω-hydroxylation of fatty acids and is required for anther cutin biosynthesis and pollen exine formation in rice[J].ThePlantCell, 2010, 22(1): 173-190.
[37]SHI J, TAN H, YU X H,etal. Defective pollen wall is required for anther and microspore development in rice and encodes a fatty acyl carrier protein reductase[J].ThePlantCell, 2011, 23(6): 2 225-2 246.
(編輯:宋亞珍)
Genetic Analysis and Gene Mapping of a Semi-dwarf and Deformed Flower Mutant in Rice
CHU Zhizhan1, XIE Yongyao1, HU Chen2, GUO Haibin3, LIU Yaoguang1*
(1 College of Life Sciences, South China Agricultural University, State Key Laboratory for Conservation and Utilization of Subtropical Agro-bioresources, Guangzhou 510642, China;2 College of Food Sciences, South China Agricultural University, Guangzhou 510642, China;3 Center of Experimental Teaching for Common Basic Course, South China Agricultural University, Guangzhou 510642, China)
Abstract:A rice semi-dwarf and deformed flower mutant, temporarily named as sd-df3, was identified from60Co γ-ray radiation mutation in japonica rice variety Nipponbare. The mutant was characterized by semi-dwarf, more tillers, semi-enclosed panicle, stamens dysplasia and non-pollen. Genetics analysis indicated that the mutant was controlled by a single recessive gene. The F2 mapping population was derived from a cross between the heterozygous sd-df3 genotype and a wide compatible variety Dular. The gene was located in a 227 kb region between the In/Del marker 333591 and 333818 on chromosome 3 in rice, which was assumed to be a new gene controlling semi-dwarf and deformed flower.
Key words:rice; semi-dwarf and deformed flower; gene mapping; genetics analysis
文章編號:1000-4025(2016)05-0910-06
doi:10.7606/j.issn.1000-4025.2016.05.0910
收稿日期:2016-02-19;修改稿收到日期:2016-04-20
基金項(xiàng)目:亞熱帶農(nóng)業(yè)生物資源保護(hù)與利用國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室開放課題(SKL-CUSAb-2013-04);江西省教育廳科技計(jì)劃(GJJ14707);廣東省自然科學(xué)基金博士啟動項(xiàng)目(2015A030310485)
作者簡介:初志戰(zhàn)(1977-),博士,講師,主要從事生物化學(xué)與分子生物學(xué)研究。E-mail: chuben@scau.edu.cn; *通信作者:劉耀光,研究員,博士生導(dǎo)師,主要從事生物化學(xué)與分子生物學(xué)研究。E-mail: ygliu@scau.edu.cn
中圖分類號:Q754;Q789
文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A