RhoA/Rho激酶信號(hào)通路在慢性疼痛中的作用

丘玥，魏敏，王之遙，黃宇光

中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院 北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院 北京協(xié)和醫(yī)院麻醉科，北京100730

RhoA/Rho激酶信號(hào)通路在慢性疼痛中的作用

丘玥，魏敏，王之遙，黃宇光

中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院 北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院 北京協(xié)和醫(yī)院麻醉科，北京100730

慢性疼痛;Rho蛋白;Rho激酶;抑制劑;鎮(zhèn)痛

RhoA是一種小分子G蛋白，RhoA的主要效應(yīng)底物Rho激酶(Rho-associated coiled-coil-forming kinases，ROCK)是一種絲氨酸/蘇氨酸激酶，主要在細(xì)胞遷移、分化和生存等方面起重要作用［1］。RhoA/ROCK的異常激活可在很多疾病中被觀察到，如中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病、心血管疾病、腫瘤等。目前大量研究表明，RhoA/ ROCK通過(guò)其介導(dǎo)的細(xì)胞信號(hào)傳導(dǎo)系統(tǒng)在慢性疼痛中也發(fā)揮著重要作用。本文通過(guò)闡述RhoA/ROCK信號(hào)通路在慢性疼痛中的作用機(jī)制，為臨床治療疼痛提供新的思路和策略。

RhoA/Rho激酶通路

Rho GTP酶

Rho GTP酶是Ras GTP酶超家族的一個(gè)亞家族，通過(guò)在失活(GDP-結(jié)合)和激活(GTP-結(jié)合)狀態(tài)間的轉(zhuǎn)換精確調(diào)控多條信號(hào)通路。其在激活和失活狀態(tài)間的轉(zhuǎn)換主要由以下幾類蛋白調(diào)控:GTP酶激活蛋白(GTPase-activating proteins，GAPs)、鳥嘌呤核苷酸轉(zhuǎn)換因子(guanine nucleotide-exchange factors，GEFs)和鳥嘌呤核苷酸分離抑制因子(guanine nucleotide-dissociation inhibitors，GDIs)。GAPs主要增強(qiáng)內(nèi)源性GTP酶的活性，GEFs主要催化GDP結(jié)合態(tài)到GTP結(jié)合態(tài)的轉(zhuǎn)換，GDIs則將GTP酶以GDP結(jié)合的失活狀態(tài)隔絕在胞漿內(nèi)。

其中，RhoA是小分子G蛋白家族的一個(gè)成員，在許多細(xì)胞功能中起到重要作用，包括細(xì)胞骨架重排，細(xì)胞運(yùn)動(dòng)、吞噬、轉(zhuǎn)運(yùn)和轉(zhuǎn)錄的調(diào)控以及細(xì)胞的生長(zhǎng)［2］。

Rho激酶

ROCK是一種絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶，主要有2種異構(gòu)體:ROCKⅠ和ROCKⅡ。2種異構(gòu)體在總氨基酸序列上有約65%的重疊，其中激酶端重疊達(dá)92%。盡管兩種異構(gòu)體在蛋白序列上高度相似，組織分布卻有所不同。ROCKⅠ主要表達(dá)在非神經(jīng)組織中，如心臟、肺、骨骼肌，而ROCKⅡ則主要在腦組織中高表達(dá)［3］。

ROCK的活性受起C端負(fù)性調(diào)節(jié)，在失活狀態(tài)下，C端區(qū)域反折遮蓋激酶區(qū)，從而形成自身抑制的環(huán)形結(jié)構(gòu)［4］。當(dāng)GTP結(jié)合狀態(tài)的Rho與ROCK的相應(yīng)區(qū)域結(jié)合時(shí)，ROCK的自身抑制狀態(tài)改變，從而激酶活化。其他可激活ROCK的信號(hào)包括花生四烯酸、鞘氨醇磷脂等，它們對(duì)ROCK的激活不依賴Rho蛋白［5］。

ROCK的激活主要通過(guò)對(duì)目標(biāo)蛋白的磷酸化。其中一個(gè)主要的底物是肌球蛋白輕鏈(myosin light chain，MLC)。RhoA/ROCK介導(dǎo)的MLC磷酸化引起肌球蛋白與肌動(dòng)蛋白相互作用，從而引起細(xì)胞骨架重排等一系列改變［6］。此外，ROCK可以通過(guò)使MLC磷酸酶失活從而間接調(diào)節(jié)MLC磷酸化的量。ROCK的其他底物包括絲氨酸/蘇氨酸激酶LIM激酶1和2［7］、中間絲蛋白(例如波形蛋白、膠質(zhì)原纖維酸性蛋白、神經(jīng)絲)、微管相關(guān)蛋白2(microtubule-associated protein，MAP2)、tau蛋白和腦衰蛋白反應(yīng)調(diào)節(jié)蛋白2 (collapsin response mediator protein 2，CRMP2)等。

RhoA/Rho激酶通路抑制劑

Fasudil和Y-27632是最早發(fā)現(xiàn)的ROCK抑制劑，主要通過(guò)拮抗細(xì)胞內(nèi)鈣發(fā)揮作用?？紤]到不同ROCKⅠ和ROCKⅡ序列的高度相似性，目前還沒有ROCK選擇拮抗劑。此外，H-1152、AS1892802等較強(qiáng)的ROCK拮抗劑也在基礎(chǔ)研究中廣泛應(yīng)用。

HMG-CoA還原酶抑制劑對(duì)RhoA/ROCK通路也有抑制作用。HMG-CoA還原酶抑制劑調(diào)節(jié)了許多小分子G蛋白的功能，例如Ras、Rho、Rab、Rac、Ral和Rap［8］。以往研究表明，他汀類藥物通過(guò)抑制HMGCoA還原酶活性，降低了類異戊二烯的含量。類異戊二烯是包括小GTP結(jié)合蛋白的許多蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)錄后修飾中一種重要的脂質(zhì)連接物質(zhì)，可協(xié)助這些蛋白質(zhì)從胞質(zhì)到胞膜的轉(zhuǎn)位。甲羥戊酸是類異戊二烯的前體，為驗(yàn)證類異戊二烯在小分子G蛋白激活中的作用，Ohsawa等［9］發(fā)現(xiàn)鞘內(nèi)注射甲羥戊酸可誘發(fā)熱痛敏;鞘內(nèi)預(yù)注射ROCK抑制劑Y-27632可完全拮抗甲羥戊酸誘發(fā)的熱痛敏，而甲羥戊酸誘發(fā)熱痛敏僅可被尼基轉(zhuǎn)移酶抑制劑FTI-277部分拮抗。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)，鞘內(nèi)注射甲羥戊酸可增加脊髓內(nèi)RhoA從胞質(zhì)到胞膜的轉(zhuǎn)移，而用HMG-CoA還原酶抑制劑辛伐他汀可緩解福爾馬林誘導(dǎo)的二相疼痛反應(yīng)。

RhoA/Rho激酶通路與疼痛

在神經(jīng)系統(tǒng)中，RhoA信號(hào)的活化參與了突觸可塑性的形成。在軸突的延伸、樹突結(jié)構(gòu)重塑及海馬神經(jīng)元長(zhǎng)時(shí)程增強(qiáng)的形成中，RhoA都扮演重要角色。RhoA/ROCK通路參與了慢性疼痛的發(fā)展和維持。

Büyükaf?ar等［10］應(yīng)用熱板潛伏期和腹部收縮反射觀察小鼠行為的研究發(fā)現(xiàn)ROCK參與了傷害感受，ROCK抑制劑Y-27632可延長(zhǎng)熱板潛伏期并減少疼痛刺激后腹部收縮發(fā)射，Western blot分析也證明了小鼠脊髓和腦組織中ROCK-2蛋白的表達(dá)。Boyce-Rustay等［11］在神經(jīng)病理性疼痛、骨關(guān)節(jié)炎性疼痛和炎性疼痛以及辣椒素誘導(dǎo)的急性痛和繼發(fā)性痛覺過(guò)敏的模型中評(píng)估了ROCK抑制劑Fasudil的鎮(zhèn)痛作用，發(fā)現(xiàn)Fasudil對(duì)神經(jīng)病理性疼痛和辣椒素誘導(dǎo)的疼痛療效顯著，對(duì)于炎性疼痛治療效果較弱，對(duì)骨關(guān)節(jié)痛和脊髓神經(jīng)結(jié)扎所導(dǎo)致疼痛的療效呈劑量依賴性。

RhoA/ROCK通路通過(guò)調(diào)節(jié)一氧化氮系統(tǒng)參與神經(jīng)病理性疼痛

一氧化氮(nitric oxide，NO)是周圍和中樞神經(jīng)系統(tǒng)傷害性感受傳導(dǎo)中一個(gè)重要的信號(hào)分子。目前研究?jī)A向于認(rèn)為在脊髓水平低劑量和高劑量NO對(duì)傷害性感受的作用相反。鞘內(nèi)注射低劑量NO供體可對(duì)糖尿病神經(jīng)病理性疼痛小鼠和長(zhǎng)春新堿誘導(dǎo)的神經(jīng)病理性疼痛小鼠產(chǎn)生鎮(zhèn)痛作用［12］，高濃度NO供體鞘內(nèi)注射則降低傷害性感受閾值［13］。

Ohsawa等［9］研究了RhoA/ROCK通路在糖尿病小鼠熱覺過(guò)敏中的作用。研究發(fā)現(xiàn)與對(duì)照組相比，鏈脲佐菌素(streptozotocin，STZ)誘導(dǎo)的糖尿病小鼠脊髓中與細(xì)胞膜結(jié)合的RhoA(激活狀態(tài))表達(dá)增高;鞘內(nèi)注射RhoA抑制劑胞外酶C3(exoenzyme C3)及ROCK抑制劑Y-27632治療可緩解糖尿病小鼠的熱痛敏和機(jī)械痛敏;此外，腹腔注射辛伐他汀治療也緩解了糖尿病小鼠的疼痛，表明HMG-CoA還原酶抑制劑對(duì)熱痛敏的抑制主要通過(guò)RhoA/ROCK通路發(fā)揮作用。為了驗(yàn)證辛伐他汀對(duì)熱痛敏的緩解是通過(guò)HMG-CoA還原酶途徑，Ohsawa等［9］在使用辛伐他汀的同時(shí)使用HMG-CoA還原酶的產(chǎn)物甲羥戊酸，發(fā)現(xiàn)辛伐他汀對(duì)熱痛敏的緩解作用被完全拮抗。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)，糖尿病小鼠脊髓中內(nèi)皮型一氧化氮合酶(endothelial nitric oxide synthase，eNOS)和NO代謝物含量也有所下降，而辛伐他汀治療升高了脊髓中eNOS和NO代謝物含量，證明辛伐他汀對(duì)糖尿病神經(jīng)病理性疼痛的緩解作用主要是通過(guò)抑制RhoA活性從而增加eNOS和NO代謝物來(lái)實(shí)現(xiàn)。

RhoA/ROCK通路通過(guò)活化膠質(zhì)細(xì)胞參與神經(jīng)病理性疼痛

神經(jīng)病理性疼痛具有神經(jīng)免疫功能障礙的許多特點(diǎn)，膠質(zhì)細(xì)胞可被傷害性刺激激活并在痛覺過(guò)敏的產(chǎn)生和持續(xù)中起到重要作用。激活的小膠質(zhì)細(xì)胞和星形膠質(zhì)細(xì)胞是中樞神經(jīng)系統(tǒng)中炎性介質(zhì)和細(xì)胞因子的一個(gè)重要來(lái)源。應(yīng)用他汀類藥物被證明可以在神經(jīng)病理性疼痛模型中抑制機(jī)械和熱痛敏的發(fā)展，并可以明顯降低脊神經(jīng)損傷引起的脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞和星形膠質(zhì)細(xì)胞活化［14］。近年來(lái)有研究表明他汀類藥物主要通過(guò)抑制Rho蛋白的異戊二烯化，從而導(dǎo)致其功能性失活來(lái)發(fā)揮抗炎作用［15］。

Chen等［16］在福爾馬林誘導(dǎo)的疼痛模型中研究辛伐他汀的鎮(zhèn)痛作用機(jī)制，發(fā)現(xiàn)大鼠鞘內(nèi)預(yù)注射辛伐他汀可明顯緩解福爾馬林引起的二相急性疼痛反應(yīng)，連續(xù)使用7 d還可抑制福爾馬林注射引起的長(zhǎng)時(shí)程痛覺過(guò)敏。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞活化和磷酸化p38絲裂原活化蛋白激酶可以被辛伐他汀明顯抑制。而外周福爾馬林注射可引起脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞RhoA的明顯活化，其活化可被辛伐他汀所抑制。

RhoA/ROCK通路通過(guò)調(diào)節(jié)單胺能系統(tǒng)參與神經(jīng)病理性疼痛

在人類急性腦損傷的尸體解剖中發(fā)現(xiàn)腦部和脊髓的損傷可以分別誘導(dǎo)人類損傷部位表達(dá)RhoA、RhoB，在動(dòng)物損傷模型中也可發(fā)現(xiàn)大鼠ROCKⅠ、ROCKⅡ的表達(dá)。研究表明腦部和脊髓的損傷可明顯激活RhoA/ROCK通路，且這一激活可持續(xù)很長(zhǎng)時(shí)間，使得ROCK抑制劑對(duì)損傷后急性、亞急性甚至慢性病變都有明顯的治療意義。

既往研究認(rèn)為下行單胺能的系統(tǒng)能緩解外周傷害性感受的傳導(dǎo)。鞘磷脂源性抑制物(myelin-associated glycoprotein and oligodendrocyte myelin glycoprotein，NogoA)通過(guò)與Nogo受體作用能妨礙軸突生長(zhǎng)［17］，Nogo受體又可以與p75神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子受體相互作用來(lái)激活小GTP酶RhoA，RhoA的激活可以引起肌動(dòng)蛋白去極化和生長(zhǎng)錐塌陷［18-19］。Ramer等［20］研究發(fā)現(xiàn)抑制ROCK可在增強(qiáng)脊神經(jīng)背根切斷術(shù)后軸突重塑的同時(shí)緩解冷痛敏。應(yīng)用ROCK抑制劑Y-27632可加速去神經(jīng)傳入的脊髓背角中5-羥色胺能和酪氨酸羥化酶陽(yáng)性軸突重塑，Y-27632的這種對(duì)單胺能神經(jīng)軸突的作用同樣能抑制脊髓背角傷害性刺激的傳導(dǎo)。其研究發(fā)現(xiàn)ROCK抑制劑對(duì)脊神經(jīng)背根切斷術(shù)后大鼠的熱痛閾和機(jī)械痛閾影響不顯著，而對(duì)冷痛閾有明顯提高。

RhoA/ROCK通路通過(guò)影響細(xì)胞骨架參與神經(jīng)病理性疼痛

ROCKs對(duì)細(xì)胞骨架的作用主要通過(guò)磷酸化其下游LIM激酶或肌球蛋白輕鏈激酶而實(shí)現(xiàn)，可影響細(xì)胞骨架移動(dòng)性、細(xì)胞形態(tài)等［21-22］。神經(jīng)元的細(xì)胞骨架不僅保證細(xì)胞三維結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性，還為其對(duì)外界刺激的反應(yīng)提供重要的基礎(chǔ)結(jié)構(gòu)。動(dòng)態(tài)調(diào)節(jié)細(xì)胞骨架，尤其是肌動(dòng)蛋白，可為細(xì)胞內(nèi)蛋白的移動(dòng)構(gòu)建網(wǎng)絡(luò)。這一機(jī)制可使高爾基體將新合成的蛋白質(zhì)運(yùn)輸至胞膜［23］。而絲切蛋白(cofilin)及其上游LIM結(jié)構(gòu)域蛋白激酶(LIM domain kinase，LIMK)被認(rèn)為與某些蛋白從高爾基體釋放并運(yùn)輸?shù)桨は嚓P(guān)［24］。Mittal等［25］發(fā)現(xiàn)當(dāng)delta阿片類受體與其激動(dòng)劑結(jié)合后，可通過(guò)ROCK、LIMK和b-arr1激活絲切蛋白以調(diào)節(jié)肌動(dòng)蛋白的聚合作用，從而使結(jié)合delta阿片類受體從高爾基體運(yùn)輸至胞膜，以增強(qiáng)其結(jié)合delta阿片類受體的功能，而這一通路可被ROCK抑制劑所阻斷。

Yoshimi等［26］發(fā)現(xiàn)新型高選擇性ROCK抑制劑AS1892802對(duì)關(guān)節(jié)炎疼痛大鼠有鎮(zhèn)痛作用。AS1892802對(duì)炎性和非炎性疼痛都具有鎮(zhèn)痛作用。他們認(rèn)為AS1892802的鎮(zhèn)痛作用與其對(duì)細(xì)胞骨架的調(diào)節(jié)密切相關(guān)。

Dina等［27］研究也發(fā)現(xiàn)給炎性疼痛大鼠皮內(nèi)注射一種肌動(dòng)蛋白微絲解聚劑(latrunculin A)具有鎮(zhèn)痛效果，提示細(xì)胞骨架在痛覺信號(hào)的傳導(dǎo)過(guò)程中起到重要作用。Yoshimi等［26］發(fā)現(xiàn)AS1892802通過(guò)和微絲解聚劑(latrunculin A)相同的作用方式調(diào)節(jié)外周感覺神經(jīng)末梢細(xì)胞骨架的功能。

結(jié)語(yǔ)與展望

綜上，RhoA/ROCK信號(hào)通路在疼痛中起重要作用。近期多項(xiàng)研究都證明了小分子G蛋白在包括神經(jīng)病理性疼痛和痛覺過(guò)敏等多種疾病狀態(tài)中的活化。Qiu等［28］研究發(fā)現(xiàn)坐骨神經(jīng)松結(jié)扎模型大鼠神經(jīng)病理性疼痛與RhoA/LIMK/cofilin與通路激活相關(guān)，并且鞘內(nèi)注射辛伐他汀可抑制該通路的活化，緩解神經(jīng)病理性疼痛。Ohsawa等［29］認(rèn)為RhoA/ROCK能引起星形膠質(zhì)細(xì)胞活化，進(jìn)而使豆蔻?；槐彼岬鞍准っ窩底物蛋白(myristoylated alanine-rich C-kinase substrate，MARCKS)磷酸化，產(chǎn)生神經(jīng)病理性疼痛和痛覺過(guò)敏，辛伐他汀可通過(guò)抑制RhoA的活化，緩解痛覺過(guò)敏。RhoA/ROCK信號(hào)通路抑制劑在心血管、腫瘤等眾多領(lǐng)域都有廣泛應(yīng)用［30-31］。因此，筆者認(rèn)為抑制RhoA/ROCK信號(hào)通路在疼痛治療中具有重要前景。

［1］Bishop AL，Hall A．A Rho GTPases and their effector proteins［J］．Biochem J，2000，348:241-255．

［2］Takai Y，Sasaki T，Matozaki T．Small GTP-binding proteins［J］．Physiol Rev，2001，81:153-208．

［3］Komagome R，Kimura K，Saito M．Postnatal changes in Rho and Rho-related proteins in the mouse brain［J］．Jpn J Vet Res，2000，47:127-133．

［4］Amano M，Chihara K，Nakamura N，et al．The COOH terminus of Rho-kinase negatively regulates rho-kinase activity［J］．J Biol Chem，1999，274:32418-32424．

［5］Fu X．The effects of the Rho-kinase inhibitor Y-27632 on arachidonic acid-，GTP S-，and phorbol ester-induced Casensitization of smooth muscle［J］．FEBS Lett，1998，440: 183-187．

［6］Kimura K，Kaibuchi K．Regulation of myosin phosphatase by Rho and Rho-associated kinase(Rho-kinase)［J］．Science，1996，273:245-248．

［7］Morin P，Wickman G，Munro J，et al．Differing contributions of LIMK and ROCK to TGFβ-induced transcription，motility and invasion［J］．Eur J Cell Biology，2011，90:13-25．

［8］Zhu Y，Casey PJ，Kumar AP，et al．Deciphering the signaling networks underlying simvastatin-induced apoptosis in human cancer cells:evidence for non-canonical activation of RhoA and Rac1 GTPases［J］．Cell Death Dis，2013，4:e568．

［9］Ohsawa M，Aasato M，Hayashi SS，et al．RhoA/Rho kinase pathway contributes to the pathogenesis of thermal hyperalgesia in diabetic mice［J］．Pain，2011，152:114-122．

［10］Büyükaf?ar K，Yal?in I，Kurt AH，et al．Rho-kinase inhibitor，Y-27632，has an antinociceptive effect in mice［J］．Eur J Pharmacol，2006，541:49-52．

［11］Boyce-Rustay JM，Simler GH，McGaraughty S，et al．Characterization of Fasudil in preclinical models of pain［J］．J Pain，2010，11:941-949．

［12］Kamei J，Tamura N，Saitoh A．Possible involvement of the spinal nitric oxide/cGMP pathway in vincristine-induced painful neuropathy in mice［J］．Pain，2005，117:112-120．

［13］Sousa AM，Prado WA．The dual effect of a nitric oxide donor in nociception［J］．Brain Res，2001，897:9-19．

［14］Chu LW，Chen JY，Yu KL，et al．Neuroprotective and antiinflammatory activities of atorvastatin in a rat chronic constriction injury model［J］．Int J Immunopathol Pharmacol，2012，25:219-230．

［15］Clarke RM，O'Connell F，Lyons A，et al．The HMG-CoA reductase inhibitor，atorvastatin，attenuates the effects of acute administration of amyloid-beta1-42 in the rat hippocampus in vivo［J］．Neuropharmacology，2007，52:136-145．

［16］Chen XY，Li K，Light AR，et al．Simvastatin attenuates formalin-induced nociceptive behaviors by inhibiting microglial RhoA and p38 MAPK activation［J］．J Pain，2013，14: 1310-1319．

［17］Fournier AE，GrandPre T，Strittmatter SM．Identification of a receptor mediating Nogo-66 inhibition of axonal regeneration［J］．Nature，2001，409:341-346．

［18］Wang KC，Koprivica V，Kim JA，et al．Oligodendrocyte-myelin glycoprotein is a Nogo receptor ligand that inhibits neurite outgrowth［J］．Nature，2002，417:941-944．

［19］Jalink K，van Corven EJ，Hengeveld T，et al．Inhibition of lysophosphatidate-and thrombin-induced neurite retraction and neuronal cell rounding by ADP ribosylation of the small GTP-binding protein Rho［J］．J Cell Biol，1994，126:801-810．

［20］Ramer LM，Borisoff JF，Ramer MS．Rho-kinase inhibition enhances axonal plasticity and attenuates cold hyperalgesia after dorsal rhizotomy［J］．J Neurosci，2004，24:10796-10805．

［21］Matsuoka T，Yashiro M．Rho/ROCK signaling in motility and metastasis of gastric cancer［J］．World J Gastroenterol，2014，20:13756-13766．

［22］Burridge K，Wennerberg K．Rho and Rac take center stage［J］．Cell，2004，116:167-179．

［23］Lowe M．Structural organization of the Golgi apparatus［J］．Curr Opin Cell Biol，2011，23:85-93．

［24］Salvarezza S．LIM kinase 1 and cofilin regulate actin filament population required for dyna-min-dependent apical carrier fission from the trans-Golgi network［J］．Mol Biol Cell，2009，20:438-451．

［25］Mittal N，Roberts K，Pal K，et al．Select G-protein-coupled receptors modulate agonist-induced signaling via a ROCK，LIMK，and β-arrestin 1 pathway［J］．Cell Rep，2013，5: 1010-1021．

［26］Yoshimi E，Kumakura F，Hatori C，et al．Antinociceptive effects of AS1892802，a novel Rho kinase inhibitor，in rat models of inflammatory and noninflammatory arthritis［J］．J Pharmacol Exp Ther，2010，334:955-963．

［27］Dina OA．Role of the sensory neuron cytoskeleton in second messenger signaling for inflammatory pain［J］．Neuron，2003，39:613-624．

［28］Qiu Y，Chen WY．Wang ZY，et al．Simvastatin Attenuates Neuropathic Pain by Inhibiting the RhoA/LIMK/Cofilin Pathway［J］．Neurochem Res，2016，41:2457-2469．

［29］Ohsawa M，Ishikura K，Mutoh J，et al．Involvement of inhibition of RhoA/Rho kinase signaling in simvastatin-induced amelioration of neuropathic pain［J］．Neuroscience，2016，333:204-213．

［30］Pearson JT，Jenkins MJ，Edgley AJ，et al．Acute Rho-kinase inhibition improves coronary dysfunction in vivo，in the early diabetic microcirculation［J］．Cardiovasc Diabetol，2013，12:111．

［31］Matsuoka T，Yashiro M．Rho/ROCK signaling in motility and metastasis of gastric cancer［J］．World J Gastroenterol，2014，20:13756-13766．

黃宇光電話:010-69155580，E-mail:garybeijing@163．com

R441.1

A

1674-9081(2016)06-0454-04

10.3969/j.issn.1674-9081.2016.06.011

2014-12-09)