QuEChERS樣品前處理方法聯(lián)合在線GPC/GC-MS測定水果中15種三唑類農(nóng)藥殘留量方法評估

李海飛，聶繼云，徐國鋒，李　靜，閆　震，李志霞，毋永龍，匡立學(xué)

(中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院果樹研究所，農(nóng)業(yè)部果品質(zhì)量安全風(fēng)險評估實驗室(興城)，農(nóng)業(yè)部果品及

苗木質(zhì)量監(jiān)督檢驗測試中心(興城)，遼寧　興城　125100)

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QuEChERS樣品前處理方法聯(lián)合在線GPC/GC-MS測定水果中15種三唑類農(nóng)藥殘留量方法評估

李海飛，聶繼云*，徐國鋒，李靜，閆震，李志霞，毋永龍，匡立學(xué)

(中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院果樹研究所，農(nóng)業(yè)部果品質(zhì)量安全風(fēng)險評估實驗室(興城)，農(nóng)業(yè)部果品及

苗木質(zhì)量監(jiān)督檢驗測試中心(興城)，遼寧興城125100)

摘要：比較了3種QuEChERS方法(未加緩沖鹽的原創(chuàng)QuEChERS方法、加乙酸鹽的AOAC 2007.01方法以及加檸檬酸緩沖鹽的CEN 15662方法)提取水果中15種三唑類農(nóng)藥的有效性，考察了乙二胺-N-丙基硅烷(PSA)和C18吸附劑的凈化效果，以提取后添加法評估了蘋果、梨、桃、葡萄、櫻桃、香蕉及橙子中各目標(biāo)化合物的基質(zhì)效應(yīng)。結(jié)果表明，3種QuEChERS方法的回收率無明顯差異，但原創(chuàng)QuEChERS方法操作簡單、成本較低，且有較好的回收率和較低的基質(zhì)效應(yīng)。聯(lián)合使用PSA和C18吸附劑的凈化效果優(yōu)于單獨使用PSA或C18的凈化效果。15種三唑類農(nóng)藥在7種基質(zhì)中均存在基質(zhì)增強(qiáng)效應(yīng)。采用原創(chuàng)QuEChERS方法結(jié)合在線凝膠滲透色譜串聯(lián)氣相色譜-質(zhì)譜(GPC/GC-MS)，實現(xiàn)了在線凈化與分析檢測的自動化，縮短了分析時間，彌補(bǔ)了原創(chuàng)QuEChERS方法去除干擾不徹底的缺陷，同時利用PTV大體積進(jìn)樣和進(jìn)樣口程序升溫方式提高了檢測靈敏度。15種農(nóng)藥在7種基質(zhì)3個加標(biāo)水平(20，50，100 μg/kg)下的平均回收率為85.7%～120.1%，相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為0.2%～11.5%，在10～400 μg/L 范圍內(nèi)線性關(guān)系良好，相關(guān)系數(shù)(r)大于0.998；檢出限為0.9～9.5 μg/kg。該方法簡便快速、準(zhǔn)確可靠、經(jīng)濟(jì)環(huán)保，適用于水果中三唑類農(nóng)藥多殘留的快速檢測。

關(guān)鍵詞：QuEChERS；在線凝膠滲透色譜串聯(lián)氣相色譜-質(zhì)譜；三唑類農(nóng)藥殘留；基質(zhì)效應(yīng)；水果

三唑類農(nóng)藥屬于有機(jī)雜環(huán)類化合物，種類很多，可作為殺菌劑、殺蟲劑和植物生長調(diào)節(jié)劑，因其作用機(jī)制獨特且藥效滿意，并具有廣譜、內(nèi)吸、低毒等優(yōu)良特性，在應(yīng)用方面越來越受到人們的重視[1]。目前三唑類農(nóng)藥在水果的種植過程中被廣泛應(yīng)用且施用量逐漸加大，由其引發(fā)的殘留問題也日益受到關(guān)注。為了保證消費者安全，許多發(fā)達(dá)國家及國際組織對不同水果中三唑類農(nóng)藥殘留進(jìn)行了嚴(yán)格限量，最大殘留限量為0.01 mg/kg[2-3]。

樣品前處理是農(nóng)藥殘留分析過程最為關(guān)鍵和耗時的環(huán)節(jié)，在很大程度上決定了分析結(jié)果的準(zhǔn)確性，并且高效的前處理技術(shù)還能大大減少分析成本和時間。QuEChERS方法最早由Anastassiades等[4]于2003年提出，因其在水果蔬菜農(nóng)藥殘留分析中具有快速、簡單、便宜、有效、可靠和安全等優(yōu)勢，已在世界很多國家和地區(qū)得到驗證和推廣[5-7]，并改進(jìn)形成了AOAC 2007.01、CEN 15662和NY/T 1380-2007標(biāo)準(zhǔn)方法。目前對水果中三唑類農(nóng)藥殘留的測定已有報道[1,8-9]，但采用QuEChERS前處理方法提取水果中三唑類農(nóng)藥殘留的報道較少[10-13]。

QuEChERS方法采用分散固相萃取凈化，在應(yīng)用氣相色譜-質(zhì)譜檢測時往往因出現(xiàn)襯管和柱前端嚴(yán)重污染而導(dǎo)致色譜峰丟失或拖尾、背景高、基質(zhì)效應(yīng)嚴(yán)重，從而影響了一些農(nóng)藥的定性和定量檢測[6]。近年來，在線凝膠滲透色譜/氣相色譜-質(zhì)譜(GPC/GC-MS)已應(yīng)用于復(fù)雜基質(zhì)中農(nóng)藥殘留的分析[5,13-15]，在線GPC/GC-MS系統(tǒng)中GPC可有效去除樣品基質(zhì)中可能干擾目標(biāo)化合物檢測的大分子量的油脂、色素等組分，從而降低背景和改善峰形，減少基質(zhì)效應(yīng)，彌補(bǔ)了QuEChERS方法去除干擾不徹底的缺陷。同時采取樣品在線處理、大體積進(jìn)樣和氣相色譜進(jìn)樣口的程序升溫方式提高了檢測靈敏度和選擇性，縮短了分析時間，減少了溶劑用量，降低了有機(jī)試劑對分析者和環(huán)境的危害。目前采用QuEChERS前處理方法聯(lián)合在線GPC/GC-MS對水果中多種三唑類農(nóng)藥殘留進(jìn)行測定的研究尚未見報道。

本研究以果樹生產(chǎn)中常用的三唑酮、烯效唑、戊唑醇等14種三唑類農(nóng)藥以及中華人民共和國農(nóng)業(yè)部公告第199號中規(guī)定的在果樹上不得使用的氯唑磷農(nóng)藥為目標(biāo)物，比較了3種QuEChERS樣品前處理方法(即未加入緩沖鹽的原創(chuàng)QuEChERS方法[4]、加入乙酸鹽緩沖鹽的AOAC 2007.01方法[16]以及加入檸檬酸緩沖鹽的CEN 15662方法[17])提取水果中15種三唑類農(nóng)藥的有效性，考察了乙二胺-N-丙基硅烷(PSA)及C18吸附劑對15種三唑類農(nóng)藥的凈化效果，以及目標(biāo)化合物在不同水果中的基質(zhì)效應(yīng)。通過原創(chuàng)QuEChERS前處理方法結(jié)合GPC/GC-MS檢測方法，實現(xiàn)了在線凈化與分析檢測的自動化。該方法簡便快速、經(jīng)濟(jì)環(huán)保、結(jié)果準(zhǔn)確可靠，適用于水果中三唑類農(nóng)藥殘留的定性定量分析。

1實驗部分

1.1儀器與試劑

GPC/GC-MS 2010Ultra在線凝膠色譜串聯(lián)氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀(日本島津公司)；立式大容量高速離心機(jī)(日本 Hitachi公司)；N-EVAT24氮吹儀(美國Organomation Associatews)。

乙腈、丙酮、環(huán)己烷(HPLC級，F(xiàn)isher公司)；乙酸、甲苯(HPLC級，美國J.T.Baker公司)；PSA 、C18吸附劑(粒徑范圍40～60 μm，天津艾杰爾公司)；無水硫酸鎂、氯化鈉、無水乙酸鈉、檸檬酸鈉(分析純，天津市科密歐公司)，檸檬酸氫二鈉(分析純，美國Alfa Aesar公司)；微孔濾膜(0.22 μm，天津津騰公司)。

氟硅唑、丙環(huán)唑標(biāo)準(zhǔn)品(純度≥97%,德國DR公司) 分別以丙酮配制成濃度為1 000 mg/L的標(biāo)準(zhǔn)溶液；烯效唑、己唑醇、腈菌唑(規(guī)格100 μg/mL,農(nóng)業(yè)部環(huán)境保護(hù)研究所);其余農(nóng)藥標(biāo)樣均購于農(nóng)業(yè)部環(huán)境質(zhì)量監(jiān)督檢驗測試中心(天津)，規(guī)格為1 000 mg/L。15種農(nóng)藥根據(jù)需要用丙酮-環(huán)己烷(3∶7)配成合適的混合標(biāo)準(zhǔn)工作溶液，于-20 ℃冰箱中保存?；|(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液：用空白樣品基質(zhì)溶液配成不同濃度的基質(zhì)混合標(biāo)準(zhǔn)溶液，用于制作標(biāo)準(zhǔn)工作曲線，現(xiàn)配現(xiàn)用。

1.2樣品前處理

1.2.1原創(chuàng)QuEChERS方法(即未加緩沖鹽的QuEChERS方法)準(zhǔn)確稱取勻漿后的水果樣品10 g(精確至0.01 g)于50 mL塑料離心管中，加入10.0 mL乙腈溶液、1.0 g NaCl、4.0 g無水MgSO4，振搖1 min，以8 000 r/min高速離心5 min，吸取1.0 mL上層清液轉(zhuǎn)入裝有25 mg PSA、150 mg無水MgSO4的10 mL離心管中，渦旋混勻1 min，靜置，上清液過0.22 μm濾膜后，待測。

1.2.2AOAC 2007.01方法(即加乙酸鹽緩沖鹽的QuEChERS方法)準(zhǔn)確稱取勻漿后的水果樣品15 g(精確至0.01 g)于50 mL塑料離心管中，加入15.0 mL 1% 乙酸-乙腈溶液、1.5 g NaCl、6.0 g無水MgSO4、1.5 g無水乙酸鈉，振搖1 min，以8 000 r/min高速離心5 min，吸取1.0 mL上層清液轉(zhuǎn)入裝有50 mg PSA、150 mg 無水MgSO4的10 mL離心管中，渦旋混勻1 min，靜置，上清液過0.22 μm濾膜后，待測。

1.2.3CEN 15662方法(即加檸檬酸緩沖鹽的QuEChERS方法) 準(zhǔn)確稱取勻漿后的水果樣品10 g(精確至0.01 g)于50 mL塑料離心管中，加入10.0 mL乙腈后振搖1 min,加入1.0 g NaCl、4.0 g無水MgSO4、1.0 g檸檬酸鈉、0.5 g檸檬酸氫二鈉，振搖1 min，其余操作與“1.2.1”一致。

1.3色譜-質(zhì)譜條件

1.3.1GPC條件凈化柱：Shodex EV-200凝膠色譜柱(150 mm×2.1 mm)；檢測波長：210 nm；流動相：丙酮-環(huán)己烷(3∶7)，流速：0.1 mL/min；柱溫：40 ℃；進(jìn)樣量：10 μL。

1.3.2GC-MS分析條件色譜柱：惰性毛細(xì)管柱(5 m×0.53 mm)，預(yù)柱 Rtx-5 ms(5 m×0.25 mm×0.25 μm)，分析柱Rtx-5 ms(25 m×0.25 mm×0.25 μm),3根柱子通過兩通和三通串聯(lián)使用；PTV進(jìn)樣口：不分流恒壓模式，程序升溫：120 ℃保持5 min，以80 ℃/min升至250 ℃，保持36 min；柱溫箱程序升溫：82 ℃保持5 min，以9 ℃/min升至280 ℃,保持10 min；載氣：氦氣，總流速：30.0 mL/min；柱流速：1.75 mL/min。

離子源溫度：200 ℃；GC-MS接口溫度：250 ℃；溶劑延遲時間：9.5 min；檢測電壓：0.79 kV；質(zhì)譜檢測模式：選擇離子掃描模式(SIM)。每種化合物分別選擇1個定量離子，2個定性離子，具體SIM離子參數(shù)見表1。

表1　15種農(nóng)藥的保留時間、選擇離子、線性方程、相關(guān)系數(shù)及檢出限

(續(xù)表1)

No.CompoundRetentiontime(min)Selectedion(m/z)Linearrange(μg/kg)LinearequationrLOD(μg/kg)9Diniconazole(烯唑醇)24.85268*,270,23210～400y=10542.9x+2115.70.99977.310Triazophos(三唑磷)25.34162*,161,25710～400y=4380.4x-107402.70.99854.011Propiconazole(丙環(huán)唑)25.65,25.80259*,261,17310～400y=2651.4x-10869.10.99994.312Tebuconazole(戊唑醇)26.07250*,252,16310～400y=6938.6x+59113.30.99987.913Epoxiconazole(氟環(huán)唑)26.48192*,138,18310～400y=9246.0x-9304.30.99999.514Fenbuconazole(腈苯唑)29.83139*,125,19810～400y=302.7x+740.60.99908.315Difenoconazole(苯醚甲環(huán)唑)32.25,32.37323*,265,32510～400y=6130.7x-2160.90.99995.0

*quantitative ion；x：concentration of standard solution(μg/L)；y：peak area(μV·s)

圖1　GPC/GC-MS系統(tǒng)流路圖Fig.1　The flow diagram of GPC/GC-MS system

圖2　15種農(nóng)藥(1 mg/L)的總離子流圖Fig.2　TIC chromatogram of 15 triazole pesticides(1 mg/L)compound No.(1-15) correspond to the numbers in Table 1

2結(jié)果與討論

2.1GPC/GC-MS在線凈化

GPC/GC-MS分析農(nóng)藥殘留時，在GPC色譜柱中根據(jù)體積排阻的原理，樣品中分子量較大的脂肪和色素先從色譜柱中流出，通過六通閥的轉(zhuǎn)換將這些基質(zhì)干擾物排出系統(tǒng)，截取含有農(nóng)藥成分的部分導(dǎo)入試樣定量捕集環(huán)路(200 μL)，再進(jìn)行PTV進(jìn)樣和GC-MS分離檢測，實現(xiàn)了全自動的前處理和儀器分析測定的在線分析(圖1)。而合理的截取時間是影響目標(biāo)農(nóng)藥定性和定量的關(guān)鍵，若截取時間過早，色素和油脂的去除效果降低，若截取時間過晚，分子量大的目標(biāo)農(nóng)藥丟失，所以在GPC/GC-MS分析中必須根據(jù)實際分析對象選擇最佳截取時間。在GPC軟件中通常采用氟胺氰菊酯和滅螨猛標(biāo)準(zhǔn)品的保留時間來確定農(nóng)藥的收集開始和結(jié)束時間，本文15種三唑類農(nóng)藥中苯醚甲環(huán)唑的分子量最大為406.26，小于氟胺氰菊酯的分子量(502.9)，所以采用氟胺氰菊酯的保留時間作為干擾物和分析對象的切割時間，圖2為優(yōu)化截取條件下15種農(nóng)藥的總離子流(TIC)色譜圖。此外，GPC/GC-MS系統(tǒng)的進(jìn)樣量為10～20 μL，比單獨的GC-MS高5～10倍，樣品提取液經(jīng)分散固相萃取凈化后再利用在線GPC進(jìn)一步去除干擾物質(zhì)，彌補(bǔ)了QuEChERS方法去除干擾不徹底的缺陷，之后采用進(jìn)樣口程序升溫的方式提高檢測靈敏度和選擇性，從而獲得更低的檢出限。

2.23種QuEChERS方法回收率的比較

原始QuEChERS方法對穩(wěn)定性差的農(nóng)藥回收率較低，其結(jié)果與基質(zhì)的pH值有關(guān)[5]。加入乙酸鹽緩沖鹽體系和檸檬酸緩沖鹽體系的QuEChERS方法，其樣品提取液的pH值分別為4.8～5.5和5.0～5.5，一些對酸堿敏感的農(nóng)藥可獲得高回收率。本文以蘋果、梨、桃、櫻桃、葡萄、香蕉和橙子7種水果為基質(zhì)，在100 μg/kg加標(biāo)水平下分別采用3種QuEChERS方法進(jìn)行前處理。結(jié)果顯示，采用原創(chuàng)QuEChERS方法，15種農(nóng)藥在上述7種基質(zhì)中的回收率分別為：87.3%～103.8%，87.2%～106.1%，82.5%～100.5%，93.1%～101.9%，87.2%～102.5%，88.8%～106.2%和85.3%～107.3%；采用AOAC 2007.01方法，15種農(nóng)藥的回收率分別為87.6%～108.5%，90.2%～104.0%，92.8%～102.8%，93.1%～110.7%，82.2%～99.8%，90.8%～110.9%和96.5%～102.4%；采用CEN 15662方法，15種農(nóng)藥的回收率分別為：87.9%～113.6%，83.9%～111.6%，91.8%～109.4%，93.8%～113.3%，81.1%～106.6%，89.9%～102.2%和87.8%～114.7%。表2列出了蘋果、梨、桃、櫻桃4種基質(zhì)的萃取回收率。3種方法的回收率均滿足殘留檢測的要求，方法間無顯著差異(p>0.05)，分析其原因是目標(biāo)化合物在中性或酸性介質(zhì)中較穩(wěn)定，其次采用原創(chuàng)QuEChERS方法前處理時，其提取液pH值為4.5～5.8，接近于緩沖鹽體系QuEChERS方法的pH值。原創(chuàng)QuEChERS方法與兩種緩沖鹽體系QuEChERS方法相比，因無其他物質(zhì)的加入，引入雜質(zhì)的幾率較小，且操作更方便、成本更低。因此，在分析水果中三唑類農(nóng)藥的殘留量時，原創(chuàng)QuEChERS方法優(yōu)于兩種緩沖鹽體系QuEChERS方法。

表2　3種QuEChERS方法在4種基質(zhì)中的回收率比較

2.3基質(zhì)效應(yīng)

基質(zhì)效應(yīng)是指樣品分析液中分析物以外的共流出組分改變了分析物的響應(yīng)值，從而影響定量分析的準(zhǔn)確度和重現(xiàn)性[5]。本文以基質(zhì)匹配校準(zhǔn)曲線斜率/純?nèi)軇?biāo)準(zhǔn)曲線斜率比來確定基質(zhì)效應(yīng)，斜率比越接近1，基質(zhì)效應(yīng)越小，斜率比在0.80～1.20 之間則認(rèn)為無基質(zhì)效應(yīng)[5]。與兩種緩沖鹽體系QuEChERS方法相比，原創(chuàng)QuEChERS方法的基質(zhì)效應(yīng)整體略低于前兩種方法。圖3為采用原創(chuàng)QuEChERS方法處理的基質(zhì)效應(yīng)圖。結(jié)果顯示，同一化合物在不同基質(zhì)中的基質(zhì)效應(yīng)不同，不同化合物在同一基質(zhì)中的基質(zhì)效應(yīng)也各不相同，15種三唑類農(nóng)藥在7種基質(zhì)中均顯示基質(zhì)增強(qiáng)效應(yīng)，因此本實驗采用基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行定量，以補(bǔ)償基質(zhì)效應(yīng)對定量結(jié)果的影響。

圖3　15種農(nóng)藥在7種水果中的基質(zhì)效應(yīng)Fig.3　Matrix effects of 15 pesticides in 7 matrixes

2.4分散吸附劑的選擇

QuEChERS方法中最常用的吸附劑有PSA和C18。PSA因化學(xué)結(jié)構(gòu)中含有兩個氨基，具有較強(qiáng)的離子交換能力，能與基質(zhì)中的脂肪酸、糖類、甾醇等分子中的羥基形成共價鍵氫鍵而將其除去，但當(dāng)待檢農(nóng)藥分子中含有較多羥基時，則應(yīng)考慮PSA對該農(nóng)藥的吸附。C18是在硅膠末端鍵合十八烷基，由于十八烷基的非極性較強(qiáng)，因此易吸附非極性物質(zhì)如維生素、脂肪、甾醇、揮發(fā)油等。本實驗采用原創(chuàng)QuEChERS前處理方法，以蘋果、葡萄、桃為基質(zhì)，在100 μg/kg 加標(biāo)水平下，以回收率和凈化效果為主要指標(biāo)，比較以下4種凈化方式的凈化效果：Ⅰ.25 mg PSA+150 mg無水MgSO4；Ⅱ.25 mg C18+150 mg無水MgSO4；Ⅲ.25 mg PSA+25 mg C18+150 mg無水MgSO4；Ⅳ.50 mg PSA+150 mg無水MgSO4。結(jié)果顯示：①通過比較凈化前后提取液的顏色發(fā)現(xiàn)，C18對色素的去除能力明顯差于PSA，PSA+C18與PSA無明顯差異；②從圖4可知，PSA去除雜質(zhì)的效果明顯優(yōu)于單獨使用C18的去除效果，而凈化方式Ⅲ的凈化效果最佳；③從回收率結(jié)果可知，15 種農(nóng)藥在4種凈化方式下的回收率均為83.4%～108.7%，無明顯差別。因此，綜合考慮凈化劑對色素的吸附能力、去除雜質(zhì)的效果以及對回收率的影響等因素，本文最終采用方式Ⅲ(25 mg PSA+25 mg C18+150 mg無水MgSO4)作為凈化劑。

2.5定容溶液的選擇

采用GC-MS或GC-MS/MS檢測農(nóng)藥時，由于QuEChERS方法最終上機(jī)測定的溶劑為乙腈溶液，而乙腈溶液的極性較強(qiáng)，對玻璃襯管和毛細(xì)管色譜柱前端損傷較重，容易出現(xiàn)色譜峰丟失或拖尾、背景高等情況，需經(jīng)常更換襯管和惰性毛細(xì)管色譜柱，增加了檢測成本；再者GPC凝膠柱一般采用丙酮/環(huán)己烷或丙酮/乙酸乙酯為流動相，使用乙腈會降低其使用壽命，因此，本文將乙腈轉(zhuǎn)溶為丙酮/環(huán)己烷。在100 μg/kg 加標(biāo)水平下，以蘋果中多效唑和苯醚甲環(huán)唑為例，采用乙腈定容時多效唑和苯醚甲環(huán)唑的回收率分別為103.7%和100.7%，將乙腈轉(zhuǎn)溶為丙酮/環(huán)己烷定容時，多效唑和苯醚甲環(huán)唑的回收率分別為101.4%和100.5%，二者的回收率相近，所以本文最終采用丙酮/環(huán)己烷為定容溶液。

2.6方法評價

在優(yōu)化條件下，考察了15 種三唑類農(nóng)藥的線性范圍及相關(guān)系數(shù)。結(jié)果顯示，在10～400 μg/L范圍內(nèi)，目標(biāo)化合物的純?nèi)軇?biāo)準(zhǔn)溶液濃度(x，μg/L)與對應(yīng)的峰面積(y，μV·s)呈良好線性關(guān)系，相關(guān)系數(shù)為0.998 5～0.999 9，以20 μg/kg純?nèi)軇?biāo)準(zhǔn)溶液的定量離子對應(yīng)色譜信號的3倍信噪比(S/N)確定方法的檢出限為0.9～9.5 μg/kg(表1)。采用原創(chuàng)QuEChERS前處理方法，在20，50，100 μg/kg 3個加標(biāo)水平下，15種農(nóng)藥在7種水果基質(zhì)中的回收率為85.7%～120.1%，相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為0.2%～11.5%(表3)，方法符合農(nóng)藥殘留的檢測要求。

表3　15種農(nóng)藥在7 種基質(zhì)的加標(biāo)回收率及相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(n=6)

(續(xù)表3)

CompoundSpiked(μg/kg)ApplePearGrapePeachBananaCherryOrangeR/%sr/%R/%sr/%R/%sr/%R/%sr/%R/%sr/%R/%sr/%R/%sr/%100101.68.6105.86.799.51.9100.91.9104.71.1105.61.0104.03.6Paclobutrazol20101.28.1110.31.396.73.7101.05.3108.22.5101.010.7100.75.65099.12.7120.13.3116.13.3100.74.2104.21.186.611.4101.66.1100100.57.3101.19.9103.03.096.91.4106.61.7103.58.590.54.6Hexaconazole20103.05.5102.23.7109.84.0109.82.0106.47.497.23.898.08.55093.95.4116.52.8111.82.4102.04.8102.52.998.31.696.95.010096.86.5103.81.594.91.1101.01.8101.91.396.72.298.81.3Uniconazole2097.50.796.94.7101.86.2103.15.4103.16.298.34.299.25.65098.71.3112.52.7111.31.897.53.398.92.699.02.798.54.9100100.06.8100.72.396.12.9101.91.3100.71.697.33.2100.53.2Myclobutanil20105.83.096.84.4110.64.9106.31.6102.70.2101.51.3101.58.450100.02.1105.65.6115.32.2103.56.8102.00.9100.91.4100.95.4100100.38.797.31.895.44.6100.11.6103.01.6102.20.6100.61.3Flusilazole20100.24.3110.26.2107.94.798.55.5101.45.898.71.4102.98.55096.61.3104.55.9112.82.899.53.9101.10.798.31.197.13.410099.75.597.66.098.14.1104.81.1102.10.699.20.599.22.2Diniconazole2095.23.799.93.0101.14.896.05.7101.32.6101.72.194.69.450105.59.9111.53.2113.92.299.74.1102.73.1101.12.196.52.1100102.06.5103.45.999.93.7100.41.5105.81.4102.10.9101.02.1Triazophos2098.33.8104.12.499.86.497.13.7101.53.4100.85.9100.97.05092.81.5105.65.4104.82.293.84.4102.32.697.711.599.84.410099.34.199.00.793.63.7105.62.799.02.399.02.597.59.9Propiconazole2096.54.6100.01.3101.43.4101.42.699.94.298.11.997.18.15097.93.0110.43.3111.42.193.12.798.51.798.81.197.89.2100100.45.099.71.996.23.9105.42.5100.21.698.30.5100.32.1Tebuconazole2098.31.6100.81.3102.35.5103.93.299.86.9101.01.898.75.15098.92.5105.03.8110.71.2103.74.694.39.998.35.599.96.110096.41.696.93.695.67.0103.32.4102.03.0101.11.096.05.4Epoxiconazole20105.54.496.41.5105.95.5103.42.6100.02.997.91.7106.19.05096.33.199.94.8106.81.3102.36.9103.41.798.71.098.65.210099.86.593.11.795.25.7108.44.399.73.197.40.5100.22.1Fenbuconazole2096.55.086.13.2106.99.896.57.697.88.9100.49.3100.69.65095.21.3106.24.0106.13.8101.94.295.33.496.83.690.99.510088.81.896.69.792.77.0113.83.597.14.0102.97.196.02.5Difenoconazole2089.71.8113.69.395.71.7102.62.1101.82.696.01.1100.55.350101.03.3108.44.1119.02.4102.00.7100.72.094.82.094.57.410096.71.493.34.1107.94.5104.60.9104.02.496.40.697.86.5

3結(jié)論

由于農(nóng)藥結(jié)構(gòu)和性質(zhì)的多樣性以及樣品種類的多樣性，最佳樣品前處理方法需能適用于更多基質(zhì)及更多農(nóng)藥，操作簡單、經(jīng)濟(jì)環(huán)保并有較高的回收率。提取水果中三唑類農(nóng)藥殘留時，原創(chuàng)QuEChERS方法與2種緩沖鹽體系QuEChERS前處理方法相比，具有操作簡單、成本較低、回收率較好、基質(zhì)效應(yīng)較低等特點，結(jié)合在線GPC/GC-MS分析方法，可彌補(bǔ)原創(chuàng)QuEChERs方法去除干擾不徹底的缺陷，同時縮短了分析時間，降低了有機(jī)溶劑用量及對操作者和環(huán)境的危害，并提高了檢測的靈敏度和選擇性。該方法簡便快速、靈敏準(zhǔn)確、經(jīng)濟(jì)環(huán)保，適用于水果中三唑類農(nóng)藥殘留的檢測。

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研究報告

Evaluation of QuEChERS Method for the Analysis of 15 Triazole Pesticides Residues in Fruits by Online Gel Permeation Chromatography Gas Chromatography-Mass SpectrometryLI Hai-fei，NIE Ji-yun*，XU Guo-feng，LI Jing，YAN Zhen，LI Zhi-xia，WU Yong-long，KUANG Li-xue

(Quality Inspection and Test Center for Fruit and Nursery Stocks，Ministry of Agriculture;Laboratory of Quality

and Safety Risk Assessment for Fruit(Xingcheng)，Ministry of Agriculture;Institute of Pomology

of Chinese Academy of Agricultural Sciences，Xingcheng125100，China)

Abstract：A comparison was made among three versions of QuEChERS sample preparation methods for the extraction of 15 triazole pesticides in fruits.The three QuEChERS methods were the original method without buffer,the AOAC Official Method 2007.01 with acetate buffer,and the CEN 15662 Method with citrate buffer.The clean-up effects of primary secondary amine(PSA) sorbent and C18sorbent on 15 triazole pesticides were studied.The addition method after extraction was used to evaluate the matrix effects of triazole pesticide in matrix of apple,pear,peach,grape,cherry,banana and orange during gel permeation chromatography coupled to gas chromatography-mass spectrometry(GPC/GC-MS) analysis.As a result,the QuEChERS method without buffer gave good recoveries for 15 triazole pesticides.The cleaning up effect of PSA plus C18is superior to that of C18or PSA sorbent.The matrix effects were intensive in the 7 kinds of fruits.In this article,15 triazole pesticides were extracted by the QuEChERS method without buffer,and analysed by using matrix-matched standard calibration as the external standard method with gas chromatography-mass spectrometry in selective ion monitoring(SIM) mode.Moreover,a large volume of sample was allowed to be injected using the program of GPC programmed temperature vaporizer of gas chromatography to improve the sensitivity of measurements.The recoveries of 15 residues in 7 matrixes at three spiked levels of 20,50,100 μg/kg ranged from 85.7% to 120.1% with relative standard deviations of 0.2%-11.5%.The calibration curves were linear(r>0.998) in the range of 10-400 μg/L for all the pesticides.The limits of detection(LOD) for the pesticides in fruits ranged from 0.9 μg/kg to 9.5 μg/kg.Based on these results,the analytical method was proved to be highly efficient,robust and sensitive,and was suitable for monitoring 15 triazole pesticides residues in fruits.

Key words：QuEChERS;online gel permeation chromatography/gas chromatography-mass spectrometry(GPC/GC-MS);triazole pesticides;matrix effects;fruits

中圖分類號：O657.63；F767.2

文獻(xiàn)標(biāo)識碼：A

文章編號：1004-4957(2015)12-1331-08

doi：10.3969/j.issn.1004-4957.2015.12.001

通訊作者：*聶繼云，博士，研究員，研究方向：果品質(zhì)量安全，Tel：0429-3598178，E-mail：jiyunnie@163.com

基金項目：國家農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全風(fēng)險評估計劃(GJFP2014002，GJFP2015002)；中央級科研院所基本科研業(yè)務(wù)費專項(0032014013)；中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院科技創(chuàng)新工程(CAAS-ASTIP)

收稿日期：2015-05-26；修回日期：2015-06-25