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    結核分枝桿菌對吡嗪酰胺耐藥的檢測方法研究與進展

    2016-01-23 22:01:18胡嚴杰黃海榮
    中國防癆雜志 2016年9期
    關鍵詞:基因突變敏感度結核

    胡嚴杰 黃海榮

    ?

    ·綜述·

    結核分枝桿菌對吡嗪酰胺耐藥的檢測方法研究與進展

    胡嚴杰 黃海榮

    吡嗪酰胺(pyrazinamide, PZA)是重要的一線抗結核藥物之一,對細胞內的結核分枝桿菌具有獨特的殺菌作用,因此成為結核病短程化療的基石。同時,鑒于目前治療耐多藥結核病新藥的缺乏,WHO建議全程使用PZA治療耐多藥結核病。結核分枝桿菌對PZA耐藥的相關基因pncA及其啟動子區(qū)的突變位置分散且類型繁多,使一般的分子學診斷方法不易進行操作與檢測。作者對現(xiàn)有的PZA耐藥性檢測方法的原理及新檢測方法的研究進行綜述與展望。

    吡嗪酰胺; 分枝桿菌, 結核; 微生物敏感性試驗; 表型; 基因型; 實驗室技術和方法; 綜述

    2015年全球新增結核病患者約960萬例,其中3.3%的初治患者和20%的復治患者為耐多藥結核病患者[1]。吡嗪酰胺(pyrazinamide, PZA)可殺死處于半休眠期的結核分枝桿菌,從而將治療周期從9~12個月縮短至6個月,因而成為結核病短程化療的基石[2-3]。近年來有研究表明,使用PZA治療的原發(fā)耐多藥結核病患者的預后優(yōu)于未使用的患者[4],因此,世界衛(wèi)生組織(WHO)建議使用PZA應貫穿耐多藥結核病患者的整個療程。然而,由于對PZA的藥物敏感性試驗(簡稱“藥敏試驗”)需要特殊的酸性環(huán)境,使得其不易操作且結果可重復性差,因此對PZA的藥物敏感性檢測并未常規(guī)納入日常的藥敏試驗[5]。由于臨床對PZA藥敏試驗的需求,可靠的方法一直處于尋求、探索過程中,筆者將分別對PZA耐藥的表型檢測方法和分子檢測方法的檢測原理、特點進行綜述。

    表型藥敏試驗方法

    PZA是一種煙酰胺類似物,被轉運到巨噬細胞內后在吡嗪酰胺酶(pyrazinamidase, PZase)的作用下生成吡嗪酸(pyrazinoic acid, POA)進而發(fā)揮抗結核作用[1]。POA在中性條件下以POA-的形式存在,一部分POA-通過外排作用轉運到細胞外,在酸性環(huán)境下,POA-被還原成不帶電荷的POA分子。由于POA的動態(tài)平衡,不帶電荷的分子再次被轉運到結核分枝桿菌胞內,進入時帶入一個質子,經過大量累積后結核分枝桿菌的細胞質酸化,從而導致細菌死亡[6-8]。表型藥敏試驗方法是將結核分枝桿菌與藥物共同孵育一段時間后,通過直接或間接觀察細菌的存活狀態(tài),判斷細菌是否耐受PZA。

    一、根據菌量檢測的方法

    1.BACTEC MGIT 960液體培養(yǎng)基法:是WHO推薦的一種液體培養(yǎng)檢測MTB對PZA是否敏感的方法,是目前應用最為廣泛的PZA耐藥性檢測方法[9]。其原理是應用BACTEC MGIT 960分枝桿菌培養(yǎng)系統(tǒng)比較一定周期內含藥培養(yǎng)管和對照管是否因耗氧量不同而激發(fā)產生不同強度的熒光,從而推測含藥培養(yǎng)管中的菌量占對照培養(yǎng)管菌量的比例,并由此判斷細菌是否耐受PZA。此方法中PZA的終濃度為100 μg/ml,液體培養(yǎng)基的pH值設定為6.0[10],21 d后可得到檢測結果,是目前認可度較高的PZA藥敏試驗方法。歐洲的一項研究以BACTEC 460為參照標準,應用MGIT 960系統(tǒng)進行的PZA藥敏試驗結果與其一致率達到98.3%[10]。

    2.VersaTREK-ESP System Ⅱ的PZA藥敏試驗法:其原理是將VersaTREK全自動微生物探測系統(tǒng)(VTI)及ESP?培養(yǎng)系統(tǒng)Ⅱ(ESP)配合使用,通過連續(xù)監(jiān)測(24 min/次,若無陽性信號出現(xiàn),最多檢測12 d)培養(yǎng)瓶頂空中氧氣的消耗率檢測分枝桿菌的生長,并通過陽性信號報告生長響應。在生長對照瓶檢測報陽后3 d內含藥生長瓶也報陽則為耐藥,反之則為敏感。此方法同樣需要酸性環(huán)境,PZA終濃度為300 μg/ml,但僅需14 d即可得到結果。該方法檢測結果文獻報道顯示,以BACTEC 460為金標準,該方法的敏感度為88.0%,特異度為92.3%[11]。Espasa等[11]的一項以BACTEC MGIT 960為對照的研究中,顯示其敏感度和特異度分別為97.0%和100.0%。

    以上兩種方法均需要昂貴的設備和試劑,影響了其在臨床上的全面推廣,而且越來越多的報道認為此類藥敏試驗的可重復性不夠理想,原因可能有以下幾種因素:(1)酸性環(huán)境不利于結核分枝桿菌的生長[12];(2)接種量依靠比濁法稀釋細菌確定,肉眼觀察誤差較大,易出現(xiàn)假陽性[13];(3)PZA對不同生長狀態(tài)的結核分枝桿菌的殺傷力不相同[14]。

    二、PZase活性檢測法

    1.韋恩法(Wayne法):在PZase催化下PZA轉化為具有還原性的POA,而轉運到細菌膜外的POA分子可與硫酸亞鐵氨發(fā)生反應生成紅色的硫酸亞鐵。將結核分枝桿菌接種到含有PZA的固體培養(yǎng)基上,4 d后向培養(yǎng)基上滴加硫酸亞鐵銨,通過觀察培養(yǎng)基顏色變化可以推測是否有POA生成,從而判斷PZase是否具有活性。PZase有活性表明細菌對PZA敏感,否則判定為耐藥。Cui等[10]的一項研究表明,以MGIT 960系統(tǒng)進行的PZA藥敏試驗作為對照,Wayne法的敏感度為88.2%,特異度為98.5%。該方法操作簡單,特異度較高且檢測周期短,但其敏感度較低,操作需要菌量較大,可重復性較差,因此沒有得到廣泛認可[15-16]。

    2.底物類似物顯色法:煙酰胺是PZA類似物,其也能在PZase的作用下轉化成活性狀態(tài),且該轉化無需酸性環(huán)境,因此有學者嘗試用煙酰胺替代PZA作為底物檢測結核分枝桿菌的PZase活性[17]。本方法的基本原理與Wayne法相似,但結果判定采用結核分枝桿菌液體藥敏試驗常用的比色法。常見的比色法包括:刃天青微量滴定分析法(resazurinmicrotiter assay, REMA)、硝酸鹽還原法(nitrate reductase assay, NRA)和噻唑藍比色法(MTT法)。Cui等[10]的一項研究結果顯示,以MGIT 960法為標準,MTT法的敏感度為97.0%,特異度為99.6%。而泰國的一項研究結果顯示,以MGIT 960法作為對照,MTT的敏感度僅為88.0%,特異度為78.0%[18]。比色法操作簡便,不需要特殊儀器,結果易于判定,成本低,且能在10~14 d得到藥敏試驗結果。該方法利用煙酰胺替代PZA,解決了檢測pH值和結核分枝桿菌生長所需pH值矛盾的問題;但該方法缺乏標準化,因此尚無法推廣[10,17]。

    耐藥基因突變檢測技術

    PZase是由MTB的pncA基因編碼的蛋白,研究表明pncA基因及其啟動子區(qū)序列的突變是造成PZase活性降低或缺失的主要原因[19],也是對PZA產生耐藥的主要原因。

    pncA基因全長561 bp,基因及其啟動子序列的突變形式包括點突變、插入和缺失,可能發(fā)生突變的堿基幾乎覆蓋了整個基因,因此不便于應用常用的基于探針雜交的分子檢測技術,諸如分子信標法、TaqMan探針法等。同時,有報道認為pncA基因突變不一定造成PZA耐藥,如Ramirez-Busby等[20]的Meta分析發(fā)現(xiàn)83%的pncA基因突變會造成對PZA耐藥,而17%的pncA基因突變不會造成耐藥。這一因素大大削弱了通過檢測pncA基因及其啟動子區(qū)的序列差異來診斷結核分枝桿菌對PZA耐藥的價值。不過,鑒于作為對照方法的結核分枝桿菌PZA耐藥表型藥敏試驗方法存在不可靠的問題,分子檢測技術的真實價值仍有待更多的評估,而鑒于其耗時短的優(yōu)勢,因此這一領域仍然激發(fā)了很多研究興趣。

    1. DNA序列測定技術:DNA測序技術是一種分析特定DNA序列堿基排列的技術,可以對DNA的突變進行定位和鑒定研究。2011年的一篇綜述分析顯示,以MGIT 960法作為對照,DNA測序技術診斷結核分枝桿菌對PZA耐藥的敏感度和特異度分別為90.0%和 94.0%;以BACTEC 460法為標準時,DNA測序技術的敏感度和特異度分別為87.0%和95.0%;以MGIT 960法作為對照時,DNA測序技術的敏感度和特異度分別為85.0%和88.0%[21]。DNA測序技術是突變檢測的“金標準”,隨著該技術自動化程度的提高及成本的降低,DNA測序技術將成為未來基因檢測的常規(guī)手段。

    2. Surveyor酶酶切法:Surveyor酶是植物中提取的核酸內切酶,它與普通內切酶不同之處在于其可特異性切割DNA錯配部位,這種切割對核苷酸序列無特殊要求,不需要知曉pncA突變的具體位置和類型[22]。該方法先將野生型pncA基因的PCR產物和待測樣品的pncA基因的PCR產物混合,在變性和復性過程中,形成同源或異源雙鏈,在Surveyor 酶作用后電泳,如果待測樣品沒有突變、插入和缺失位點,則Surveyor酶不能發(fā)揮作用,電泳圖譜上僅有單個條帶;如果待測樣品含有突變、插入和缺失位點,則形成一條異源雙鏈和一條同源雙鏈,此時Surveyor酶發(fā)揮作用,將異源雙鏈切斷,此時電泳圖譜上有3條或者更多條帶[22]。有一項研究采用該方法分析了10株臨床分離株對PZA的耐藥性,僅有1株與PZase活性檢測結果不一致[23]。采用Surveyor酶酶切法操作簡單,無需特殊儀器,具有推廣價值。該技術已經應用在其他疾病的基因突變檢測,但在結核病檢測方面應用較少。

    3. 高分辨率熔解曲線(high resolution melt,HRM):HRM是新近發(fā)展起來的建立在實時熒光定量PCR基礎上的突變檢測技術。HRM將野生型樣品和待測樣品加到同一樣本管中進行PCR后雜交形成同源或異源雙鏈,利用飽和熒光染料能與雙鏈DNA進行特異性結合,利用同源雙鏈和異源雙鏈的熔解溫度不同、熒光染料脫落的溫度也不相同來區(qū)分野生型和突變型。該方法通過設計交叉引物覆蓋pncA及其啟動子序列,通過多管檢測即可分析出pncA及其啟動子序列的基因型,不需要知道突變的堿基位點和突變類型。有研究者用HRM技術分析了127株臨床分離株,并與BACTEC MGIT 960藥敏試驗結果對比,其敏感度為85.5%,特異度為98.5%[24]。HRM法是閉管檢測,從而避免了污染造成的假陽性。目前,HRM技術已經在結核病耐藥分子診斷領域得到應用,未來此項技術也有希望用于結核分枝桿菌對PZA耐藥的分子檢測。

    4. 微陣列技術:微陣列片技術采用原位合成或微量點樣等方法,將已知序列的DNA片段固定在支持物表面,然后采用含有特異性標記的樣品分子進行雜交,通過檢測特異性信號強度來獲取樣品的序列信息。有研究者設計了79種特異性探針序列檢測結核分枝桿菌對PZA耐藥的pncA基因,其結果與測序一致[25]。這說明該方法具有很高的敏感度和特異度,可快速識別設定的突變位點,但微陣列技術需要大量探針,且雜交過程操作復雜,因此易于發(fā)生污染。未來自動化技術的發(fā)展可能有助于解決這些問題,但是此技術需要昂貴的儀器設備,極大地限制了該技術的臨床應用。

    問題和展望

    雖然臨床目前對PZA進行藥敏試驗的檢測技術很多,但現(xiàn)有技術都存在不同程度的缺陷。對PZA進行表型藥敏試驗的難點在于液體培養(yǎng)技術需要pH=5.5~6.0的條件,而結核分枝桿菌的生長需要中性環(huán)境,從而可能導致假陽性結果的出現(xiàn);比色法和產物顯色法均不能區(qū)分PZase的活性高低,容易導致假陰性結果出現(xiàn);基因突變檢測技術需要首先建立結核分枝桿菌對PZA耐藥與基因突變間良好的一致性關系。目前,PZA的殺菌機制還未完全闡明,相信隨著對其殺菌機制和耐藥機制研究的不斷深入,同時隨著分子生物學技術的不斷發(fā)展,未來一定能夠建立可靠而實用的PZA藥敏試驗的檢測方法。

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    (本文編輯:王然 李敬文)

    Progress of pyrazinamide-resistanceMycobacteriumtuberculosisdetection

    HUYan-jie,HUANGHai-rong.

    NationalTuberculosisClinicalLaboratory,BeijingTuberculosisandThoracicTumorResearchInstitute,Beijing101149,China

    HUANGhai-rong,Email:huanghairong@tb123.org

    Pyrazinamide (PZA) is one of the most potent anti-tuberculosis (TB) drugs which has unique bactericidal activity within cells, therefore, it is the core of short-course chemotherapy for TB. Recently, WHO suggested using PZA through out the treatment course of multiple drug-resistant TB because of lack of new drugs. As location of the mutation in the promoter is scattered and the types are various,pncAgene, which is related with PZA-resistant, is difficult to be detected using the general molecular test. In this article, the advancement of PZA-resistance TB detection will be reviewed.

    Pyrazinamide;Mycobacteriumtuberculosis; Microbial sensitivity tests; Phenotype; Genotyp; Laboratory techniques and procedures; Review

    10.3969/j.issn.1000-6621.2016.09.014

    101149 北京市結核病胸部腫瘤研究所 國家結核病臨床實驗室

    黃海榮,Email:huanghairong@tb123.org

    2016-07-05)

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