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    鞘內(nèi)注射右美托咪定對(duì)骨癌痛大鼠脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞活化及Toll樣受體的影響

    2015-12-30 07:34:50孟根其其格,羅建軍,張毅
    中國(guó)老年學(xué)雜志 2015年7期
    關(guān)鍵詞:鎮(zhèn)痛右美托咪定

    鞘內(nèi)注射右美托咪定對(duì)骨癌痛大鼠脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞活化及Toll樣受體的影響

    孟根其其格羅建軍張毅1

    (北京市東城區(qū)第一人民醫(yī)院麻醉科,北京100075)

    摘要〔〕目的探討鞘內(nèi)注射右美托咪定(DEX)對(duì)骨癌痛大鼠脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞活化的影響。方法通過(guò)向健康雄性SD大鼠(200~250 g)脛骨骨髓腔內(nèi)注射Walker256乳腺癌細(xì)胞液制備骨癌痛(BCP)模型后進(jìn)行鞘內(nèi)置管,將45只成功誘導(dǎo)BCP大鼠模型隨機(jī)分組(n=15):高劑量DEX(DEX-H)組、低劑量DEX(DEX-L)組及生理鹽水(NS)組,DEX-H與DEX-L組分別于鞘內(nèi)注入6 μg·kg-1·d-1或3 μg·kg-1·d-1(注射體積均為10 μl),同時(shí)選取15只同周齡大鼠作對(duì)照(C),其余兩組鞘內(nèi)注入等體積生理鹽水。于鞘內(nèi)注射前后對(duì)4組進(jìn)行行為學(xué)檢測(cè)來(lái)分析DEX對(duì)BCP大鼠機(jī)械縮足閾值(MWT)和縮足熱潛伏期(WTL)的影響,采用熒光免疫組化法檢測(cè)各組鞘內(nèi)注射7 d后的脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞特異表達(dá)補(bǔ)體C3受體(OX-42)的熒光積分光密度(IOD),酶聯(lián)免疫吸附法檢測(cè)脊髓腫瘤壞死因子(TNF)-α和白介素(IL)-1β水平,免疫印跡檢測(cè)脊髓Toll樣受體(TLR)4及TLR2蛋白水平。結(jié)果與C組相比,NS組鞘內(nèi)注射0~7d的NMT和WTL降低,脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞OX-42的IOD、脊髓TNF-α和IL-1β水平及Toll樣受體表達(dá)均升高(P<0.05);給予DEX鞘內(nèi)注射可改善BCP大鼠的以上異常指標(biāo)(P<0.05),但與C組均有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05);且DEX-H組的以上指標(biāo)均優(yōu)于DEX-L組(P<0.05)。結(jié)論鞘內(nèi)注射DEX對(duì)BCP大鼠有較好的鎮(zhèn)痛作用并抑制了脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞活化,可能與其緩解炎癥反應(yīng)及降低Toll樣受體表達(dá)有關(guān)。

    關(guān)鍵詞〔〕右美托咪定;骨癌痛;鎮(zhèn)痛;脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞活化

    中圖分類號(hào)〔〕R73〔文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼〕A〔

    1新疆醫(yī)科大學(xué)附屬中醫(yī)醫(yī)院手術(shù)麻醉科

    第一作者:孟根其其格(1979-),女,主治醫(yī)師,主要從事老年麻醉、骨科麻醉研究。

    骨轉(zhuǎn)移癌會(huì)引起中重度骨痛,嚴(yán)重影響生活質(zhì)量,同時(shí)也會(huì)導(dǎo)致患者體能狀態(tài)下降及焦慮或抑郁發(fā)生〔1〕。目前,疼痛治療的重點(diǎn)已轉(zhuǎn)移至神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞,且已證實(shí)神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞參與病理性疼痛的發(fā)生發(fā)展〔2〕。疼痛時(shí),處于靜息狀態(tài)的小膠質(zhì)細(xì)胞被活化,因此抑制神經(jīng)小膠質(zhì)細(xì)胞活化成為疼痛治療的有效措施〔3〕。右美托咪啶(DEX)為一種α2腎上腺素能受體激動(dòng)劑,具有高選擇性、高效的優(yōu)點(diǎn),可起到鎮(zhèn)靜催眠、鎮(zhèn)痛及抑制交感神經(jīng)活動(dòng)的作用,且不良反應(yīng)低,在臨床應(yīng)用較廣〔4,5〕。筆者推測(cè)DEX對(duì)骨癌痛亦有較好的鎮(zhèn)痛作用。鑒于鞘內(nèi)注射是臨床治療疼痛的常用手段,故本研究給予骨癌痛大鼠模型鞘內(nèi)注射DEX,觀察對(duì)小膠質(zhì)細(xì)胞活化的影響。

    1材料與方法

    1.1試劑與主要儀器DEX由于江蘇新晨制藥有限公司提供;Walker256乳腺癌細(xì)胞購(gòu)自上海生物醫(yī)學(xué)工程研究院;二喹啉甲酸(BCA)蛋白分析試劑盒購(gòu)自碧云天生物科技公司;Triton X-100、苯甲基黃酰氟及Tris-HCl及購(gòu)自美國(guó)Sigma公司;白介素(IL)-1β和腫瘤壞死因子(TNF)α檢測(cè)試劑盒購(gòu)自南京建成生物工程研究所;羊抗特異表達(dá)補(bǔ)體C3受體(OX-42)抗體購(gòu)自美國(guó)Abcam公司,兔抗Toll樣受體(TLR)4及TLR2抗體均購(gòu)自美國(guó)Santa Cruz公司;紅色標(biāo)記的二抗購(gòu)自上海亨代勞生物有限公司。儀器:Multiskan Ascent酶標(biāo)儀購(gòu)自Thermo公司;5424R小型臺(tái)式冷凍離心機(jī)、移液槍均購(gòu)自德國(guó)Eppendorf公司;全自動(dòng)熱輻射刺激儀購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院生物醫(yī)學(xué)工程研究所;Mini Protean 3 Cell小型垂直電泳槽購(gòu)自美國(guó)Bio-Rad公司。

    1.2動(dòng)物與分組通過(guò)向健康雄性SD大鼠(200~250 g)脛骨骨髓腔內(nèi)注射Walker256乳腺癌細(xì)胞液制備骨癌痛(BCP)模型后進(jìn)行鞘內(nèi)置管,將45只成功誘導(dǎo)BCP大鼠模型隨機(jī)分組(n=15):高劑量DEX(DEX-H)組、低劑量DEX(DEX-L)組及生理鹽水(NS)組,DEX-H與DEX-L組分別于鞘內(nèi)注入6、3 μg·kg-1·d-1(注射體積均為10 μl),同時(shí)選取15只同周齡大鼠作對(duì)照(C),其余兩組鞘內(nèi)注入等體積生理鹽水。

    1.3BCP模型制備及鞘內(nèi)置管根據(jù)文獻(xiàn)〔6〕制備BCP模型:給予BCP大鼠腹腔注射戊巴比妥鈉(40 mg/kg),待大鼠充分麻醉后,取仰臥位后對(duì)左后肢進(jìn)行消毒備皮,采用手術(shù)刀切開(kāi)皮膚,分離肌肉筋膜充分暴露脛骨,于脛骨結(jié)節(jié)下外0.5~1 cm的脛骨平臺(tái)位置,采用微量注射器抽取Walker256乳腺癌細(xì)胞液,向骨髓腔注射10 μl細(xì)胞液,用骨蠟封住針孔并縫合。待BCP制備后5 d根據(jù)Sluka等〔7〕的方法進(jìn)行鞘內(nèi)置管:切開(kāi)枕部皮膚后,22G無(wú)菌注射器枕頭刺破寰枕膜,待腦脊液流出后置入PE-10導(dǎo)管,固定好導(dǎo)管后縫合皮膚。術(shù)后肌注青霉素預(yù)防感染。

    1.4行為學(xué)評(píng)價(jià)分別于鞘內(nèi)注射前、鞘內(nèi)注射不同時(shí)間點(diǎn)(1、3、5、7 d)后進(jìn)行行為學(xué)檢測(cè),分析DEX鞘內(nèi)注射對(duì)機(jī)械縮足閾值(MWT)和縮足熱潛伏期(WTL)的影響,來(lái)評(píng)價(jià)其鎮(zhèn)痛效果。MWT:采用不同折力(1.0、1.4、2.0、4.0、6.0、8.0、10.0、15.0 g)Von Frey纖維刺激足底中部,每次刺激6~8 s,每次刺激間隔1 min,當(dāng)大鼠出現(xiàn)快速縮足或舔足,則定義為陽(yáng)性反應(yīng),重復(fù)5次,3次以上陽(yáng)性反應(yīng)的最小刺激力度計(jì)為MWT。WTL:采用全自動(dòng)熱輻射刺激儀照射足底,每次照射不超過(guò)25s,每次重復(fù)3次,間隔5 min,3次出現(xiàn)抬腿反應(yīng)的時(shí)間平均值計(jì)為WTL。MWT和WTL的數(shù)值越小,就表明痛覺(jué)越敏感。

    1.5熒光免疫組化采用脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞特異性標(biāo)記物OX-42的熒光積分光密度(IOD)值來(lái)評(píng)價(jià)其活化情況。過(guò)量麻醉致死后,迅速取出大鼠的L4~6脊髓段,經(jīng)多聚甲醛固定、蔗糖脫水后,制備厚20 μm的冠狀冰凍切片,每隔5張保留1張片子,每隔脊髓樣本選取5張用于免疫組化,經(jīng)H2O2室溫孵育及山羊血清封閉后,滴加OX-42的一抗(1∶100),4℃孵育過(guò)夜后,滴加紅色標(biāo)記的二抗,將片子置于熒光顯微鏡下觀察,采用Image Pro Plus 6.0圖像分析軟件測(cè)定熒光積分光密度(IOD)。

    1.6酶聯(lián)免疫吸附法將新鮮脊髓標(biāo)本取出后,于冰上進(jìn)行裂解,以5 000 r/min離心5 min后保留上清,采用對(duì)應(yīng)試劑盒檢測(cè)脊髓提取液中的TNF-α、IL-1β含量,以上操作均嚴(yán)格遵守試劑盒說(shuō)明書(shū)。

    1.7免疫印跡BCA法檢測(cè)脊髓提取液中的蛋白濃度,每個(gè)樣本取等量蛋白,與上樣緩沖液混勻、煮沸,上樣后行10% SDS-PAGE凝膠電泳,半干轉(zhuǎn)法將電泳條帶轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜,脫脂奶粉封閉后,根據(jù)膜面積加入TLR-2(1∶100)、TLR-4(1∶200)一抗,4℃孵育過(guò)夜,次日加入二抗(1∶5 000)室溫孵育1 h,以GAPDH為內(nèi)參(1∶3 000),ECL化學(xué)發(fā)光法顯影,采用Image Pro Plus 6.0軟件分析各條帶光密度,結(jié)果表示為目的條帶與內(nèi)參的光密度比值。

    1.8統(tǒng)計(jì)學(xué)分析采用SPSS16.0軟件,組間比較采用t檢驗(yàn)及單因素分析。

    2結(jié)果

    2.1鞘內(nèi)注射DEX對(duì)MWT的影響與C組比較,NS組鞘內(nèi)注射0~7 d的NMT水平降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);給予DEX鞘內(nèi)注射可升高BCP大鼠模型的MWT(P<0.05),但與C組的差異仍有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);DEX-H組鞘內(nèi)注射1~7 d的NMT水平均高于DEX-L組(P<0.05)。見(jiàn)圖1A。

    2.2鞘內(nèi)注射DEX對(duì)WTL的影響與C組比較,NS組鞘內(nèi)注射0~7 d的WTL水平降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);給予DEX鞘內(nèi)注射可升高BCP大鼠模型的WTL(P<0.05),但與C組的差異仍有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);DEX-H組鞘內(nèi)注射1~7 d的WTL水平均高于DEX-L組(P<0.05)。見(jiàn)圖1B。

    2.3鞘內(nèi)注射DEX對(duì)脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞活化的影響NS組鞘內(nèi)注射7d的小膠質(zhì)細(xì)胞OX-42的IOD為662.8±53.7,高于C組的246.7±21.5,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);給予DEX鞘內(nèi)注射可降低BCP大鼠模型的小膠質(zhì)細(xì)胞OX-42的IOD水平,但與C組的差異仍有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);DEX-H組鞘內(nèi)注射7d的IOD水平為345.9±25.8,低于DEX-L組的492.3±44.2,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見(jiàn)圖2。

    2.4 鞘內(nèi)注射DEX對(duì)脊髓細(xì)胞炎癥因子水平的影響與C組比較,NS組鞘內(nèi)注射7 d后的脊髓TNF-α和IL-1β水平均升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);給予DEX鞘內(nèi)注射可降低BCP大鼠模型的脊髓TNF-α和IL-1β水平(P<0.05),但與C組的差異仍有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);DEX-H組鞘內(nèi)注射7 d后的脊髓TNF-α和IL-1β水平均低于DEX-L組(P<0.05)。見(jiàn)表1。

    A:MWT;B:WTL;與C組比較:1)P<0.05;與NS組比較:2)P<0.05;與DEX-L組比較:3)P<0.05 圖1 鞘內(nèi)注射DEX對(duì)MWT和WTL的影響

    圖2 鞘內(nèi)注射DEX對(duì)脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞OX-42的IOD影響(×400)

    2.5鞘內(nèi)注射DEX對(duì)脊髓Toll樣受體表達(dá)的影響與C組比較,NS組鞘內(nèi)注射7d后的脊髓TLR-2和TLR-4蛋白水平升高(P<0.05);給予DEX鞘內(nèi)注射可降低BCP大鼠模型的脊髓TLR-2和TLR-4水平(P<0.05),但與C組的差異仍有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);DEX-H組鞘內(nèi)注射7 d后的脊髓TLR-2和TLR-4水平均低于DEX-L組(P<0.05)。見(jiàn)圖3,表2。

    表1 鞘內(nèi)注射DEX對(duì)脊髓細(xì)胞炎癥因子水平的

    與C組比較:1)P<0.05;與NS組比較:2)P<0.05;與DEX-L組比較:3)P<0.05;下表同

    圖3 鞘內(nèi)注射DEX對(duì)脊髓Toll樣受體表達(dá)的影響

    組別TLR2TLR4C組0.18±0.050.22±0.03NS組0.57±0.031)0.74±0.051)DEX-L組0.39±0.061)2)0.45±0.041)2)DEX-H組0.25±0.021)2)3)0.36±0.041)2)3)

    3討論

    骨癌痛是一種中重度病理性疼痛,嚴(yán)重影響患者生活質(zhì)量。為研究鞘內(nèi)注射DEX對(duì)骨癌痛有無(wú)改善作用,本研究采用公認(rèn)的動(dòng)物模型,即通過(guò)采用Walker256乳腺癌細(xì)胞向脛骨上段骨髓腔內(nèi)注射來(lái)制備BCP模型。大鼠在骨髓腔內(nèi)接種乳腺癌細(xì)胞后會(huì)引起骨破壞,主要表現(xiàn)為骨皮質(zhì)和骨小梁損傷,尤其在接種12 d后會(huì)脛骨骨髓腔會(huì)出現(xiàn)大規(guī)模腫瘤細(xì)胞浸潤(rùn)〔8〕。本研究根據(jù)相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)告于BCP模型制備10 d后進(jìn)行鞘內(nèi)注射治療,同時(shí)為研究DEX對(duì)癌痛的治療效果,本研究采用兩個(gè)劑量研究鞘內(nèi)注射DEX對(duì)骨癌痛大鼠脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞活化的影響。

    本研究發(fā)現(xiàn):BCP模型建立后,大鼠的疼痛閾值降低,主要表現(xiàn)為MWT和WTL水平均升高,提示BCP模型建議成功,且在為期7 d的治療中,NS組的MWT和WTL水平均維持在一個(gè)穩(wěn)定水平,提示該種模型的疼痛狀態(tài)較為穩(wěn)定,不會(huì)通過(guò)機(jī)體的代償而緩解或恢復(fù),可更好地研究DEX的鎮(zhèn)痛效果。給予DEX鞘內(nèi)注射后發(fā)現(xiàn),治療1 d后MWT和WTL水平即升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,以上表明DEX對(duì)BCP疼痛有改善效果,且改善效果可持續(xù)7 d。

    目前,小膠質(zhì)細(xì)胞已成為疼痛干預(yù)的重點(diǎn),約占神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞的5%~10%,在正常情況下為靜息狀態(tài),但外界刺激可引起小膠質(zhì)細(xì)胞激活,如參與術(shù)后持續(xù)性疼痛形成及神經(jīng)病理性疼痛有關(guān)〔9,10〕。小膠質(zhì)細(xì)胞,由脊髓單核細(xì)胞分化而來(lái),當(dāng)其活化時(shí),其主要表面抗原物質(zhì)OX-42會(huì)大量表達(dá)〔11〕,故本研究采用熒光免疫組化法檢測(cè)OX-42的IOD評(píng)價(jià)小膠質(zhì)細(xì)胞的激活情況。本研究發(fā)現(xiàn):NS組的IOD值高于C組,提示BCP大鼠的小膠質(zhì)細(xì)胞處于活化狀態(tài),與癌細(xì)胞浸潤(rùn)引起的疼痛有關(guān),而DEX鞘內(nèi)注射后IOD降低,提示DEX可抑制小膠質(zhì)細(xì)胞活化,為其鎮(zhèn)痛的主要原因。疼痛可引起炎癥反應(yīng),尤其當(dāng)小膠質(zhì)細(xì)胞處于活化狀態(tài)時(shí)〔12〕,本研究中BCP大鼠的脊髓常見(jiàn)炎癥因子TNF-α和IL-1β水平升高,而給予DEX鞘內(nèi)注射后,以上炎癥因子水平降低,表明DEX可緩解炎癥反應(yīng)。Toll樣受體介導(dǎo)了炎癥反應(yīng)〔13〕,而本研究發(fā)現(xiàn)BCP大鼠的TLR-2和TLR-4水平均升高,更加證實(shí)了癌痛大鼠出現(xiàn)了炎癥反應(yīng),而給予DEX后兩者水平下調(diào),與其改善炎癥反應(yīng)的結(jié)論一致。

    參考文獻(xiàn)4

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    〔2014-07-20修回〕

    (編輯滕欣航)

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