,
(中南大學(xué)藥學(xué)院藥理學(xué)系,湖南 長沙 410078)
·專家論壇·
細(xì)菌sRNA與抗菌藥物的藥理作用及耐藥性
張旺,李元建*
(中南大學(xué)藥學(xué)院藥理學(xué)系,湖南 長沙 410078)
sRNA; 抗菌作用; 耐藥性
非編碼微小RNA即microRNA在細(xì)胞生長、增殖、分化、凋亡等生命過程中起重要的調(diào)控作用,幾乎參與所有疾病的病理生理過程,為近年研究的熱點課題。原核細(xì)胞也存在非編碼RNA,稱為小RNA(small non-coding RNA,sRNA)。sRNA作為一種應(yīng)答元件,通過與靶mRNA堿基互補(bǔ)配對抑制靶基因mRNA翻譯或(和)降解mRNA,在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控細(xì)菌多種功能,影響細(xì)菌生長與繁殖[1,2]。雖然sRNA的發(fā)現(xiàn)(1967年)早于microRNA(1993年),但其功能研究卻晚于后者。新近研究發(fā)現(xiàn),細(xì)菌sRNA與抗菌藥物的作用和耐藥性密切相關(guān)。
sRNA是一類廣泛存在于原核生物,長度為50~300 nt的核苷酸。自1967年從大腸桿菌(Escherichia coli,E.coli)中分離出第一個sRNA(6SRNA)以來[3],經(jīng)過半個世紀(jì)的研究,該細(xì)菌中已發(fā)現(xiàn)約100種sRNA[4],隨后的研究證明其他細(xì)菌如沙門氏菌(salmonella)、金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus,S.aureus)、銅綠假單胞菌(Pseudomonas aeruginosa,P.aeruginosa)、單核細(xì)胞增生李斯特菌(Listeria monocytogenes,L.monocytogenes)、幽門螺旋桿菌(Helicobacter pylori,H.pylori)等同樣存在sRNA[5-11]。
細(xì)菌sRNA的編碼區(qū)主要位于基因間區(qū)(intergenic region,IGR),某些位于編碼基因5′和3′非翻譯區(qū)(untranslated regions,UTR)[12]。根據(jù)sRNA的調(diào)節(jié)作用不同可將sRNA分為4類:調(diào)節(jié)蛋白活性sRNA,順式非編碼sRNA(cis-encoded sRNA),反式非編碼sRNA(trans-coded sRNA)和規(guī)律成簇的間隔短回文重復(fù)序列(clustered regularly interspaced short palindromic repeats,CRISPRs)[8,13,14]。目前研究較多的為順式非編碼sRNA和反式非編碼sRNA,其中順式非編碼sRNA由靶mRNA的反義鏈編碼,存在一段序列與靶mRNA完全互補(bǔ)配對(配對堿基通常大于75 nt),具有高特異性、高親和力的特點,而反式非編碼sRNA其編碼基因與靶mRNA相距較遠(yuǎn)[10,13,14]。原核生物中的sRNA作用方式類似于真核生物microRNA,通過不完全互補(bǔ)配對降解mRNA或(和)抑制mRNA的翻譯[10,13,14],從而參與調(diào)節(jié)細(xì)菌的生長、繁殖。然而,細(xì)菌sRNA的結(jié)構(gòu)、功能及作用機(jī)制與真核生物miRNA不完全相同(表1)。
表1真核生物miRNA與細(xì)菌sRNA的比較
真核生物microRNA細(xì)菌sRNA參考文獻(xiàn)長度19~25nt50~500nt來源多以莖環(huán)結(jié)構(gòu)存在于較長的RNA轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物中,經(jīng)胞液中Dicer核酸酶剪切轉(zhuǎn)錄始于一段能折疊成穩(wěn)定莖環(huán)結(jié)構(gòu)的序列,終止于不依賴Rho的轉(zhuǎn)錄終止子15~18結(jié)構(gòu)前體莖環(huán)剪切加工而來具有穩(wěn)定的莖環(huán)結(jié)構(gòu),不需要加工16,17,19分類順式非編碼RNA,反式非編碼RNA多為反式非編碼RNA,少數(shù)為順式非編碼RNA13,14作用機(jī)制形成核糖核蛋白體與靶mRNA配對,抑制mR-NA的翻譯,促進(jìn)降解Hfq協(xié)助下與靶mRNA配對,抑制mRNA的翻譯,促進(jìn)降解13~16,19,20生物學(xué)功能真核生物轉(zhuǎn)錄后基因調(diào)控,在細(xì)胞自身及細(xì)胞間發(fā)揮調(diào)節(jié)作用,幾乎參與所有病理生理過程原核生物轉(zhuǎn)錄后基因調(diào)控,調(diào)節(jié)細(xì)菌多種生理過程及應(yīng)激反應(yīng)14,21~24
研究發(fā)現(xiàn),細(xì)菌sRNA的主要生物學(xué)功能之一是感應(yīng)外界環(huán)境刺激,通過調(diào)控細(xì)胞代謝及應(yīng)激反應(yīng)以適應(yīng)環(huán)境變化。例如,鮑曼不動桿菌(Acinetobacterbaumannii,A.baumannii)對溫度和滲透壓刺激的反應(yīng)可能受AbsR25調(diào)節(jié)[25],而大腸桿菌對低溫(低于25℃)刺激的反應(yīng)則通過反式非編碼的sRNA DsrA所調(diào)節(jié)[26];在ryhB基因敲除的傷寒沙門菌(Salmonella Typhimurium,S.Typhimurium),H2O2誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激顯著增強(qiáng),并證明OxyR能直接與ryhB相互作用,從而調(diào)節(jié)ryhB的表達(dá)[27]。有趣的是,sRNA還能參與抗菌藥物的作用,并與細(xì)菌的耐藥性密切相關(guān),如阿奇霉素(2 μg/mL)能直接和間接抑制銅綠假單胞菌rsmY/Z的表達(dá),阻斷細(xì)菌的群體感應(yīng)及生物被膜的形成[28];鮑曼不動桿菌AbsR25能調(diào)節(jié)藥物外流蛋白編碼基因的表達(dá)[25]。
抗菌藥物可特異性地干擾細(xì)菌的生長代謝過程(包括阻斷DNA復(fù)制和RNA合成,抑制蛋白合成與代謝酶活性),破壞其結(jié)構(gòu)與功能,產(chǎn)生殺菌或抑菌效應(yīng)。基于sRNA對細(xì)菌生長與繁殖起重要的調(diào)控作用,人們推測sRNA可能是尋找抗菌藥物的新靶點。研究發(fā)現(xiàn),洋蔥伯克霍爾德桿菌(Burkholderia cenocepacia,B.cenocepacia)sRNA mtvR過表達(dá)能顯著降低阿米卡星和慶大霉素的最小抑菌濃度(分別降低了7倍和4倍)以及顯著提高β-內(nèi)酰胺類抗生素(頭孢他啶和亞胺培南)的敏感性(分別提高了3倍和4倍)[29]。大腸桿菌sRNA ryhB能促進(jìn)CirA表達(dá),后者與其配體大腸菌素Ia結(jié)合誘導(dǎo)靶細(xì)胞死亡;研究發(fā)現(xiàn),ryhB及cirA缺失突變菌株,大腸菌素Ia處理誘導(dǎo)細(xì)菌死亡的作用被取消[30]。在金黃色葡萄球菌,sRNA SprX過表達(dá)顯著提高金黃色葡萄球菌對糖肽類抗生素的敏感性,其機(jī)制是通過L3環(huán)調(diào)節(jié)第V階段產(chǎn)孢蛋白G(stage V sporulation protein G,SpoVG)而發(fā)揮作用[31]。阿奇霉素(2 μg/mL)能直接和間接抑制銅綠假單胞菌rsmY/Z的表達(dá),阻斷細(xì)菌的群體感應(yīng)及生物被膜的形成,可能是該藥的殺菌機(jī)制之一[29]。上述研究表明,某些抗菌藥物通過影響細(xì)菌sRNA的表達(dá)而調(diào)控相關(guān)基因的表達(dá),從而提高細(xì)菌對藥物的敏感性,發(fā)揮抗菌作用。sRNA介導(dǎo)抗菌藥物的作用加深了對某些藥物作用機(jī)制的認(rèn)識,并為尋找抗菌藥物提供新思路。例如,主要影響蛋白質(zhì)合成的阿奇霉素也能下調(diào)sRNA(RsmY/Z)的表達(dá)而損傷細(xì)胞膜的功能[29]。已知多種殺菌藥物(氨芐西林,卡那霉素,諾氟沙星及萬古霉素)殺菌機(jī)制涉及氧化應(yīng)激反應(yīng)[32],但其確切機(jī)制尚未明了。鼠傷寒沙門菌(Salmonella enterica sv.Typhimurium)sRNA ryhB-1和ryhB-2缺失可導(dǎo)致細(xì)菌內(nèi)活性氧(Reactive oxygen species,ROS)水平增加[27]。治療傷寒的氨芐西林等藥物誘導(dǎo)氧化應(yīng)激是否通過影響sRNA表達(dá)而發(fā)揮作用有待研究??咕幬镆罁?jù)作用機(jī)制不同分為干擾細(xì)菌細(xì)胞壁的合成,改變細(xì)胞膜通透性,抑制蛋白合成,影響核酸及葉酸代謝5大類,sRNA是否獨立于上述抗菌藥物的作用機(jī)制,以及與這些抗菌機(jī)制的關(guān)系值得研究。
許多抗菌藥物如抗生素為細(xì)菌的二級代謝產(chǎn)物,約2/3的天然抗生素從天藍(lán)色鏈霉菌(Streptomyces coelicolor,S.coelicolor)中獲得。另一方面,某些細(xì)菌的二級代謝產(chǎn)物能殺滅與其寄生于同一宿主的其他細(xì)菌,例如熒光假單胞菌(Pseudomonas fluorescens,P.fluorescens)能分泌氰化氫、AprA外切蛋白酶和2,4-二乙?;g苯三酚,這些二級代謝產(chǎn)物能殺滅寄生于同一植物根際的真菌。sRNA能調(diào)控二級代謝產(chǎn)物的表達(dá),可能是尋找抗菌藥物的新途徑。例如,在天藍(lán)色鏈霉菌過表達(dá)sRNA scr239和cnc2189.1可顯著減少二級代謝抗生素放線紫紅素的生成,而敲除菌株中生成則增加[33]。三羧酸循環(huán)的中間產(chǎn)物能有效調(diào)節(jié)熒光假單胞菌GacS-GacA二元信號系統(tǒng)依賴的sRNA(RsmX、RsmY和RsmZ),進(jìn)而調(diào)節(jié)二級代謝產(chǎn)物的生成和抗菌活性[34]。
無論是真核細(xì)胞還是原核細(xì)胞,對外界刺激產(chǎn)生適應(yīng)性變化是其固有特性,而sRNA在調(diào)節(jié)細(xì)菌適應(yīng)性中起重要作用。細(xì)菌耐藥性是細(xì)菌對抗菌藥物的自然反應(yīng),長時間高濃度接觸抗菌藥物,細(xì)菌可通過改變自身結(jié)構(gòu)或狀態(tài)(改變藥物作用靶位結(jié)構(gòu),影響生物被膜通透性及提高藥物轉(zhuǎn)運蛋白活性)產(chǎn)生獲得性耐藥。sRNA作為細(xì)菌廣泛存在的調(diào)節(jié)元件,調(diào)節(jié)細(xì)菌對抗生素的適應(yīng)性而介導(dǎo)細(xì)菌耐藥。Jing Y,等[6]首次報道了抗菌藥物對細(xì)菌sRNA表達(dá)的影響,基因芯片結(jié)果顯示,利奈唑胺等四種藥物處理多重耐藥金黃色葡萄球菌(Multidrug-Resistant Staphylococcus aureus,MRSA)后,39個sRNA表達(dá)變化顯著。其他學(xué)者也證明多種抗菌藥物的耐藥性與sRNA表達(dá)變化有關(guān),如替加環(huán)素處理誘導(dǎo)傷寒沙門菌sRNA表達(dá),其中sYJ20可能參與傷寒沙門菌對替加環(huán)素的耐藥[5];生物信息學(xué)預(yù)測,鮑曼不動桿菌sRNA AbsR25的靶基因中有3個與藥物轉(zhuǎn)運相關(guān)[25]。在大腸桿菌中,sRNA ralR及其靶基因ralA雙缺失突變菌株對磷霉素的敏感性顯著高于野生型菌株[35];兩性霉素B的耐藥涉及PhoP/PhoQ二元信號系統(tǒng),后者通過sRNA mgrR負(fù)性調(diào)節(jié)耐藥相關(guān)基因eptB[36];氨芐西林誘導(dǎo)sRNA sdsR的表達(dá),后者與DNA錯配修復(fù)基因mutS堿基互補(bǔ)配對而抑制細(xì)菌的錯配修復(fù),從而導(dǎo)致大腸桿菌耐藥[37]。然而,sRNA調(diào)控某些細(xì)菌耐藥的確切機(jī)制尚未完全闡明,且與已知的耐藥機(jī)制之間的關(guān)系也尚待研究。
新近研究表明細(xì)菌sRNA不但在細(xì)菌的生長、繁殖等生物學(xué)過程中發(fā)揮重要作用,也介導(dǎo)了抗菌藥物的殺菌作用,這為進(jìn)一步研究抗菌藥物的作用機(jī)制及尋找抗菌新藥提供了思路。另一方面,sRNA在細(xì)菌對外界適應(yīng)性變化中起重要調(diào)節(jié)作用,為闡明細(xì)菌耐藥性提供了新的解釋。然而,有關(guān)sRNA介導(dǎo)抗菌藥物的作用及耐藥性的研究目前仍處于起步階段,還有許多問題有待深入探討:① sRNA介導(dǎo)抗菌藥物的作用及細(xì)菌耐藥機(jī)制尚未完全闡明,包括sRNA的種類及其上、下游的調(diào)控機(jī)制;② sRNA的生物學(xué)效應(yīng)依賴于分子伴侶Hfq,sRNA與Hfq相互作用的認(rèn)識還有存在爭議,Hfq能促進(jìn)sRNA與靶mRNA的結(jié)合并形成穩(wěn)定sRNA-mRNA復(fù)合物,另有學(xué)者認(rèn)為,Hfq能與sRNA競爭結(jié)合靶mRNA而抑制靶mRNA的表達(dá)和翻譯[30],闡明兩者相互作用有助于認(rèn)識sRNA的作用機(jī)制;③已知真核細(xì)胞能主動分泌miRNA,發(fā)揮臨近細(xì)胞與遠(yuǎn)程調(diào)節(jié)作用[22]。細(xì)菌也能分泌sRNA[38,39],但分泌型sRNA的生物學(xué)意義尚不清楚。隨著研究的深入,對sRNA的生物學(xué)及藥理學(xué)的認(rèn)識必將獲得更大進(jìn)步。
[1] Storz G,Vogel J,Wassarman KM.Regulation by Small RNAs in Bacteria:Expanding Frontiers[J].Mol Cell,2011,43(6):880-891.
[2] De Lay N,Schu DJ,Gottesman S.Bacterial small RNA-based negative regulation:Hfq and its accomplices[J].J Biol Chem,2013,288(12):7996-8003.
[3] Wassarman KM.6S RNA:a small RNA regulator of transcription[J].Curr Opin Microbiol,2007,10(2):164-168.
[4] Lalaouna D,Simoneau-Roy M,Lafontaine D,et al.Regulatory RNAs and target mRNA decay in prokaryotes[J].Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Gene Regulatory Mechanisms,2013,1829(6-7):742-747.
[5] Papenfort K,Vogel J.Regulatory RNA in bacterial pathogens[J].Cell Host Microbe,2010,8(1):116-127.
[6] Yu J,Schneiders T.Tigecycline challenge triggers sRNA production in Salmonella enterica serovar Typhimurium[J].BMC Microbiol,2012,12(1):195-208.
[7] Howden BP,Beaume M,Harrison PF,et al.Analysis of the small RNA transcriptional response in multidrug-resistant staphylococcus aureus after antimicrobial exposure[J].Antimicrob Agents Chemother,2013,57(8):3864-3874.
[8] Sonnleitner E,Romeo A,Bl?si U.Small regulatory RNAs in Pseudomonas aeruginosa[J].RNA Biol,2012,9(4):364-371.
[9] Sharma CM,Hoffmann S,Darfeuille F,et al.The primary transcriptome of the major human pathogen Helicobacter pylori[J].Nature,2010,464(7286):250-255.
[10] Wen Y,Feng J,Sachs G.Helicobacter pylori 5′ureB-sRNA,a cis-encoded antisense small RNA,negatively regulates ureAB expression by transcription termination[J].J Bacteriol,2013,195(3):444-452.
[11] Pernitzsch SR,Tirier SM,Beier D,et al.A variable homopolymeric G-repeat defines small RNA-mediated posttranscriptional regulation of a chemotaxis receptor in Helicobacter pylori[J].Proc Natl Acad Sci USA,2014,111(4):501-510.
[12] Kawano M,Reynolds AA,Miranda-Rios J,et al.Detection of 5′-and 3′-UTR-derived small RNAs and cis-encoded antisense RNAs in Escherichia coli[J].Nucleic Acids Res,2005,33(3):1040-1050.
[13] Waters LS,Storz G.Regulatory RNAs in Bacteria[J].Cell,2009,136(4):615-628.
[14] Michaux C,Verneuil N,Hartke A,et al.Physiological roles of small RNA molecules[J].Microbiology,2014,160(Pt6):1007-1019.
[15] Bartel DP.MicroRNAs:eenomics,biogenesis,mechanism,and function[J].Cell,2004,116(2):281-297.
[16] 張煒,童貽剛,馮福民.細(xì)菌非編碼小 RNA 研究進(jìn)展[J].微生物學(xué)通報,2009,36(7):1025-1030.
[17] 生秀梅,徐順高,張海方,等.細(xì)菌小 RNA 的研究[J].生命的化學(xué),2010,30(6):815-820.
[18] Ishiguro H,Kimura M,Takeyama H.Role of microRNAs in gastric cancer[J].World J Gastroenterol,2014,20(19):5694-5699.
[19] Olson EN.MicroRNAs as Therapeutic Targets and Biomarkers of Cardiovascular Disease[J].Sci Transl Med,2014,6(239):239ps3.
[20] Brantl S,Brückner R.Small regulatory RNAs from low-GC Gram-positive bacteria[J].RNA Biol,2014,11(5):443-456.
[21] Chivukula RR,Shi G,Acharya A,et al.An Essential Mesenchymal Function for miR-143/145 in Intestinal Epithelial Regeneration[J].Cell,2014,157(5):1104-1116.
[22] Liang H,Zen K,Zhang J,et al.New roles for microRNAs in cross-species communication[J].RNA Biol,2013,10(3):367-370.
[23] 戰(zhàn)崳華,馬堯,鄧志平,等.非編碼 RNAs 在細(xì)菌代謝網(wǎng)絡(luò)調(diào)控中的研究進(jìn)展[J].生物技術(shù)進(jìn)展,2012,1(6):413-420.
[24] Balasubramanian D,Schneper L,Kumari H,et al.A dynamic and intricate regulatory network determines Pseudomonas aeruginosa virulence[J].Nucleic Acids Res,2013,41(1):1-20.
[25] Sharma R,Arya S,Patil SD,et al.Identification of novel regulatory small RNAs in acinetobacter baumannii[J].PLoS One,2014,9(4):e93833.
[26] H?mmerle H,Vcˇerek B,Resch A,et al.Duplex formation between the sRNA DsrA and rpoS mRNA is not sufficient for efficient RpoS synthesis at low temperature[J].RNA Biol,2013,10(12):1834-1841.
[27] Calderón IL,Morales EH,Collao B,et al.Role of salmonella typhimurium small RNAs RyhB-1 and RyhB-2 in the oxidative stress response[J].Res Microbiol,2014,165(1):30-40.
[28] Pérez-Martínez I,Haas D.Azithromycin inhibits expression of the GacA-Dependent small RNAs RsmY and RsmZ in pseudomonas aeruginosa[J].Antimicrob Agents Chemother,2011,55(7):3399-3405.
[29] Ramos CG,Grilo AM,da Costa PJ,et al.MtvR Is a Global small noncoding regulatory RNA in burkholderia cenocepacia[J].J Bacteriol,2013,195(16):3514-3523.
[30] Salvail H,Caron MP,Bélanger J,et al.Antagonistic functions between the RNA chaperone Hfq and an sRNA regulate sensitivity to the antibiotic colicin[J].EMBO J,2013,32(20):2764-2778.
[31] Eyraud A,Tattevin P,Chabelskaya S,et al.A small RNA controls a protein regulator involved in antibiotic resistance in Staphylococcus aureus[J].Nucleic Acids Res,2014,42(8):4892-4905.
[32] Kohanski MA,Dwyer DJ,Hayete B,et al.A common mechanism of cellular death induced by bactericidal antibiotics[J].Cell,2007,130(5):797-810.
[33] Vockenhuber MP,Suess B.Streptomyces coelicolor sRNA scr5239 inhibits agarase expression by direct base pairing to the dagA coding region[J].Microbiology,2012,158(Pt2):424-435.
[34] Takeuchi K,Kiefer P,Reimmann C,et al.Small RNA-dependent expression of secondary metabolism Is controlled by krebs cycle function in pseudomonas fluorescens[J].J Biol Chem,2009,284(50):34976-34985.
[35] Guo Y,Quiroga C,Chen Q,et al.RalR (a DNase) and RalA (a small RNA) form a type I toxin-antitoxin system in Escherichia coli[J].Nucleic Acids Res,2014,42(10):6448-6462.
[36] Moon K,Gottesman S.A PhoQ/P-regulated small RNA regulates sensitivity of Escherichia coli to antimicrobial peptides[J].Mol Microbiol,2009,74(6):1314-1330.
[37] Gutierrez A,Laureti L,Crussard S,et al.β-lactam antibiotics promote bacterial mutagenesis via an RpoS-mediated reduction in replication fidelity[J].Nat Commun,2013,4:1610-1618.
[38] Ando T,Suzuki H,Nishimura S,et al.Characterization of extracellular RNAs produced by the marine photosynthetic bacterium rhodovulum sulfidophilum[J].J Biochem,2006,139(4):805-811.
[39] 唐立,凌宗欣,文姝.乳桿菌對數(shù)生長期培養(yǎng)基濾液核酸組分分析[J].中國微生態(tài)學(xué)雜志,2011,23(2):104-106.
10.15972/j.cnki.43-1509/r.2015.01.001
2014-08-26;
2014-09-20
國家自然科學(xué)基金(81273513).
*通訊作者,E-mail:yuan_jianli@yahoo.com.
李元建 教授
專家簡介: 李元建,男,藥理學(xué)教授,博士生導(dǎo)師。享受政府特殊津貼,衛(wèi)生部有突出貢獻(xiàn)的中青年專家。兼任湖南省心血管研究重點實驗室主任。《國際病理科學(xué)與臨床雜志》主編,《中國藥理學(xué)與毒理學(xué)雜志》、《中國動脈硬化雜志》、《中南大學(xué)學(xué)報—醫(yī)學(xué)版》等雜志編委。主編與參編教材或?qū)V?1部。先后獲衛(wèi)生部青年科研基金、美國心臟學(xué)會博士后資助、教育部優(yōu)秀年輕教師基金及重點跟蹤資助、教育部跨世紀(jì)優(yōu)秀人才培養(yǎng)計劃基金、教育部重大項目、國家自然科學(xué)基金面上與重點項目、973項目子課題、湖南省自然科學(xué)基金、湖南省重點實驗室基金等20余項基金??蒲蟹较驗樾难芩幚恚饕芯績?nèi)容為心血管新藥研發(fā)及藥物作用機(jī)制。先后獲省部級科研成果16項。指導(dǎo)的研究生獲全國博士論文獎1人,全國優(yōu)秀博士論文提名獎5人。發(fā)表科研論文260余篇,其中被SCI收錄論文210篇。
R966
A
(此文編輯:秦旭平)