韓維娜,張 震,師 帥,柴 奇,劉學(xué)娜*
(1.哈爾濱醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院,黑龍江哈爾濱150081;2.哈爾濱醫(yī)科大學(xué)大慶校區(qū),黑龍江大慶163319)
研究植物及微生物體內(nèi)生物大分子的結(jié)構(gòu)修飾,對單一成分的純化是一個重要且繁瑣的過程[1-5]。到目前為止,在組成總核糖核酸(tRNA)中共存在107種不同結(jié)構(gòu)修飾的核苷。越來越多的化學(xué)和生物學(xué)領(lǐng)域的科學(xué)家對硫或硒修飾的tRNA及其功能感興趣[6],已發(fā)現(xiàn)近23種不同的硫和硒核苷修飾的tRNA[7]。到目前為止,研究微生物體 DNA與RNA的硒和硫結(jié)構(gòu)修飾大多使用同位素示蹤法,雖然靈敏度高,但是其放射性限制其在一般實驗室的應(yīng)用。因此,合成新的分離材料一直是一個熱點。已有報道表明,用交聯(lián)葡萄糖凝膠色譜從消化過的核苷酸混合物中選擇性地分離出4-和2-硫代尿嘧啶核苷[8]。但是,目前還沒有連接到對氯汞苯甲酸的報道。硫與硒在元素周期表中屬于同一主族,因此其化學(xué)性質(zhì)相似。如果某些載體能與硫結(jié)合,那么就能將含硒化合物分離。根據(jù)這個原則,筆者合成了一種新的汞柱,設(shè)計路線見圖1。
合成的Hg-DADPA色譜純化化合物是一個可逆過程。通過不同濃度的HCl洗脫,將不同位置硫或硒修飾的核苷酸選擇性地分離。該研究方法簡單,成本低,不破壞化合物的穩(wěn)定性。Hg-DADPA色譜的高選擇性和高回收率可推廣至天然產(chǎn)物中含硫、含硒化合物及未知化合物的富集和分離,為下一步鑒定提供樣品。
1.1 儀器和試劑 HR-MASS質(zhì)譜儀(美國Waters公司);ZWY-200D恒溫培養(yǎng)振蕩器(上海智誠分析儀器制造有限公司)。碳酸氫鈉(NaHCO3)pH 8.8,偶聯(lián)緩沖液(0.1 mol/L MES,濃度 0.9%NaCl,pH 4.7),DADPA 瓊脂糖購買于 Thermo公司;對氯汞苯甲酸、1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亞胺(EDC)和UTP購于Sigma公司;2-硫代尿嘧啶(2-SU)、2-硒代尿嘧啶(2-SeU)和4-硒代尿嘧啶核苷(4-SeUTP)由實驗室提供。Baseline-ZEROTMDNase,RNase A,RiboShredderTMRNase Blend購買于Epicentre公司。
LB的組成:分別稱取10 g胰蛋白胨、5 g酵母提取物和5 g氯化鈉,加1 L雙蒸水,定容,加熱攪拌至溶解,滅菌后,在室溫下放置,備用。
圖1 設(shè)計路線
1.2 Hg-DADPA色譜的合成 取3 ml二氨基二異丙基瓊脂糖 DADPA(16 ~20 μmol氨基/ml樹脂),加入到0.5 cm ×8 cm柱中(最后柱床高度1 cm),自由滴下,使存儲的緩沖液耗盡后,分3次加入偶合緩沖液(0.1 mol/L MES,濃度0.9%NaCl,pH 4.7),每次 3 ml,沖洗干凈。在整個過程中,不要使樹脂床干燥;平衡樹脂,最后添加偶合緩沖液9 ml,轉(zhuǎn)移DADPA瓊脂糖至25 ml容量瓶中。取0.306 mmol對氯汞苯甲酸,溶解到6 ml二甲基甲酰胺中,混合幾分鐘,溶解后轉(zhuǎn)移到 25 ml容量瓶中。另取0.774 mmol的 EDC 0.3 ml,溶解到偶合緩沖液中,然后加入裝有樹脂的圓底燒瓶中,在室溫下攪拌,經(jīng)過18 h反應(yīng),樹脂轉(zhuǎn)移到層析柱中,并且添加洗滌緩沖液(0.1 mol/L NaHCO3(pH=8.8)),洗滌至澄清,放至 4℃保存,備用。
1.3 Hg-DADPA色譜分離混合物 混合4-UTP、UTP、2-SU和2-SeU,使用Hg-DADPA色譜柱分離。步驟如下:使用移液器分別取2 μl的 10 mmol/L UTP(A)、2-SU(B)、2-SeU(C)和4-SeUTP(D),混合,然后加入1.8 ml雙蒸水作為樣品。使用Hg-DADPA色譜分離樣品,洗脫劑分別是0.1 mol/L NaHCO3、0.002 mol/L HCl、0.005 mol/L HCl和0.5 mol/L HCl,其中0.6 ml/管,每份洗脫的餾分都要通過紫外全波長掃描檢測,合并相同樣品。其中,在13管、14管之間加雙蒸水10 ml,洗脫殘存的碳酸氫鈉。
A=ECL計算樣品回收率(n=3)
1.4 從大腸桿菌菌株K12(MG1665)提取tRNA 添加少量的大腸桿菌于LB中,4℃過夜,離心(6 000 r/min)8 min,棄上清液;留下約250 μl液體;加入含1 ml蛋白酶K組織和300 ml細(xì)胞裂解液,渦旋振蕩5 min,65℃孵育120 min,再將樣品置于冰上15 min,添加含175 ml的MPC蛋白沉淀試劑300 ml溶解樣品,渦旋振蕩1 min,4℃,離心(13 000 r/min)30 min;加入500 ml異丙醇,回收上清液;顛倒離心管30~40次,4℃離心20 min,小心倒出異丙醇;用濃度70%乙醇漂洗2次,不要接觸沉淀;離心,用移液管取出所有殘留的乙醇,得到總DNA和總RNA;加入6 ml不含RNA酶的游離水后,再加入 Baseline-ZEROTMDNase 200 μl(10 ×緩沖液,0.69 ml),37℃過夜;加入0.77 ml 3 mol/L NaCl,然后加入8 ml異丙醇,顛倒離心管30~40次;4℃,離心(3 000 r/min)30 min,得到tRNA。重復(fù)1次。
1.5 tRNA的消化和含硫核苷酸化合物的富集 將tRNA重新溶于3 ml雙蒸水中,加入0.5 ml 5 μg/μl的 RNA 酶 A,混勻,并在37℃過夜孵育。然后,經(jīng)Hg-DADPA色譜柱分離含硫或硒的核苷酸,洗脫劑分別是 0.1 mol/L NaHCO3、0.002 mol/L HCl、0.005 mol/L HCl和0.5 mol/L HCl,其中 0.6 ml/管,每份洗脫的餾分都要通過紫外全波長掃描檢測,合并相同樣品。
1.6 含硫核苷酸化合物的鑒定 水解tRNA后,經(jīng)過Hg-DADPA色譜富集含硫、含硒核苷酸化合物,得到樣品A和B,將樣品經(jīng)HPLC分析。HPLC條件如下:PRP-1反相柱,流速1 ml/min,柱溫25℃,流動相A為10 mmol/L TEAAc(pH 7.1),流動相 B為含濃度60%CH3CN的10 mmol/L TEAAc(pH 7.1)。梯度洗脫,0~15 min 100%B,16~20 min 100%A到30%B,檢測波長260、326 nm。對HPLC的每個組分進(jìn)行ESI(-)-MS和HR-MS鑒定。
2.1 合成DADPA-Hg柱對混合物的分離和回收率測定 混合的UTP(A)、2-SU(B)、2-SeU(C)和4-SeUTP(D)有不同的最大紫外吸收峰,分別為260、300、307、365 nm。柱層析洗脫次序見圖2。重復(fù)3次,使用計算公式:A=ECL,計算樣品回收率,式中A代表吸光度;E代表吸光系數(shù);C代表濃度;L代表比色皿厚度。UTP、2-SU、2-SeU、4-SeUTP的回收率分別約73%、87%、90%、85%(n=3)。Hg-DADPA色譜柱能夠高效地通過不同濃度的HCl洗脫劑分離不同含硫或硒的化合物,且可重復(fù)使用。
2.2 樣品穩(wěn)定性 由表1可知,室溫放置4 d后,2-硒代尿嘧啶核苷比4-硒代尿嘧啶核苷穩(wěn)定,在酸性條件下4-硒代尿嘧啶核苷幾乎100%降解;硒取代的化合物在中性和堿性條件下比酸性條件下要穩(wěn)定,其中在中性條件下化合物幾乎沒有發(fā)生降解,pH越低,化合物的穩(wěn)定性越差。2-硒代胸腺嘧啶核苷和4-硒代胸腺嘧啶核苷具有同樣的試驗結(jié)果,即2位比4位穩(wěn)定,在酸性條件下化合物具有不穩(wěn)定性。
2.3 未消化前提取大腸桿菌得到tRNA的總量和純度 從1 L大腸桿菌中提取得到9 ml的RNA,取2 μl稀釋到800 μl水中,得到紫外圖譜,計算A260/A280=1.96,表明RNA純度達(dá)到90%以上。
2.4 tRNA的消化和含硫、含硒核苷酸化合物的富集 0.1 mol/L鹽酸洗脫液在326 nm處有吸收(11~13管,樣品A),0.5 mol/L鹽酸洗脫液在326和260 nm處均有吸收(樣品B),通過紫外檢測,大致能夠判斷水解程度,A260/A326為4~10(樣品B),判斷RNA沒有徹底水解,每個修飾上面大概平均連接有4~6個未被修飾的堿基。由圖3可知,所有餾分均顯示在256 nm處有吸收。這可能由于是核苷酸降解后產(chǎn)生不完全水解。然而,11~13管均在326 nm處有強(qiáng)吸收,故此合并作為樣品A,將進(jìn)一步分析326 nm峰的組成。
表1 UTP、2-SU、2-SeU和4 SeUTP在不同溶劑、不同時間下的穩(wěn)定性
圖2 Hg-DADPA柱對硫硒修飾不同位置化合物的分離
圖3 tRNA消化后,富集含硫及含硒核苷酸化合物
圖4 加入不同濃度B2A6和不同pH樣品A反應(yīng)的紫外圖譜
2.5 樣品A的鑒定與分離
2.5.1 樣品A的鑒定。首先,以B2H6為還原劑,加入后發(fā)現(xiàn)沒有造成任何紫外吸收峰的改變(圖4)。但是,樣品A對pH敏感,尤其是在堿性條件下。樣品吸收峰在酸性條件下轉(zhuǎn)變非常緩慢,而在堿性條件下pH改變吸收峰也迅速發(fā)生改變。根據(jù)吸收峰的數(shù)值,這些變化可能是硫取代的核苷(硫尿嘧啶核苷)造成的。因此,據(jù)預(yù)測,樣品A主要是寡核苷酸,且含有硫尿嘧啶的結(jié)構(gòu)。
2.5.2 樣品A的分離。樣品A經(jīng)過高效液相分析,收集到6個不同的組分,前5個無色,第6個黃色(圖5)。
2.5.3 化合物鑒定。對HPLC的每個組分進(jìn)行ESI(-)-MS and HR-MS鑒定。通過ESI(-)-MS(圖6),分析所有的組分。684 m/z(M+-1)存在于后3個組分中,而668 m/z(M+-1)在6個組分中都存在,742 m/z(M+-1)存在于后3個組分中。水解RNA的酶核糖核酸酶A(RNA酶A)是一個內(nèi)源性的殘留3'端嘧啶,最終形成3'-嘧啶-3'-磷酸寡居核苷酸,因此根據(jù)紫外吸收峰和HR-MS,這2個峰分別對應(yīng)到鳥嘌呤-2-硫代尿嘧啶核苷酸、腺嘌呤-3-硫代尿嘧啶核苷酸和鳥嘌呤-5-甲酰-2-尿嘧啶核苷酸(表2、圖7)。
表2 大腸桿菌的tRNA消化后的核苷酸通過HR-MS的修飾和鑒定
使用二氨基二異丙基瓊脂糖(DADPA)與對氯汞苯甲酸進(jìn)行反應(yīng),得到Hg-DADPA色譜。用不同濃度的鹽酸洗脫不同位置取代的硫或硒修飾化合物。這個反應(yīng)是一個可逆反應(yīng)。當(dāng)增加HCl用量時,被Hg-DADPA色譜反應(yīng)結(jié)合的產(chǎn)物會被游離出來,從而被洗脫,而當(dāng)更換成其他酸時,不能達(dá)到洗脫和分離。Hg-DADPA色譜對酸是穩(wěn)定的,因此Hg-DADPA色譜的再生可以使用0.5 mol/L HCl洗脫除雜,從而活化。Hg-DADPA還具有一些優(yōu)點,如可重用性和高可靠性、高回收率。試驗結(jié)果顯示,最低的回收率達(dá)80%以上。該研究材料將幫助含硫和含硒修飾的內(nèi)源性大分子的富集,從而有助于進(jìn)一步確定生物大分子的修飾位置。
圖5 HPLC分析和分離樣品A
圖6 大腸桿菌的tRNA消化后的核苷酸HR-MS
圖7 化合物結(jié)構(gòu)
使用合成的汞柱對來自大腸桿菌K12的tRNA中的含硫、含硒化合物分離,通過HR-MS鑒定得到鳥嘌呤-2-硫代尿嘧啶核苷酸、腺嘌呤-3-硫代尿嘧啶核苷酸和鳥嘌呤-5-甲酰-2-尿嘧啶核苷酸3個化合物。消化時使用RNA酶A,存在如下原因:核糖核酸酶A是一個內(nèi)源性的核糖核酸酶,將最終水解得到3'-嘧啶-3'-磷酸根[9-10]。分離、富集后在326 nm處的吸收峰是類似合成的4-硫尿嘧啶核苷酸(峰值在330 nm處)。根據(jù)這一特點,進(jìn)一步通過ESI-MS和HR-MS確定大腸桿菌核苷酸的RNA的G-4-硫代尿嘧啶核苷酸、A-3-硫代尿嘧啶核苷酸及G-5-甲酰-4-硫代尿嘧啶核苷酸。然而,沒有發(fā)現(xiàn)硒修飾核苷酸??赡艿脑蚴且阎淖匀话l(fā)生的硫和硒核苷在所有類型的RNA修飾中非常低,因此下一步將擴(kuò)大培養(yǎng)。
總之,已合成新的Hg-DADPA色譜,可用于分離硫和硒修飾的RNA。這是一個經(jīng)濟(jì)和安全的純化方法,具有重復(fù)性和選擇性。2005年,上海交通大學(xué)的科學(xué)家已發(fā)現(xiàn)一種新的DNA修飾,即DNA修飾中含有硫。這在核酸的研究上屬于里程碑的科學(xué)文件[11-12]。這表明含有硒的DNA或RNA的修飾也可能存在于其他生物體中,或存在于更特殊的自然條件下生存的生物(如隕石坑的植物和微生物)。合成汞柱將有助于富集含硫含硒DNA或RNA修飾,使得檢測簡化,同時避免同位素對人體的傷害。今后,將使用這種新合成的Hg-DADPA色譜從天然植物中富集硫和硒衍生物。
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