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      荷葉黃酮的提取和純化工藝研究

      2015-12-18 21:28:05蔡敏李長(zhǎng)春畢宏光唐正宇方翔
      湖北農(nóng)業(yè)科學(xué) 2015年22期
      關(guān)鍵詞:純化荷葉黃酮

      蔡敏 李長(zhǎng)春 畢宏光 唐正宇 方翔

      摘要:研究孝感本地生長(zhǎng)的荷葉,通過(guò)超聲波輔助乙醇提取法,獲得荷葉黃酮的粗提物,再采用HPD-450、HPD-600、HPD-826 3種不同大孔吸附樹(shù)脂進(jìn)行分離純化,通過(guò)靜態(tài)吸附-解吸試驗(yàn)對(duì)3種樹(shù)脂的純化工藝進(jìn)行選擇。結(jié)果表明,在pH 6.5,溫度30 ℃,轉(zhuǎn)速180 r/min的恒溫振蕩器中,HPD-450的吸附量為95 mg/g、吸附率為39.38%、解吸率為50%,HPD-600的吸附量為98 mg/g、吸附率為40.66%、解吸率為70%,HPD-826的吸附量為112 mg/g、吸附率為46.89%、解吸率為56%。綜合考慮HPD-826型大孔樹(shù)脂對(duì)荷葉黃酮純化效果最佳,適用于精制荷葉黃酮。

      關(guān)鍵詞:荷葉;黃酮;大孔樹(shù)脂;純化

      中圖分類(lèi)號(hào):S682.32;R284.2 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):0439-8114(2015)22-5691-03

      Abstract: The lotus leaf of Xiaogan local growth was studied. The total lotus leaf flavonoids were obtained by ethanol ultrasonic assisted extraction. Three different macro porous absorption resin of HPD-450, HPD-600 and HPD-826 were used to separate and purify the flavonoids. Three kinds of resin purification process were optimized by static adsorption-desorption experiment. The result showed that the adsorption quantity of three kinds of resin were 95 mg/g, 98 mg/g, 112 mg/g, the adsorption rate were 39.38%, 40.66%, 46.89% and the desorption rate were 50%, 70%, 56% for HPD-600, HPD-450 and HPD-826 respectively under the conditions of pH 6.5, temperature 30 ℃, thermostatic oscillator in the speed of 180 r/min. The effects of temperature and the pH on dynamic adsorption were discussed. Therefore, macroporous resin of HPD-826 was suitable to refine lotus leaf flavonoids.

      Key words: lotus leaf; flavonoids; macroporous absorption resin; extraction and purification

      荷葉為睡蓮科(Nymphaeaceae)水生植物,資源豐富,主要分布在湖北、湖南、安徽、江西、福建、江蘇、山東等省份。荷葉的化學(xué)成分十分復(fù)雜,至今已從荷葉中分離出生物堿、黃酮類(lèi)化合物等多種主要化學(xué)成分[1,2]。研究表明,荷葉中含有以槲皮素為主要成分的黃酮類(lèi)物質(zhì),且含量豐富[3]。張贇彬等[4]從荷葉中分離出山萘酚和槲皮素-3-丙酯。Elegami等[5]從荷葉中分離出了Myricetin-3-(6-p-coumaroyl)-glucoside,Nympholide A和Nympholide B等黃酮類(lèi)物質(zhì)。延璽等[6]通過(guò)研究發(fā)現(xiàn)黃酮類(lèi)化合物具有多種生理功能和抵抗疾病的作用。

      通過(guò)研究孝感本地生長(zhǎng)的荷葉,在試驗(yàn)室條件下對(duì)荷葉黃酮類(lèi)粗提物提取工藝研究的基礎(chǔ)上,使用大孔吸附樹(shù)脂HPD-450、HPD-600、HPD-826對(duì)荷葉黃酮類(lèi)粗提物的分離純化效果優(yōu)化,采用靜態(tài)吸附—解吸試驗(yàn)和動(dòng)態(tài)吸附—解吸試驗(yàn)相結(jié)合的研究方法,獲得靜態(tài)吸附曲線(xiàn)、吸附率和解吸率,通過(guò)比較3種樹(shù)脂的各種參數(shù),選出適當(dāng)?shù)臉?shù)脂對(duì)荷葉黃酮進(jìn)行分離純化[7,8]。并且在此基礎(chǔ)上探討了pH、乙醇體積分?jǐn)?shù)、恒溫振蕩器的溫度、轉(zhuǎn)速對(duì)大孔吸附樹(shù)脂吸附率和解吸率的影響[9,10]。

      1 材料與方法

      1.1 試驗(yàn)材料

      新鮮荷葉分別于7月、8月和9月采集于孝感后湖公園中本土生長(zhǎng)的荷葉品種。將采集的荷葉用電熱鼓風(fēng)干燥箱在70 ℃下烘8 h,中草藥粉碎機(jī)粉碎,用60目篩子重復(fù)篩選3次得到荷葉粉末,裝袋密封,放置冰箱內(nèi),備用[11]。

      1.2 試劑與設(shè)備

      試劑:蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品(貴州迪大科技有限公司);大孔吸附樹(shù)脂(滄州寶恩吸附材料科技有限公司);無(wú)水乙醇、NaNO2、Al(NO3)3、NaOH 均為分析純。

      設(shè)備:中草藥粉碎機(jī)(天津市泰斯特有限公司);電熱鼓風(fēng)干燥箱(上海?,攲?shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司);電子天平(賽多利斯科學(xué)儀器有限公司);DL-480B型超聲波清洗器(上海之信儀器有限公司);DT5-2型低速臺(tái)式離心機(jī)(北京時(shí)代利離心機(jī)有限公司);SHZ-III型循環(huán)水真空泵(上海亞榮生化儀器廠);ZHWY-211B型恒溫振蕩器(上海智城分析儀器制造有限公司);UV-5200型紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)(上海元析儀器有限公司);FE20型pH計(jì)(上海梅特勒-托利多儀器有限公司);TBD-2000型中壓層析制備系統(tǒng)(SHANGHAI TAUTO BIOTECH CO.,LTD.);Φ5.0×40型層析柱(上海滬西分析儀器廠有限公司)。

      1.3 試驗(yàn)方法

      1.3.1 蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的制定 稱(chēng)取10 mg蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品,用30%乙醇標(biāo)定在50 mL容量瓶中,配成濃度為0.200 mg/mL的蘆丁溶液,再分別取0、1、2、3、4、5 mL于25 mL的容量瓶中,在每個(gè)容量瓶中加入1 mL 5%的NaNO2振蕩6 min后加入l mL 5% Al(NO3)3,振蕩5 min,再加入10 mL 10%的NaOH,定容到刻度線(xiàn),以空白試劑為參比液,于510 nm處測(cè)其吸光度,以吸光度A為縱坐標(biāo),濃度C為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)(圖1)。

      1.3.2 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì) 以影響荷葉黃酮提取率的乙醇體積分?jǐn)?shù)、料液比(g∶mL,下同)、提取時(shí)間和提取溫度為4個(gè)影響因素,取各自的3個(gè)水平進(jìn)行正交試驗(yàn),試驗(yàn)的因素與水平見(jiàn)表1。

      1.3.3 大孔吸附樹(shù)脂靜態(tài)吸附試驗(yàn) 主要采用HPD-450、HPD-600、HPD-826 3種樹(shù)脂進(jìn)行靜態(tài)吸附和解吸試驗(yàn),3種樹(shù)脂均為白色不透明球狀顆粒,它們的性能指標(biāo)見(jiàn)表2。用電子天平準(zhǔn)確稱(chēng)取已經(jīng)預(yù)處理好的3種樹(shù)脂各1 g,分別放入3個(gè)干凈的150 mL的具塞錐形瓶,取荷葉黃酮提取液70 mL于燒杯,再準(zhǔn)確量取60%乙醇140 mL加入燒杯,在每個(gè)150 mL的錐形瓶中加入稀釋后的提取液40 mL(測(cè)得pH為6.5),在不改變提取液pH的條件下,放入恒溫振蕩器中(30 ℃,180 r/min)靜態(tài)吸附,然后每間隔1 h測(cè)定錐形瓶上清液中黃酮的濃度。方法如下:分別用3個(gè)移液管,在每個(gè)移液管貼上標(biāo)簽,準(zhǔn)確量取錐形瓶上清液1 mL于3個(gè)25 mL的小燒杯,測(cè)定方法同標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)。測(cè)定得到其吸光度,帶入回歸方程公式即可得到錐形瓶中上清液黃酮的濃度。

      按照下列算式計(jì)算出各種樹(shù)脂的靜態(tài)吸附量(mg/g):

      上式中,Q是靜態(tài)吸附量(mg/g);C是初始濃度(mg/mL);Cv是剩余濃度(mg/mL);V是溶液體積(mL);W是樹(shù)脂質(zhì)量(g)。

      假設(shè)吸附前與后提取液體積無(wú)變化,可按下列算式計(jì)算出樹(shù)脂的靜態(tài)吸附率:

      1.3.4 大孔吸附樹(shù)脂靜態(tài)解吸試驗(yàn) 待靜態(tài)吸附達(dá)到平衡狀態(tài)后,取出上述吸附飽和的3種大孔樹(shù)脂過(guò)濾,濾紙吸收樹(shù)脂表面的殘留溶液,然后放回錐形瓶,加入60%乙醇50 mL,置于恒溫振蕩器中(30 ℃,180 r/min)靜態(tài)解吸,每隔1 h收集一次上清液測(cè)定黃酮的濃度。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 荷葉黃酮提取工藝結(jié)果

      正交試驗(yàn)優(yōu)化荷葉黃酮試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表3。由表3可知,荷葉中黃酮提取的最佳試驗(yàn)條件為B1A2C1D3,即料液比l∶20,60%乙醇,60 ℃,提取4 h。按照上述獲得的荷葉黃酮提取條件,將7、8、9月采集于孝感后湖公園本土生長(zhǎng)的荷葉樣品分別進(jìn)行浸提,通過(guò)紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)檢測(cè),吸光度代入蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)線(xiàn)性回歸方程可得,7、8、9月荷葉樣品黃酮含量分別為7.84、7.92、7.87 mg/g,平均含量為7.88 mg/g,此時(shí)黃酮得率為0.788%。

      2.2 大孔吸附樹(shù)脂靜態(tài)吸附結(jié)果

      3種大孔樹(shù)脂靜態(tài)吸附在每個(gè)時(shí)間段的靜態(tài)吸附量見(jiàn)表4。運(yùn)用Excel軟件繪制出3種樹(shù)脂的靜態(tài)吸附動(dòng)力學(xué)曲線(xiàn)見(jiàn)圖2。由表4和圖2可知,HPD-826型大孔吸附樹(shù)脂在6 h左右吸附量就可以達(dá)到最大值112 mg/g,而HPD-450和HPD-600需在8 h左右達(dá)到飽和吸附量,分別為95、98 mg/g。在相同分離純化條件下HPD-826型大孔吸附樹(shù)脂達(dá)到平衡的時(shí)間相對(duì)短,吸附量較大,吸附率較高。

      2.3 大孔吸附樹(shù)脂靜態(tài)解吸結(jié)果

      恒溫振蕩器中30 ℃,180 r/min靜態(tài)解吸,每隔1 h收集一次上清液測(cè)定黃酮的濃度,3種大孔樹(shù)脂在每個(gè)時(shí)間段的靜態(tài)解吸率見(jiàn)表5。運(yùn)用Excel軟件繪出3種樹(shù)脂的靜態(tài)解吸率曲線(xiàn)見(jiàn)圖3。由表5和圖3可知,3種樹(shù)脂的解吸平衡時(shí)間都在6 h左右,HPD-450、HPD-600和HPD-826型大孔吸附樹(shù)脂的解吸率分別是50%、70%和56%。

      3 小結(jié)與討論

      本研究首先通過(guò)正交優(yōu)化試驗(yàn),確定超聲波輔助乙醇提取的最佳試驗(yàn)條件為料液比l∶20,60%乙醇,溫度60 ℃,提取4 h。將處于生長(zhǎng)期的荷葉樣品分別進(jìn)行浸提,通過(guò)紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)檢測(cè),7、8、9月荷葉樣品黃酮含量分別為7.84、7.92、7.87 mg/g,平均含量為7.88 mg/g,此時(shí)黃酮得率為0.788%。

      采用HPD-450、HPD-600、HPD-826 3種大孔吸附樹(shù)脂進(jìn)行靜態(tài)吸附-解吸試驗(yàn),分析吸附量、吸附率和解吸率,結(jié)果表明,3種大孔吸附樹(shù)脂的吸附量和吸附率HPD-826>HPD-600>HPD-450,解吸率HPD-600>HPD-826>HPD-450。綜合3種大孔吸附樹(shù)脂的性能指標(biāo),HPD-826的吸附量最高,吸附平衡時(shí)間最短,而且解吸率適中,因此選取HPD-826型大孔吸附樹(shù)脂對(duì)荷葉黃酮純化精制。

      對(duì)HPD-826型大孔樹(shù)脂動(dòng)態(tài)吸附-解吸試驗(yàn)過(guò)程發(fā)現(xiàn),上清液的pH和溫度變化會(huì)影響荷葉黃酮與樹(shù)脂之間的吸附和解吸能力,大孔樹(shù)脂的吸附性隨著pH的增加先變大后減小,隨著溫度的增加變大。

      參考文獻(xiàn):

      [1] 楊冀艷,胡 磊,許 楊.荷葉黃酮類(lèi)化合物的研究進(jìn)展[J].食品科學(xué),2007,28(8):554-558.

      [2] 許金蓉.荷葉黃酮提取工藝及抗氧性研究[J].輕工科技,2014, 31(10):15-18.

      [3] 趙昕嵐,鄧放明.荷葉中總黃酮和荷葉堿含量變化規(guī)律[J].食品與機(jī)械,2013,29(2):37-40.

      [4] 張贇彬,戴妙妙,李彩俠.荷葉中黃酮類(lèi)化合物的化學(xué)結(jié)構(gòu)鑒定[J].食品研究與開(kāi)發(fā),2006,27(6):45.

      [5] ELEGAMI A A ,BATESC G,GRYAI H,et al. Two very unusual macrocylic flavonoids from water lilynymohaca lotus[J].Phytochemistry,2003,63(6):731.

      [6] 延 璽,劉會(huì)青,鄒永青,等. 黃酮類(lèi)化合物生理活性及合成研究進(jìn)展[J].有機(jī)化學(xué),2008,28(9):1534-1544.

      [7] 于智峰, 王 敏.大孔吸附樹(shù)酯在黃酮類(lèi)化合物分離中的應(yīng)用[J].中藥材,2006,29(12):1380-1382.

      [8] 劉 云,劉良燚,朱欣婷.D140型大孔樹(shù)脂純化荷葉總黃酮的研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,37(32):16163-16164.

      [9] 黃阿根,董瑞建,韋 紅,等.大孔樹(shù)脂對(duì)荷葉黃酮的分離純化[J].現(xiàn)代食品科技,2008,24(12):1202-1206.

      [10] 張 蕾,李梅香,吳秀玲,等.AB-8樹(shù)脂分離純化荷葉總黃酮的研究[J].食品研究與開(kāi)發(fā),2014,35(10):42-45.

      [11] 高 麗,王燕龍,熊云景,等.HPD-100大孔樹(shù)脂分離純化荷葉黃酮的研究[J].中國(guó)釀造,2012,31(8):127-129.

      (責(zé)任編輯 龍小玲)

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