鄭小嬌,張晶,張亞卓,史晨杉,王向紅
(河北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院,河北保定,071001)
氨苯砜(dapsone,DDS)俗稱二氨基二苯砜,雙氨基雙苯砜,分子式為C12H12N2O2S,相對分子質(zhì)量為248.30,為砜類抑菌劑,多用于麻風(fēng)病[1]和某些皮膚病的治療[2],對麻風(fēng)桿菌有較強(qiáng)的抑菌作用,大劑量使用時顯示殺菌作用。由于其作用機(jī)制與磺胺類藥物相似,兩者具有協(xié)同增效作用,在動物和水產(chǎn)養(yǎng)殖中常作為磺胺增效劑使用[3]。然而氨苯砜毒性較大,可將血紅蛋白氧化成沒有攜氧能力的高鐵血紅蛋白,引起血液系統(tǒng)反應(yīng),如高鐵血紅蛋白血癥和溶血性貧血[1-2,4],還可能造成粒細(xì)胞缺乏癥、周圍神經(jīng)炎、肝腎功能損害和精神障礙,嚴(yán)重者可致死亡[3],因此我國農(nóng)業(yè)部193號、235號公告明確規(guī)定禁止以任何形式在所有食品動物中使用,且在動物性食品中不得檢出[5];歐盟2377/90、37/2010也明確規(guī)定氨苯砜為禁用藥物[6-7]。
目前,國內(nèi)外關(guān)于食品中氨苯砜殘留檢測的報道較少,且多與磺胺類藥物同時檢測,研究方法主要有高效液相色譜法[8-9]和液質(zhì)聯(lián)用法[4,10-13]。儀器方法可以精確地進(jìn)行定量分析,但設(shè)備昂貴、操作復(fù)雜、對樣品純度要求較高、檢測成本高、周期長,只能用于小批量樣本抽檢,無法滿足食品安全檢測中對大批量樣本現(xiàn)場快速篩查的需要。而酶聯(lián)免疫吸附技術(shù)(ELISA)具有敏感度高、特異性強(qiáng)、快速簡便等優(yōu)點[14],適合于大批量動物源食品中氨苯砜殘留的篩選和定量檢測。因此,本研究采用重氮化法制備BSA-DDS人工抗原,免疫動物后獲得的多克隆抗體,建立了直接競爭酶聯(lián)免疫吸附(ELISA)的方法。
新西蘭大耳白兔(雄性),河北全友實驗動物養(yǎng)殖場;氨苯砜(DDS),德國Dr.Ehrenstorfer公司,含量98.5%;牛血清白蛋白(BSA),Sigma公司;弗氏完全佐劑、弗氏不完全佐劑,Sigma公司;辣根過氧化酶標(biāo)羊抗兔,北京索萊寶科技有限公司;NaNO2、Na2CO3、NaHCO3、NaH2PO4、Na2HPO4、NaCl(分析純),天津市科密歐試劑有限公司;
電子感量分析天平,北京賽多利斯儀器有限公司;UV-2802H型紫外可見分光光度計,上海尤尼克儀器有限公司;96孔酶標(biāo)板(Costar);酶標(biāo)儀(Thermo);洗板機(jī)(Thermo);8道微量移液器(BIOHIT);SK-1型渦旋混勻器,麒麟醫(yī)儀;SK5200H超聲儀,上??茖?dǎo)。
采用重氮化法將半抗原DDS與載體蛋白BSA相偶聯(lián),制備氨苯砜人工免疫抗原,合成路線見圖1。
圖1 免疫原BSA-DDS的合成路線Fig.1 Synthetic route of immunogen BSA-DDS
1.2.1 DDS重氮化
稱取6.4 mg氨苯砜,溶解于2 mL已預(yù)冷的0.l mol/L HCl中,用1 mol/L HCl調(diào)pH 值至1.5。4℃冰浴攪拌,慢慢滴加360 μL 10 mg/mL的NaNO2溶液。用KI淀粉試紙檢驗,直至試紙變?yōu)樯钭仙V梗?℃避光攪拌反應(yīng)30 min后,即得到重氮化的DDS溶液。
1.2.2 BSA-DDS合成
稱取10.4 mg BSA,溶于2 mL CBS(0.1 mol/L,pH=9.5)溶液中,將重氮化的DDS溶液慢慢滴加到BSA溶液中,隨時監(jiān)測pH值變化(保持pH為9.0~9.5),攪拌反應(yīng)2 h后將反應(yīng)液置于4℃,避光反應(yīng)18 h。反應(yīng)結(jié)束后,用PBS(0.01 moL/L,pH值7.2~7.4)在4℃冰箱中連續(xù)透析3 d,每天換液2~3次,分裝,-20℃保存待用。
采用過碘酸鈉法將DDS與HRP相連制備了酶標(biāo)抗原DDS-HRP。
以BSA-DDS為免疫抗原,首先將免疫抗原與弗氏完全佐劑等量充分乳化,以后加強(qiáng)免疫則用弗氏不完全佐劑,采用以1 mg/只的藥量背部皮下脊柱兩側(cè)多點(6~8點)注射,免疫健康新西蘭大耳白兔,獲得含有多克隆抗體的免疫血清。經(jīng)ProteinA-Sephros 4B過柱純化,得到兔源抗DDS的抗體,加入0.01%疊氮化鈉分裝,-20℃保存待用。
參照文獻(xiàn)[15]中的直接競爭ELISA操作方法,將抗體濃度稀釋為10 μg/mL,包被酶標(biāo)板12~14 h;將酶標(biāo)抗原(DDS-HRP)作一定倍數(shù)稀釋,將DDS標(biāo)準(zhǔn)品配成0.01、0.1、1、10、1 00、1 000 ng/mL 系列濃度做直接競爭ELISA,以DDS溶液濃度為橫坐標(biāo)(x),抑制率為縱坐標(biāo)(y),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.6.1 樣品的前處理
牛奶。取全奶10~15 mL置于聚苯乙烯離心管中,4℃,2 000 g離心15 min,棄掉上層脂肪層,用緩沖液稀釋10倍,混勻。
蜂蜜。稱取均質(zhì)試樣(1.0±0.001)g樣本至15 mL聚苯乙烯離心管中,先加1%氨水的乙腈溶液5 mL,漩渦混合2 min,超聲提取 5 min,4 000 r/min 室溫(20~25℃)離心5 min,棄去上層有機(jī)相(正己烷),用緩沖液稀釋5倍,混勻。
豬肉。稱取均質(zhì)試樣(1.0±0.001)g樣本至15 mL聚苯乙烯離心管中,先加1%氨水的乙腈溶液5 mL,然后加入2.5 mL正己烷,漩渦混合2 min,超聲提取5 min,4 000 r/min室溫(20~25℃)離心5 min,棄去上層有機(jī)相(正己烷),將提取液氮氣吹干,用緩沖液復(fù)溶,混勻。
雞蛋。稱取均質(zhì)試樣(1.0±0.001)g樣本至15 mL聚苯乙烯離心管中,先加1%氨水的乙腈溶液5 mL,漩渦混合2 min,超聲提取 5 min,4 000 r/min 室溫(20~25℃)離心5 min,棄去上層有機(jī)相(正己烷),將提取液氮氣吹干,用緩沖液復(fù)溶,混勻。
1.6.2 樣品回收率
向空白牛奶、蜂蜜、豬肉和雞蛋樣品中添加一定濃度的DDS標(biāo)準(zhǔn)品,按照1.6.1的方法進(jìn)行樣品預(yù)處理,直接競爭ELISA測定樣品中DDS濃度,每個樣品設(shè)5個重復(fù),計算回收率和變異系數(shù)。
以重氮化法制備了免疫原BSA-DDS,反應(yīng)過程中,偶氮后的DDS滴入BSA中時,顏色立刻變黃,最后成為橘紅色,透析和冷凍時顏色均未見褪減,初步推斷DDS與BSA結(jié)合成功。分別對BSA和BSADDS進(jìn)行SDS-PAGE電泳分析,根據(jù)電泳條帶的位置判斷BSA是否與DDS發(fā)生結(jié)合形成BSA-DDS(見圖2)。分別做BSA、DDS和偶聯(lián)物在200~500 nm的紫外吸收光譜圖,根據(jù)其紫外吸收光譜圖判定BSA是否與DDS發(fā)生結(jié)合形成BSA-DDS(見圖3)。由圖2可知,人工抗原BSA-DDS的遷移率比BSA電泳條帶的遷移率小。由于SDS-PAGE消除了樣品電荷對遷移率的影響,使得樣品的遷移率只與其分子量有關(guān)。分子質(zhì)量大的樣品遷移率小,分子質(zhì)量小的樣品遷移率大,則說明人工抗原BSA-DDS的分子質(zhì)量大于BSA,BSA-DDS人工抗原成功合成。由圖3可知,載體蛋白最高峰在280 nm左右處,DDS最高峰在290 nm左右,偶聯(lián)物最高峰在370 nm左右,DDS與載體BSA偶聯(lián)反應(yīng)后,其產(chǎn)物DDS-BSA的紫外吸收圖譜與載體蛋白BSA和DDS相比,最大吸收峰位置發(fā)生了位移且吸光值有所增加,這說明載體分子上已經(jīng)成功的連接了一定數(shù)量的半抗原,并根據(jù)文獻(xiàn)[16]推算出BSA-DDS偶聯(lián)比為1∶10。
將 DDS 標(biāo)準(zhǔn)品配成 0.01、0.1、1、10、100、1 000 ng/mL系列濃度做直接競爭ELISA,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(見圖5)擬合方程為:y=6.963Ln(x)+39.112(R2=0.981 7),IC50為 4.78 ng/mL,IC15可達(dá) 0.03 ng/mL,靈敏度較高。
圖2 BSA和BSA-DDS偶聯(lián)物的SDS-PAGE鑒定圖Fig.2 SDS-PAGE electrophoresis analysis of BSA and BSA-DDS
圖3 BSA,DDS,BSA-DDS紫外掃描光譜圖Fig.3 UV scanning spectrum of BSA,DDS and BSA-DDS
圖4 氨苯砜標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.4 Standard curve of dapsone
添加回收試驗結(jié)果見表1。在牛奶中添加25、50、100 μg/kg 的 DDS,蜂蜜、豬肉和雞蛋中添加 75、150、300 μg/kg的 DDS,回收率在75.45%~91.75%,變異系數(shù)1.79%~13.03%。
從氨苯砜(DDS)的結(jié)構(gòu)式可以看出來,DDS分子上攜帶2個氨基。其分子質(zhì)量小,結(jié)構(gòu)簡單,只有反應(yīng)原性而無免疫原性,因此必須與大分子物質(zhì)聯(lián)結(jié),制備成完全抗原,才能刺激動物機(jī)體產(chǎn)生免疫反應(yīng)。本實驗采用重氮化法進(jìn)行DDS與載體蛋白偶聯(lián),通過反應(yīng)過程中顏色變化初步斷偶聯(lián)成功,又經(jīng)過SDS-PAGE電泳分析載體BSA電泳條帶和人工抗原BSA-DDS的條帶遷移率大小,表明BSA-DDS人工抗原成功合成,最后進(jìn)行紫外圖譜分析在370 nm左右明顯可見偶聯(lián)物的最高峰形,載體蛋白最高峰在280 nm左右處,DDS在290 nm左右,偶聯(lián)物紫外掃描最高峰位置發(fā)生偏移,由此證明偶聯(lián)反應(yīng)成功。經(jīng)計算DDS與BSA的結(jié)合比為10∶1。一般認(rèn)為,半抗原與載體蛋白的結(jié)合比以8~25為宜。本試驗的免疫原結(jié)合比為10∶1,將制得的免疫原BSA-DDS免疫新西蘭大耳白得到多抗血清,純化后得到抗體,并建立了直接競爭ELISA方法。通過試驗表明,該檢測方法對牛奶、蜂蜜、豬肉和雞蛋的最低檢測限分別可達(dá)到0.05、0.07、0.06 和 0.07 ng/mL,通過多次試驗數(shù)據(jù)表明,該方法靈敏度高、穩(wěn)定性好并且具有ELISA檢測法微量、高效、經(jīng)濟(jì)和方便的特點,可用于動物源性食品中氨苯砜殘留的大批量、快速檢測。
表1 動物性食品中氨苯砜添加回收率和變異系數(shù)(n=5)Table 1 The recovery and RSD of DDS in spiked animal foods(n=5)
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