付珍珍,李 恒,李 會(huì),許正宏
(1.江南大學(xué) 生物工程學(xué)院,江蘇 無錫 214122;2.江南大學(xué) 藥學(xué)院,江蘇 無錫 214122)
Gibberella intermedia CA3-1羥基化去氫表雄酮的工藝
付珍珍1,李 恒2,李 會(huì)2,許正宏2
(1.江南大學(xué) 生物工程學(xué)院,江蘇 無錫 214122;2.江南大學(xué) 藥學(xué)院,江蘇 無錫 214122)
利用Gibberella intermedia CA3-1對甾體化合物去氫表雄酮(DHEA)進(jìn)行C7α-羥基化反應(yīng)研究。用單因素實(shí)驗(yàn)的方法考察接種量、裝液量、轉(zhuǎn)速、有機(jī)溶劑助溶、投料濃度以及底物投加時(shí)間對產(chǎn)物7α-羥基去氫表雄酮(7α-OH-DHEA)生成的影響。最終確定最適工藝條件:接種量6%,裝液量30 mL(250 mL三角瓶),轉(zhuǎn)速220 r/min,體積分?jǐn)?shù)6%丙二醇助溶,接種時(shí)即添加底物,底物DHEA質(zhì)量濃度1 g/L,轉(zhuǎn)化時(shí)間36 h。采用優(yōu)化后的轉(zhuǎn)化條件,7α-OH-DHEA摩爾得率為72.34%。
生物轉(zhuǎn)化;7α-羥基化;去氫表雄酮;甾體;Gibberella intermedia
自開展甾體化合物研究以來,甾體藥物在醫(yī)療領(lǐng)域的應(yīng)用范圍便不斷擴(kuò)大,被用于治療多種疾?。?]。其中,甾體化合物去氫表雄酮(DHEA)及其羥化物被證實(shí)具有重要的生理活性和藥理作用,是甾體藥物研究領(lǐng)域的重點(diǎn)。國外研究報(bào)道,DHEA及其代謝產(chǎn)物能夠促進(jìn)機(jī)體的免疫應(yīng)答[2]。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),DHEA的7α-羥基衍生物7α-OHDHEA具有抗氧化、抗腫瘤以及免疫調(diào)節(jié)等重要的藥理作用[3]。7-羥基甾體化合物已經(jīng)被證實(shí)對治療癌癥和阿爾茨海默病有一定療效,此外它還具有增強(qiáng)機(jī)體免疫功能、抗糖皮質(zhì)激素作用和促進(jìn)減肥的功效[4]。
微生物對甾體底物的羥基化反應(yīng)是利用微生物代謝過程中的某一種酶或一組酶對外源性化合物進(jìn)行催化反應(yīng)[5],具有立體選擇性、區(qū)域選擇性、反應(yīng)條件溫和、催化效率高、反應(yīng)類型多、污染環(huán)境小等特點(diǎn),在甾體的生物轉(zhuǎn)化中具有重要的地位和意義[6-7]。DHEA用Fusarium moniliforme和Mortierella isabellina AM212進(jìn)行生物羥化的產(chǎn)物是7α-OHDHEA和7β-OH-DHEA[8]。Romano等[9]也研究證實(shí)Colletotrichum lini可以同時(shí)使DHEA發(fā)生7α-和15α-羥基化。根據(jù)已報(bào)道的文獻(xiàn),DHEA最大投料質(zhì)量濃度為1 g/L,7α-OH-DHEA的最高收率為60.2%,且轉(zhuǎn)化周期為4 d[10]。篩選具有羥化DHEA生成7α-OH-DHEA的菌株,并且提高其底物添加濃度和轉(zhuǎn)化效率有重要的意義。
赤霉菌Gibberella intermedia CA3-1是筆者所在實(shí)驗(yàn)室篩選得到的具有羥化DHEA生成7α-OH-DHEA的菌株,但目前該菌株轉(zhuǎn)化能力仍然偏低。文中筆者對Gibberella intermedia CA3-1羥化DHEA生成7α-OHDHEA的條件進(jìn)行優(yōu)化,以期提高產(chǎn)物得率。
1.1 材料
1.1.1 菌種
赤霉菌Gibberella intermedia CA3-1由筆者所在實(shí)驗(yàn)室成員篩選得到,保藏在中國微生物菌種保藏管理委員會(huì)普通微生物中心,編號為CGMCC No.4903。
1.1.2 試劑
DHEA、7α-OH-DHEA均為分析純,由浙江仙居君業(yè)藥業(yè)有限公司提供;二甲基亞砜(DMSO)、N,N-二甲基甲酰胺(DMF)、乙醇、丙三醇、甲醇、丙二醇、丙酮,均為化學(xué)純,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑蘇州有限公司;乙腈,色譜純,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑蘇州有限公司;其他試劑為市售分析純。
1.1.3 培養(yǎng)基
斜面培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖5、酵母粉10、NaCl 5、KH2PO415、瓊脂20,pH 7.0。
種子培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖5、酵母粉10、NaCl 5、KH2PO415,pH 7.0。
轉(zhuǎn)化培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖15、酵母粉15、玉米漿2.0、NaCl 5,pH 6.5。
1.2 培養(yǎng)和轉(zhuǎn)化方法
1.2.1 種子培養(yǎng)
在500 mL三角瓶中加入50 mL培養(yǎng)液,121℃滅菌20 min,然后將活化后的菌種接入三角瓶,在30℃、220 r/min的恒溫?fù)u床上培養(yǎng)24 h。
1.2.2 菌體培養(yǎng)
在250 mL三角瓶中裝入30 mL培養(yǎng)液,121℃滅菌20 min,將種子液以體積分?jǐn)?shù)為4%接種量接種至發(fā)酵培養(yǎng)基中,在30℃、200 r/min的恒溫?fù)u床上培養(yǎng)24 h。
1.2.3 生物轉(zhuǎn)化
準(zhǔn)確稱取一定量的DHEA加入到已培養(yǎng)24 h的菌液中,或者將底物溶于不同的有機(jī)溶劑中,超聲5 min以加速底物的溶解,然后加入到已培養(yǎng)24 h的菌液中,在30℃、220 r/min的恒溫?fù)u床上轉(zhuǎn)化培養(yǎng)48 h,每隔一定時(shí)間取樣檢測轉(zhuǎn)化效果。
1.3 分析方法
1.3.1 質(zhì)譜分析
電離源電噴霧電離(ESI);毛細(xì)管電壓2.80 kV;錐空電壓40 V;源溫度110℃;脫溶劑溫度350℃。
1.3.2 高效液相色譜法[11]
取一定量發(fā)酵液,用等體積乙酸乙酯萃取4次,合并萃取液并烘干。用5倍體積的乙腈復(fù)溶,0.25 μm有機(jī)濾膜過濾,采用高效液相色譜(HPLC)進(jìn)行測定。對照標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算含量。測定條件:C18柱,流動(dòng)相 V(乙腈)∶V(水)=70∶30;流速為 0.5 mL/min;進(jìn)樣量為10 μL;柱溫為30℃。
1.3.3 計(jì)算方法
式中:ρ(產(chǎn)物)為液相測得的產(chǎn)物質(zhì)量濃度(g/L);ρ(底物)為投加的底物質(zhì)量濃度(g/L);M(底物)與M(產(chǎn)物)分別為底物與產(chǎn)物的摩爾質(zhì)量(g/mol)。
2.1 轉(zhuǎn)化產(chǎn)物分析
2.1.1 轉(zhuǎn)化產(chǎn)物高效液相色譜分析
赤霉菌Gibberella intermedia CA3-1對DHEA的轉(zhuǎn)化液高效液相檢測結(jié)果如圖1所示?;衔?為底物,1和2分別為轉(zhuǎn)化產(chǎn)物。圖2為產(chǎn)物標(biāo)準(zhǔn)品的高效液相檢測結(jié)果。由圖1和圖2可以看出,標(biāo)準(zhǔn)品和轉(zhuǎn)化產(chǎn)物2的保留時(shí)間一致,可以初步確定產(chǎn)物2為7α-OH-DHEA。
2.1.2 轉(zhuǎn)化產(chǎn)物質(zhì)譜分析
赤霉菌Gibberella intermedia CA3-1對DHEA的轉(zhuǎn)化液質(zhì)譜檢測結(jié)果如圖3所示。通過分析可得到結(jié)果:MS(ESI)m/z[2M+NH4]+626.3、[3M+NH4]+930.6。結(jié)果表明樣品的相對分子質(zhì)量為304.2,與7α-OH-DHEA(C19H28O3)的相對分子質(zhì)量一致。
加工食物吃太多:加工食物含有大量的添加劑,這些添加劑中的化學(xué)成分都需要依靠肝臟解毒代謝。如果長期攝入加工食物,無形中增加肝臟負(fù)擔(dān),容易引發(fā)慢性肝損傷。
圖1 Gibberella intermedia CA3-1轉(zhuǎn)化DHEA的產(chǎn)物高效液相色譜圖Fig.1 HPLC of transformation products of DHEA by Gibberella intermedia CA3-1
圖2 7α-OH-DHEA標(biāo)準(zhǔn)品的高效液相色譜圖Fig.2 HPLC of 7α-OH-DHEA standard
圖3 Gibberella intermedia CA3-1轉(zhuǎn)化DHEA產(chǎn)物的質(zhì)譜Fig.3 MS of transformation products of DHEA by Gibberella intermedia CA3-1
2.2 接種量對轉(zhuǎn)化的影響
選擇不同接種量進(jìn)行發(fā)酵培養(yǎng),研究其對轉(zhuǎn)化的影響,結(jié)果如圖4所示。由圖4可知:DHEA質(zhì)量濃度為 3 g/L、接種量為 6%時(shí),產(chǎn)物 7α-OHDHEA得率最高,為28.35%。在發(fā)酵過程中,接種量過大,生物量過大造成菌液黏稠,對轉(zhuǎn)化過程溶氧不利;接種量過小,菌體生長過慢,同樣不利于轉(zhuǎn)化[12],故最佳接種量為6%。
圖4 接種量對生物量及產(chǎn)物得率的影響Fig.4 Effects of inoculation amount on biomass of bacteria and product yield
2.3 裝液量和轉(zhuǎn)速對轉(zhuǎn)化的影響
圖5和圖6是裝液量和轉(zhuǎn)速對轉(zhuǎn)化的影響。由圖5和圖6可知,裝液量和轉(zhuǎn)速對7α-OH-DHEA的得率影響很大。250 mL三角瓶中裝液量為30 mL時(shí),產(chǎn)物得率最大。甾體羥化是一個(gè)耗氧過程[13],裝液量較多,溶氧下降,進(jìn)而導(dǎo)致轉(zhuǎn)化效果不佳。在一定范圍內(nèi),增加搖瓶轉(zhuǎn)速,溶氧水平相應(yīng)增加,可提高產(chǎn)物得率。在220 r/min時(shí),產(chǎn)物得率較高,達(dá)到30.22%,但繼續(xù)增加轉(zhuǎn)速,得率反而下降。轉(zhuǎn)速過大,菌體受到較強(qiáng)的剪切作用,不利于菌體的生長,生物量下降。所以,裝液量選擇為30 mL,轉(zhuǎn)速為220 r/min較佳。
圖5 裝液量對生物量及產(chǎn)物得率的影響Fig.5 Effects of liquid volume in flask on biomass of bacteria and product yield
2.4 底物助溶劑種類及添加量
2.4.1 底物助溶劑種類
甾體化合物DHEA在水中的溶解度很低[14],屬于微溶或難溶化合物,而甾體羥化酶屬于胞內(nèi)酶,底物只有通過擴(kuò)散進(jìn)入細(xì)胞才能與酶接觸,從而進(jìn)行轉(zhuǎn)化反應(yīng),這就限制了底物和胞內(nèi)羥化酶的有效接觸和反應(yīng)。甾體底物的難溶性對生物羥化反應(yīng)的速率和產(chǎn)物得率有重要的影響,是導(dǎo)致轉(zhuǎn)化效率偏低的重要原因之一。目前,在甾體生物轉(zhuǎn)化中常用添加助溶劑的方法提高底物在水相的濃度。本研究中筆者以有機(jī)溶劑對底物的溶解性以及其對菌體的毒性為依據(jù),選擇7種常用的有機(jī)助溶劑,包括DMSO、DMF、乙醇、丙三醇、甲醇、丙二醇和丙酮來提高底物DHEA在轉(zhuǎn)化液中的濃度和分散度,助溶劑對7α-OH-DHEA得率影響如圖7所示。由圖7可見:與對照相比,在菌液中加入體積分?jǐn)?shù)4%的助溶劑丙二醇后,產(chǎn)物得率有明顯提高,故選擇丙二醇作為最佳助溶劑。
圖6 搖床轉(zhuǎn)速對生物量及產(chǎn)物得率的影響Fig.6 Effects of rotation speed on biomass of bacteria and product yield
圖7 不同有機(jī)助溶劑對產(chǎn)物得率的影響Fig.7 Effects of different organic solvents on product yield
助溶劑的加入量控制至關(guān)重要,考察丙二醇的添加濃度對7α-OH-DHEA得率的影響,結(jié)果如圖8所示。由圖8可知:丙二醇體積分?jǐn)?shù)由2%增至6%,產(chǎn)物 7α-OH-DHEA得率由 35%增加到42.12%,但過高濃度的丙二醇會(huì)對菌體生長產(chǎn)生影響,抑制細(xì)胞中羥化酶的活性,導(dǎo)致產(chǎn)物得率明顯降低。因此,丙二醇的體積分?jǐn)?shù)應(yīng)控制在6%。
圖8 丙二醇體積分?jǐn)?shù)對產(chǎn)物得率的影響Fig.8 Effects of propylene glycol concentrations on product yield
2.5 投料濃度對轉(zhuǎn)化的影響
底物DHEA加入量過少會(huì)導(dǎo)致微生物的羥化能力得不到充分利用,增加生物轉(zhuǎn)化的批次和成本,而過高濃度的底物對菌體有一定的毒害性,影響菌體正常的生長和代謝,導(dǎo)致菌體對底物的轉(zhuǎn)化能力下降,故需要選擇最適的底物添加濃度[15]。投料濃度對轉(zhuǎn)化的影響如圖9所示。由圖9可知,7α-OH-DHEA得率隨底物濃度的增加而顯著降低,底物質(zhì)量濃度較低時(shí)(1 g/L),產(chǎn)物得率最高,達(dá)56.78%。
圖9 底物投料質(zhì)量濃度對產(chǎn)物得率的影響Fig.9 Effects of substrate mass concentrations on product yield
2.6 底物投加時(shí)間對轉(zhuǎn)化的影響
羥化酶為誘導(dǎo)酶,能被底物誘導(dǎo),故底物的添加時(shí)間往往對轉(zhuǎn)化效果產(chǎn)生顯著影響[16]。
因此,分別在赤霉菌生長不同時(shí)期加入底物,轉(zhuǎn)化過程取樣檢測,以轉(zhuǎn)化過程中的最高得率作為此條件下的產(chǎn)物得率,結(jié)果如表1所示(表中轉(zhuǎn)化周期指接種到轉(zhuǎn)化結(jié)束的時(shí)間)。由表1可知:在0 h時(shí),即菌體開始培養(yǎng)時(shí)添加質(zhì)量濃度為1 g/L的底物,轉(zhuǎn)化36 h,此時(shí)產(chǎn)物得率最大,達(dá)到72.34%,高于初始條件下菌體培養(yǎng)24 h時(shí)添加底物。在該條件下既能對羥化酶進(jìn)行預(yù)誘導(dǎo),得到最高產(chǎn)物得率,同時(shí)也減少菌體培養(yǎng)時(shí)間,從而縮短了整個(gè)轉(zhuǎn)化周期,且菌體培養(yǎng)和轉(zhuǎn)化時(shí)間均短于文獻(xiàn)報(bào)道水平[10]。
表1 底物投加時(shí)間對產(chǎn)物得率的影響Table 1 Effects of feeding time on product yield
2.7 轉(zhuǎn)化過程分析
在最佳工藝條件下,對 Gibberella intermedia CA3-1轉(zhuǎn)化DHEA的過程進(jìn)行分析,結(jié)果如圖10所示。由圖10可知:轉(zhuǎn)化產(chǎn)物主要在對數(shù)生長期后期至穩(wěn)定期快速生成,在36 h時(shí),摩爾產(chǎn)物得率達(dá)到最高(72.34%);轉(zhuǎn)化36 h后產(chǎn)物得率開始快速下降,分析其原因是由于產(chǎn)物繼續(xù)被轉(zhuǎn)化為其他副產(chǎn)物。因此,轉(zhuǎn)化時(shí)間控制在36 h利于目的產(chǎn)物的生成。
圖10 Gibberella intermedia CA3-1轉(zhuǎn)化DHEA的過程曲線Fig.10 Process curves of DHEA transformation by Gibberella intermedia CA3-1
通過單因素試驗(yàn)探討了接種量、裝液量、轉(zhuǎn)速、有機(jī)溶劑助溶、投料濃度以及底物投加時(shí)間對產(chǎn)物7α-OH-DHEA生成的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn):6%接種量、裝液量30 mL(250 mL三角瓶)、轉(zhuǎn)速220 r/min、底物質(zhì)量濃度1 g/L條件下,用體積分?jǐn)?shù)6%丙二醇助溶,菌體開始培養(yǎng)時(shí)即投入底物,轉(zhuǎn)化時(shí)間36 h,此時(shí)產(chǎn)物收率最高,達(dá)到72.34%,高于文獻(xiàn)報(bào)道水平。作為 1株高羥化能力的新菌株,Gibberella intermedia CA3-1的培養(yǎng)時(shí)間和轉(zhuǎn)化周期短、投料工藝簡單、菌體形態(tài)均勻、副產(chǎn)物易分離,為工業(yè)化生產(chǎn)奠定了基礎(chǔ)。然而,對于工藝的溶料方式及添加因子、放大條件等因素還有待進(jìn)一步確定和優(yōu)化。
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(責(zé)任編輯 管 珺)
C7α-hydroxylation of dehydroepiandrosterone by Gibberella intermedia CA3-1
FU Zhenzhen1,LI Heng2,LI Hui2,XU Zhenghong2
(1.School of Biotechnology,Jiangnan University,Wuxi 214122,China;2.School of Pharmaceutical Sciences,Jiangnan University,Wuxi 214122,China)
We studied enzymatic C7-hydroxylation of dehydroepiandrosterone(DHEA)by Gibberella intermedia CA3-1.The single factor experiment was applied to determine the optimal fermentation conditions with the conversion rate of C7-hydroxylation as the criterion.The optimal biotransformation conditions were as follows:inoculation amount 6%(V/V),medium volume 30 mL(per 250 mL flask),rotation speed 220 r/min,DHEA concentration 1 g/L,co-solvent propylene glycol(6%,V/V),adding substrate at the same time with inoculation,and biotransformation time 36 h.The molar yield of 7α-OHDHEA from substrate DHEA was 72.34%.
biotransformation;7α-hydroxylation;dehydroepiandrosterone;steroid;Gibberella intermedia
TQ920.6
A
1672-3678(2015)01-0001-05
10.3969/j.issn.1672-3678.2015.01.001
2013-12-10
國家高技術(shù)研究發(fā)展計(jì)劃(863計(jì)劃)(2011AA02A211);國家自然科學(xué)基金(21206055);江蘇省自然科學(xué)基金(BK2012127)
付珍珍(1989—),女,湖北宜昌人,碩士研究生,研究方向:發(fā)酵工程;李 會(huì)(聯(lián)系人),副教授,E-mail:lihui@jiangnan.edu.cn