土壤強(qiáng)還原過(guò)程產(chǎn)生的有機(jī)酸對(duì)土傳病原菌的抑制作用

黃新琦, 溫 騰, 孟 磊, 張金波, 蔡祖聰*

(1.南京師范大學(xué)地理科學(xué)學(xué)院,南京 210023;2.江蘇省物質(zhì)循環(huán)與污染控制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,南京 210023;3.海南大學(xué)農(nóng)學(xué)院,?？?570228)

土壤強(qiáng)還原過(guò)程產(chǎn)生的有機(jī)酸對(duì)土傳病原菌的抑制作用

黃新琦1,2, 溫 騰1, 孟 磊3, 張金波1,2, 蔡祖聰1,2*

(1.南京師范大學(xué)地理科學(xué)學(xué)院,南京 210023;2.江蘇省物質(zhì)循環(huán)與污染控制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,南京 210023;3.海南大學(xué)農(nóng)學(xué)院,?？?570228)

土壤強(qiáng)還原(reductive soil disinfestation,RSD)能有效殺滅土傳病原菌,并已在日本、荷蘭和美國(guó)取得一系列的推廣應(yīng)用,但對(duì)于RSD的殺菌機(jī)理不甚明了。本試驗(yàn)采用高效液相色譜和熒光定量PCR等技術(shù)研究了以玉米秸稈為有機(jī)碳源的RSD處理過(guò)程中土壤產(chǎn)生的有機(jī)酸種類(lèi),以及不同濃度的有機(jī)酸對(duì)土壤病原菌的抑制效果。結(jié)果表明：以玉米秸稈為有機(jī)碳源的RSD過(guò)程中主要產(chǎn)生了乙酸和丁酸;經(jīng)50 mmol/L丁酸溶液處理的土壤中立枯絲核菌、辣椒疫霉、尖孢鐮刀菌及茄勞爾氏菌的數(shù)量分別為對(duì)照的3.5%、38.9%、11.5%和7.9%;10 mmol/L的丁酸可以完全抑制尖孢鐮刀菌菌絲的生長(zhǎng);5 mmol/L的丁酸即可完全抑制尖孢鐮刀菌的孢子萌發(fā)。本研究結(jié)合前人報(bào)道表明有機(jī)酸,尤其是乙酸和丁酸,對(duì)于RSD的殺菌機(jī)理起著重要的作用。

土傳病害; 乙酸; 丁酸; 尖孢鐮刀菌

土傳病害是指由存在于土壤中的病原微生物在條件適宜時(shí)萌發(fā)并侵染植物而導(dǎo)致的病害[1]。大量的研究表明,在環(huán)境條件相對(duì)不變的條件下,隨著土壤病原菌數(shù)量的增加,作物土傳病害的發(fā)生呈上升趨勢(shì)[2-3]。因此,能否有效地降低土壤中病原菌的數(shù)量是防控土傳病害取得成功的關(guān)鍵因素。目前生產(chǎn)上主要通過(guò)使用化學(xué)殺菌劑[4]以及一些物理的土壤消毒方法,如暴曬、深翻、淹水等[5],來(lái)降低病土中植物病原菌的數(shù)量。但由于人們?nèi)找嬖黾拥氖称钒踩檻],許多化學(xué)殺菌劑已不再被允許使用;傳統(tǒng)土壤消毒方法也由于成本較高、防治效果差或者環(huán)保上的原因不能進(jìn)行推廣[6]。因此,迫切需要尋找替代的土壤消毒方法來(lái)降低連作土壤中植物病原菌的數(shù)量。

在2000年,日本和荷蘭相繼獨(dú)立發(fā)明了土壤強(qiáng)還原法(reductive soil disinfestation,RSD)來(lái)降低土壤中病原菌數(shù)量及防控作物土傳病害[78]。RSD由向土壤中添加易分解的有機(jī)物料并保持土壤厭氧狀態(tài)組成。盡管此方法在日本、荷蘭和美國(guó)進(jìn)行了一系列的推廣應(yīng)用[9],但人們對(duì)于RSD的殺菌機(jī)理仍不甚明了[10]。許多研究表明RSD過(guò)程中產(chǎn)生的有機(jī)酸,尤其是乙酸和丁酸,可能起到殺菌的效果[10],本試驗(yàn)在此基礎(chǔ)上研究了RSD過(guò)程中是否能產(chǎn)生除乙酸和丁酸之外的抑菌有機(jī)酸,以及這些有機(jī)酸的不同濃度對(duì)于多種土壤病原微生物的抑制效果。

1 材料與方法

1.1 材料

供試土壤：試驗(yàn)土壤采自江蘇省宜興市多年種植水稻地塊,采回后經(jīng)暴曬、風(fēng)干和過(guò)篩后備用。供試有機(jī)物料：收集采摘后的玉米秸稈地上部,充分晾干,打碎,C/N為45.7。

供試菌株：尖孢鐮刀菌古巴專(zhuān)化型(Fusarium ox ysporum f.sp.cubense)N21菌株由本實(shí)驗(yàn)室分離純化;立枯絲核菌(Rhizoctonia solani)Q1、茄勞爾氏菌(Ralstonia solanacearum)2010、辣椒疫霉(Phytophthora capsici)MXL1由南京農(nóng)業(yè)大學(xué)資源與環(huán)境學(xué)院提供。

選擇性培養(yǎng)基：尖孢鐮刀菌選擇性培養(yǎng)基(K2培養(yǎng)基)[11]：K2HPO41 g、KCl 0.5 g、MgSO4· 7H2O 0.5 g、Fe-Na-EDTA 0.01 g、L-天門(mén)冬酰胺2 g、半乳糖10 g、瓊脂16 g,去離子水定容至900 m L,高壓滅菌后冷卻至60℃,加入100 m L鹽溶液(75%五氯硝基苯0.9 g、牛膽鹽0.45 g、Na2B4O7· 10 H2O 0.5 g、硫酸鏈霉素0.3 g,用10%磷酸調(diào)p H至3.8±0.2)。M-SMSA培養(yǎng)基[12]：水解酪蛋白1 g,蛋白胨10 g,甘油5 m L,瓊脂20 g,蒸餾水1 L。p H 6.5,121℃高壓滅菌15 min,冷卻至50℃每升加入以下成分：結(jié)晶紫5 mg、多黏菌素B硫酸鹽100 mg、桿菌肽25 mg、氯霉素5 mg、青霉素5 mg、2,3,5-三苯基四氮50 mg、放線菌酮100 mg。燕麥培養(yǎng)基[13]：燕麥片30 g,煮沸30 min后過(guò)濾去除雜質(zhì),瓊脂20 g,蒸餾水補(bǔ)足至1 000 m L,121℃高壓滅菌20 min,冷卻后加入利福平20 mg、氨芐青霉素200 mg、70%五氯硝基苯100 mg。

1.2 病原菌的制備

按文獻(xiàn)報(bào)道[14],將真菌性病原菌(尖孢鐮刀菌、立枯絲核菌和辣椒疫霉)活化后轉(zhuǎn)接到裝有100 m L馬鈴薯蔗糖培養(yǎng)基的500 m L三角瓶中,靜置培養(yǎng)7 d,取出洗凈后放入均質(zhì)儀中打碎。將細(xì)菌性病原菌(茄勞爾氏菌)活化后轉(zhuǎn)接至牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基中,30℃170 r/min振蕩培養(yǎng)2 d,將菌懸液7 000 g離心10 min,棄去上清,將菌體重懸于0.5%的生理鹽水中。最終將真菌性病原菌以1 kg土1.5 g菌絲鮮重的濃度、細(xì)菌性病原菌以1 g土106cfu的濃度均勻拌入上述準(zhǔn)備好的水稻土中。

1.3 抑菌有機(jī)酸的篩選

根據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道[15],選擇乙酸、丁酸、順丁烯二酸、異戊酸、乳酸、檸檬酸、丙酸和蟻酸這8種有機(jī)酸進(jìn)行篩選試驗(yàn)。將50 m L濃度為50 mmol/L的有機(jī)酸溶液倒入裝有50 g病土的250 m L三角瓶中,封口后將三角瓶放置在25℃的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)5 d,分別以加5 m L和50 m L去離子水的裝有相等土量的三角瓶為好氧(CK1)和厭氧(CK2)對(duì)照,每個(gè)處理3個(gè)重復(fù)。培養(yǎng)結(jié)束后采用K2培養(yǎng)基對(duì)土壤中的尖孢鐮刀菌進(jìn)行平板涂布計(jì)數(shù)。

1.4 RSD過(guò)程中產(chǎn)有機(jī)酸種類(lèi)的鑒定

將150 g拌有玉米秸稈(1%,W/W)的病土裝入圓柱形的容器(內(nèi)徑5 cm,高15 cm)中,然后加入75 mL去離子水,末端密封,將土柱置于25℃的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)10 d。以未混有玉米秸稈的病土為對(duì)照,每個(gè)處理3個(gè)重復(fù)。培養(yǎng)結(jié)束后,用土壤溶液采樣器采集土壤溶液,過(guò)0.45μm濾膜后4℃保存?zhèn)溆谩?/p>

使用高效液相色譜(HPLC)測(cè)定土壤溶液中的有機(jī)酸。HPLC采用XDB-C18柱(4.6×250 mm, Agilent,USA),并以2.5 mmol/L H2SO4(A)和甲醇(B)為流動(dòng)相。梯度洗脫步驟為：0 min,95%A +5%B;5 min,95%A+5%B;8 min,85%A+ 15%;40 min,85%A+15%B。流速為1 m L/min,紫外檢測(cè)波長(zhǎng)為210 nm。

1.5 不同濃度有機(jī)酸對(duì)病原菌數(shù)量的抑制試驗(yàn)

將50 mL不同濃度的有機(jī)酸溶液加入裝有50 g病土的250 m L三角瓶中,置于25℃的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)5 d,以去離子水作為對(duì)照,每個(gè)處理3個(gè)重復(fù)。培養(yǎng)結(jié)束后通過(guò)平板稀釋涂布計(jì)數(shù)法檢測(cè)土壤中茄勞爾氏菌(M-SMSA培養(yǎng)基)和辣椒疫霉(燕麥培養(yǎng)基)的數(shù)量。采用熒光定量PCR檢測(cè)立枯絲核菌和尖孢鐮刀菌的數(shù)量,土壤DNA的提取采用Power-Soil?DNA提取試劑盒(MO-BIO,美國(guó)),熒光定量PCR反應(yīng)體系和反應(yīng)條件參照文獻(xiàn)[14,16],立枯絲核菌和尖孢鐮刀菌的特異性引物分別為ST-RS1(F) 5'-AGTGTTATGCTTGGTTCCACT-3',ITS4(R)5'-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3'和ITS1-F(F)5'-CTTGGTCATTTAGAGGAAGTAA-3',AFP308(R) 5'-CGAATTAACGCGAGTCCCAAC-3'。

1.6 有機(jī)酸對(duì)尖孢鐮刀菌孢子萌發(fā)和菌絲生長(zhǎng)的影響

將活化后的尖孢鐮刀菌菌絲塊(直徑5 mm)轉(zhuǎn)接至含稀釋4倍的馬鈴薯蔗糖培養(yǎng)基(potato dextrose agar,PDA)的平板中間,25℃培養(yǎng)1 d,然后在距菌絲中心3 cm的位置放置牛津杯,在牛津杯里加入100 mmol/L有機(jī)酸,25℃再培養(yǎng)2 d后觀察菌落形態(tài)。1/4 PDA培養(yǎng)基熔化冷卻后加入過(guò)濾除菌的有機(jī)酸,混合均勻倒平板,制備含不同濃度不同種類(lèi)有機(jī)酸的1/4 PDA平板,將活化后的尖孢鐮刀菌菌絲塊轉(zhuǎn)接至上述1/4 PDA平板中間,25℃培養(yǎng)3 d后測(cè)定菌落直徑。參照文獻(xiàn)[17]制備尖孢鐮刀菌孢子懸浮液,使其濃度為每毫升小于1 000個(gè)孢子。在含有不同濃度有機(jī)酸的2%水瓊脂平板上涂布0.1 m L上述孢子懸浮液,平板置于培養(yǎng)箱中25℃培養(yǎng)3 d,統(tǒng)計(jì)平板上萌發(fā)的孢子數(shù)。

1.7 數(shù)據(jù)處理

試驗(yàn)數(shù)據(jù)處理使用Excel 2003和SPSS 13.0 (SPSS Inc.,Chicago,USA)統(tǒng)計(jì)分析軟件。

2 結(jié)果與分析

2.1 抑制尖孢鐮刀菌有機(jī)酸的篩選

本研究參照文獻(xiàn)報(bào)道選擇了RSD過(guò)程中可能產(chǎn)生的8種有機(jī)酸,檢測(cè)其對(duì)土壤中尖孢鐮刀菌數(shù)量的影響。結(jié)果表明(圖1)：乙酸、丙酸、丁酸和異戊酸能顯著降低土壤中尖孢鐮刀菌的數(shù)量,其中異戊酸對(duì)病原菌的抑制作用最強(qiáng),加入50 mmol/L異戊酸溶液的土壤中尖孢鐮刀菌數(shù)量?jī)H為對(duì)照(CK2)的7.4%;乙酸和丁酸次之,加入50 mmol/L乙酸和丁酸溶液的土壤中尖孢鐮刀菌數(shù)量分別為對(duì)照(CK2)的16.2%和11.5%;丙酸的抑制作用最弱。相較而言,另4種有機(jī)酸對(duì)于尖孢鐮刀菌并無(wú)抑制作用,與CK2相比,加入順丁烯二酸、乳酸、檸檬酸和蟻酸溶液的土壤中尖孢鐮刀菌數(shù)量反而顯著增加。

圖1 土壤中添加50 mmol/L不同種類(lèi)有機(jī)酸處理5 d后的尖孢鐮刀菌數(shù)量Fig.1 The population of Fusarium oxysporum in the soil after treated with 50 mmol/L different organic acids solutions for 5 days

2.2 RSD過(guò)程中產(chǎn)生有機(jī)酸種類(lèi)的鑒定

土壤溶液HPLC測(cè)定結(jié)果(圖2)表明,添加1%玉米秸稈并持續(xù)淹水10 d的土壤中產(chǎn)生了大量的乙酸和丁酸,此外還有少量的丙酸,而并未檢測(cè)到異戊酸。在只淹水未添加有機(jī)物料的土壤溶液中沒(méi)有檢測(cè)到有機(jī)酸。

圖2 HPLC測(cè)定RSD處理的土壤溶液中的有機(jī)酸種類(lèi)圖譜Fig.2 Identification of organic acids in the soil treated by RSD using HPLC

2.3 有機(jī)酸對(duì)于土壤中病原菌數(shù)量的影響

不同濃度的4種抑菌有機(jī)酸對(duì)病原菌數(shù)量影響試驗(yàn)結(jié)果(圖3)表明：4種有機(jī)酸都能顯著降低土壤中立枯絲核菌、辣椒疫霉、尖孢鐮刀菌及茄勞爾氏菌的數(shù)量(P＜0.05),其中,立枯絲核菌、尖孢鐮刀菌及茄勞爾氏菌數(shù)量降幅較大。在這4種有機(jī)酸中,異戊酸對(duì)于病原菌的抑制作用最強(qiáng),乙酸和丁酸次之,丙酸最弱;并且隨著有機(jī)酸濃度的增加,對(duì)病原菌的抑制作用呈上升趨勢(shì)。加入50 mmol/L異戊酸溶液的土壤中立枯絲核菌、辣椒疫霉、尖孢鐮刀菌及茄勞爾氏菌的數(shù)量分別為對(duì)照(添加去離子水的病土)的3.1%、25.7%、5.2%和4.4%;加入50 mmol/L丁酸溶液的土壤中立枯絲核菌、辣椒疫霉、尖孢鐮刀菌及茄勞爾氏菌的數(shù)量分別為對(duì)照的3.5%、38.9%、11.5%和7.9%。

圖3 經(jīng)不同濃度4種有機(jī)酸溶液處理后土壤中不同植物病原菌數(shù)量的變化Fig.3 Change of the populations of different plant pathogens in the soils treated with four kinds of toxic organic acid solutions with different concentrations

2.4 有機(jī)酸對(duì)尖孢鐮刀菌孢子萌發(fā)和菌絲生長(zhǎng)的影響

如圖4所示,4種有機(jī)酸均能顯著抑制尖孢鐮刀菌的菌絲生長(zhǎng)和孢子萌發(fā),并且抑制作用隨著有機(jī)酸濃度的增加而增強(qiáng)。其中丁酸和異戊酸對(duì)尖孢鐮刀菌的抑制作用較強(qiáng);10 mmol/L的丁酸和異戊酸可以完全抑制尖孢鐮刀菌的菌絲生長(zhǎng);5 mmol/L丁酸和異戊酸即可完全抑制尖孢鐮刀菌的孢子萌發(fā)。

圖4 含有不同濃度4種有機(jī)酸的1/4 PDA培養(yǎng)基對(duì)尖孢鐮刀菌菌絲生長(zhǎng)和孢子萌發(fā)的影響Fig.4 Influences of 1/4 PDA medium with different concentrations of the four toxic organic acids on the mycelium growth and the spore germination of Fusarium oxysporum

此外,在牛津杯試驗(yàn)中(圖5)可以明顯觀察到4種有機(jī)酸抑制尖孢鐮刀菌菌絲生長(zhǎng)而使其形成橢圓形的菌落。

圖5 牛津杯試驗(yàn)測(cè)定不同種類(lèi)有機(jī)酸(100 mmol/L)對(duì)尖孢鐮刀菌菌絲生長(zhǎng)的抑制作用Fig.5 Determination of the inhibitory effect of different organic acids(100 mmol/L)on the growth of Fusarium oxysporum mycelia using Oxford cups

3 討論

RSD已被許多研究證實(shí)是一種可以降低土壤病原真菌及線蟲(chóng)數(shù)量的有效技術(shù)[910,18]。隨后許多研究結(jié)果,如RSD處理過(guò)程中土壤p H下降及有機(jī)酸產(chǎn)生菌,如梭菌屬(Clostridium spp.)的出現(xiàn)等,表明RSD過(guò)程中產(chǎn)生的有機(jī)酸可能是RSD具有殺菌效果的重要原因[19]。這些有機(jī)酸可能有乙酸、丁酸、順丁烯二酸、異戊酸、乳酸、檸檬酸、丙酸和蟻酸[15]。本試驗(yàn)結(jié)果表明,乙酸、丙酸、丁酸和異戊酸可以顯著降低土壤病原菌數(shù)量。隨后對(duì)RSD過(guò)程中土壤溶液的HPLC測(cè)定結(jié)果表明,以玉米秸稈為有機(jī)碳源的RSD處理過(guò)程中產(chǎn)生了大量的乙酸和丁酸,此外還有少量的丙酸。Momma等在以乙醇為有機(jī)碳源的RSD中檢測(cè)到了大量的乙酸[20],還有報(bào)道指出以麥麩或葡萄糖為碳源的RSD處理的土壤中產(chǎn)生了乙酸和丁酸[19,21]。這些研究表明了不論是何種有機(jī)物料,乙酸和丁酸是RSD處理過(guò)程中產(chǎn)生的主要抑菌有機(jī)酸。此外,順丁烯二酸、乳酸、檸檬酸和蟻酸顯著增加了土壤中病原菌數(shù)量,原因可能是這4種有機(jī)酸為病原菌提供了營(yíng)養(yǎng),促進(jìn)了病原菌的生長(zhǎng)。

Goud等使用RSD法防控大麗輪枝菌(Verticillium dahliae)引起的梓樹(shù)黃萎病[22],Messiha等使用RSD法防控茄勞爾氏菌引起的土豆青枯病[23],Yossen等使用RSD法防控尖孢鐮刀菌引起的康乃馨枯萎病[24],這些研究表明RSD是一種廣譜性的殺滅土壤病原菌進(jìn)而防控土傳病害的有效方法。本研究結(jié)果同樣表明,RSD過(guò)程中產(chǎn)生的有機(jī)酸對(duì)多種土傳病原菌(茄勞爾氏菌、立枯絲核菌、尖孢鐮刀菌、辣椒疫霉)具有殺滅效果,50 mmol/L的乙酸和丁酸處理過(guò)的土壤中這4種病原菌的數(shù)量分別為對(duì)照的5.9%、3.5%、11.7%、33.9%和7.9%、3.6%、11.5%、38.9%。Momma等報(bào)道指出在以乙醇為有機(jī)碳源的RSD處理土壤中可以產(chǎn)生約3 000 mg/L(50 mmol/ L)的乙酸,在以麥麩為有機(jī)碳源的RSD處理土壤中可以產(chǎn)生約2 000 mg/L(33 mmol/L)的乙酸和1 700 mg/L(19 mmol/L)的丁酸[1920],這些報(bào)道結(jié)合本研究結(jié)果表明,RSD過(guò)程中產(chǎn)生的有機(jī)酸對(duì)于RSD的殺菌效果起著重要的作用。此外,較低濃度的有機(jī)酸也可對(duì)病原菌起抑制作用,如10 mmol/L的丁酸可以完全抑制尖孢鐮刀菌菌絲的生長(zhǎng);5 mmol/L的丁酸能夠不可逆地抑制尖孢鐮刀菌的孢子萌發(fā),此結(jié)果與前人報(bào)道相似,即經(jīng)約10 mmol/L的丁酸溶液處理后的尖孢鐮刀菌分生孢子不能復(fù)蘇[19]。本研究豐富了RSD的殺菌機(jī)理,明確了RSD過(guò)程中產(chǎn)生的主要有機(jī)酸的種類(lèi)及不同濃度的有機(jī)酸對(duì)土壤病原微生物的抑制效果,盡管如此,我們并不能排除RSD過(guò)程中還產(chǎn)生了除有機(jī)酸以外的殺菌物質(zhì)的可能性,如鐵錳離子、氨氣和硫化氫[15]等,還有待進(jìn)一步研究。

[1] 李世東,繆作清,高衛(wèi)東.我國(guó)農(nóng)林園藝作物土傳病害發(fā)生和防治現(xiàn)狀及對(duì)策分析[J].中國(guó)生物防治學(xué)報(bào),2011,27(4)：433-440.

[2] 何欣,黃啟為,楊興明,等.香蕉枯萎病致病菌篩選及致病菌濃度對(duì)香蕉枯萎病的影響[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,43(18)：3809-3816.

[3] Chinn S H F,Sallans B J,Ledingham R J.Spore populations of Helminthosporium sativum in soils in relation to the occurrence of common rootrot of wheat[J].Canadian Journal of Plant Science,1962,42(4)：720-727.

[4] Oka Y.Mechanisms of nematode suppression by organic soil amendments—A review[J].Applied Soil Ecology,2010,44 (2)：101-115.

[5] Katan J.Physical and cultural methods for the management of soilborne pathogens[J].Crop Protection,2000,19(8/10)：725-731.

[6] Li Weiming,Qian Chenmei,Mo Yiwei,et al.Tolerance of banana for Fusarium wilt is associated with early H2O2accumulation in the roots[J].African Journal of Biotechnology, 2011,10(55)：11378-11387.

[7] Blok W J,Lamers J G,Termorshuizen A J,et al.Control of soilborne plant pathogens by incorporating fresh organic amendments followed by tarping[J].Phytopathology,2000, 90(3)：253-259.

[8] Shinmura A.Causal agent and control of root rot of welsh onion [C].PSJ Soilborne Disease Workshop Report,2000,20：133-143.

[9] Butler D M,Kokalis-Burelle N,Muramoto J,et al.Impact of anaerobic soil disinfestation combined with soil solarization on plant-parasitic nematodes and introduced inoculum of soilborne plant pathogens in raised-bed vegetable production[J].Crop Protection,2012,39：33-40.

[10]Momma N,Kobara Y,Uematsu S,et al.Development of biological soil disinfestations in Japan[J].Applied Microbiology and Biotechnology,2013,97(9)：3801-3809.

[11]Sun E J,Su H J,Ko W H.Identification of Fusarium oxysporum f.sp.cubense Race 4 from soil or host tissue by cultural characters[J].Phytopathology,1978,68(11)：1672-1673.

[12]French E R,Gutarra L,Aley P,et al.Culture media for Ralstonia solanacearum isolation,identification and maintenance [J].Fitopatolgia,1995,30(3)：126-130.

[13]朱桂寧,黃福新,秦碧霞,等.致病疫霉的分離培養(yǎng)和單孢純化方法[J].中國(guó)蔬菜,2003(6)：41-42.

[14]Huang Xingqi,Zhang Nan,Yong Xiaoyu,et al.Biocontrol of Rhizoctonia solani damping-off disease in cucumber with Bacillus pumilus SQR-N43[J].Microbiological Research,2012, 167(3)：135-143.

[15]Runia W T,Molendijk L P G.Physical methods for soil disinfestation in intensive agriculture：Old methods and new approaches[J].Acta Horticulturae,2010,883：249-258.

[16]趙爽,羅佳,凌寧,等.基因宏陣列和熒光定量PCR方法對(duì)西瓜枯萎病害土壤中尖孢鐮刀菌的快速檢測(cè)和定量[J].土壤學(xué)報(bào),2010,47(4)：703-708.

[17]Ling Ning,Huang Qiwei,Guo Shiwei,et al.Paenibacillus polymyxa SQR-21 systemically affects root exudates of watermelon to decrease the conidial germination of Fusarium oxysporum f.sp.niveum[J].Plant and Soil 2011,341(1/2)：485-493.

[18]Katase M,Kubo C,Ushio S,et al.Nematicidal activity of volatile fatty acids generated from wheat bran in reductive soil disinfestation[J].Nematology Reasearch,2009,39(2)：53-62.

[19]Momma N,Yamamoto K,Simandi P,et al.Role of organic acids in the mechanisms of biological soil disinfestation(BSD) [J].Journal of General Plant Pathology,2006,72(4)：247-252.

[20]Momma N,Kobara Y,Momma M.Fe2+and Mn2+,potential agents to induce suppression of Fusarium oxysporum for biological soil disinfestation[J].Journal of General Plant Pathology,2011,77 (6)：331-335.

[21]Okazaki H,Nose K.Acetic acid and n-butyric acid as causal agents of fungicidal activity of glucose-amended flooded soil[J]. Annals of the Phytopathological Society of Japan,1986,52 (3)：384-393.

[22]Goud J K C,Termorshuizen A J,Blok W J,et al.Long-term effect of biological soil disinfestation on Verticillium wilt[J]. Plant Disease,2004,88(7)：688-694.

[23]Messiha N A S,van Diepeningen A D,Wenneker M,et al.Biological Soil Disinfestation(BSD),a new control method for potato brown rot,caused by Ralstonia solanacearum race 3 biovar 2[J].European Journal of Plant Pathology,2007,117 (4)：403-415.

[24]Yossen V,Zumelzu G,Gasoni L,et al.Effect of soil reductive sterilisation on Fusarium wilt in greenhouse carnation in Córdoba,Argentina[J].Australasian Plant Pathology,2008, 37(5)：520-522.

(責(zé)任編輯：田 喆)

Inhibitory effects of organic acids produced in reductive soil disinfestation on soil-borne plant pathogens

Huang Xinqi1,2, Wen Teng1, Meng Lei3, Zhang Jinbo1,2, Cai Zucong1,2

(1.School of Geography Science,Nanjing Normal University,Nanjing 210023,China; 2.Jiangsu Provincial Key Laboratory of Materials Cycling and Pollution Control,Nanjing 210023,China; 3.College of Agriculture,Hainan University,Haikou 570228,China)

Reductive soil disinfestation(RSD)is an effective way to suppress soil-borne plant pathogens.Although it is increasingly used in USA,Netherlands and Japan,its precise mechanism has not been well elucidated so far. High performance liquid chromatography and quantitative real-time PCR were used for investigating the organic acids produced in maize straw amended RSD and the inhibitory effect of organic acids on the soilborne pathogens in this work.The results showed that acetic acid and butyric acid were the primary compounds produced in maize straw amended RSD.The populations of Rhizoctonia solani,Phytophthora capsici,Fusarium oxysporum and Ralstonia solanacearum in the diseased soil treated by 50 mmol/L butyric acid solution decreased by 96.5%,61.1%, 88.5%and 82.1%,respectively,compared with those in non-treated diseased soil.The growth of F.oxysporum mycelium was completely stopped in 1/4 potato dextrose agar medium containing 5 mmol/L butyric acid,and 5 mmol/L butyric acid could entirely inhibit the germination of F.oxysporum spores.This work together with previous reports indicated that organic acids,especially acetic and butyric acid,played an important role in the mechanism of RSD.

soil-borne disease; acetic acid; butyric acid; Fusarium oxysporum

S 432.4

A

10.3969/j.issn.0529-1542.2015.06.006

2014-09-05

201411-04

國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(41301335);高等學(xué)校博士學(xué)科點(diǎn)專(zhuān)項(xiàng)科研基金(20133207120018);中國(guó)博士后科學(xué)基金(2014M551622);江蘇高校優(yōu)勢(shì)學(xué)科建設(shè)工程

*通信作者 E-mail：zccai@njnu.edu.cn