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    蛇床子素對神經(jīng)干細胞體外分化的影響*

    2015-06-27 05:55:17李少恒胡昱姚瓔珈教亞男孔亮楊青平陶震宇楊靜嫻
    醫(yī)藥導報 2015年7期
    關鍵詞:蛇床子膠質(zhì)干細胞

    李少恒,胡昱,姚瓔珈,教亞男,孔亮,楊青平,陶震宇,楊靜嫻

    (遼寧中醫(yī)藥大學研究生院,大連 116600)

    蛇床子素對神經(jīng)干細胞體外分化的影響*

    李少恒,胡昱,姚瓔珈,教亞男,孔亮,楊青平,陶震宇,楊靜嫻

    (遼寧中醫(yī)藥大學研究生院,大連 116600)

    目的 探討蛇床子素(Ost)對神經(jīng)干細胞(NSCs)分化的影響及機制。方法 體外分離并培養(yǎng)新生小鼠腦源NSCs,免疫細胞化學法鑒定;取第5代NSCs置于含不同濃度(0,10,50,100 μmol·L-1)Ost的分化培養(yǎng)液中,免疫熒光細胞化學法檢測NSCs分化為神經(jīng)元、星形膠質(zhì)細胞和少突膠質(zhì)細胞情況;RT-PCR檢測Notch 1基因及其靶基因Mash 1和Neurogenin 2(Ngn2)表達情況。結(jié)果 免疫熒光細胞化學法顯示神經(jīng)球顯Nestin/Sox2陽性,即所培養(yǎng)的細胞為NSCs;Ost可促進NSCs更多地向神經(jīng)元(P<0.01)和少突膠質(zhì)細胞(P<0.05)分化,而非星形膠質(zhì)細胞。Ost可減少Notch 1(P<0.01)并增加Ngn 2(P<0.01)mRNA表達,其中以Ost 100 μmol·L-1組最明顯。結(jié)論 Ost可促使NSCs更多地向神經(jīng)元和少突膠質(zhì)細胞分化,其機制可能與Ost抑制Notch信號通路有關。

    蛇床子素;神經(jīng)干細胞;分化;Notch信號通路

    神經(jīng)干細胞(neural stem cells,NSCs)是一種具有自我更新能力和多向分化潛能的干細胞,可分化成神經(jīng)元、星形膠質(zhì)細胞和少突膠質(zhì)細胞[1]。隨著技術(shù)的發(fā)展,NSCs移植治療中樞退行性疾病受到研究者關注,其中最基礎的是NSCs在體外的增殖和分化。蛇床子素(osthole,Ost)是從傘形科植物獨活和蛇床子等中提取分離出來的香豆素類化合物[2-3]。研究證明,Ost具有抗腫瘤[4]、抗肝炎[5]和抗炎[6]等多種藥理活性。明磊國等[7]發(fā)現(xiàn)Ost對骨髓基質(zhì)干細胞成骨性分化有一定影響,但對NSCs的分化是否有影響筆者較少見到報道。筆者在本實驗中給予NSCs不同濃度Ost,觀察NSCs分化情況,觀察Ost對NSCs分化的影響和作用機制。

    1 材料與方法

    1.1 動物 清潔級昆明種小鼠,購于大連醫(yī)科大學實驗動物中心,實驗動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(遼):2008-0002。孕鼠飼養(yǎng)環(huán)境為每籠1只,室溫(23±2) ℃,給予自來水以及鼠糧(遼寧長生生物技術(shù)有限公司),光照與黑暗時間比例為7:5,待生產(chǎn)后取新生48 h內(nèi)小鼠用于實驗。

    1.2 試藥 Ost(7-methoxy-8-isopentenoxycoumarin,C15H16O3)購于中國食品藥品檢定研究院(批號:110822-200705),溶于二甲亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO,Sigma公司,批號:302A035),終濃度<0.01%,用DMEM/F12(Dulbecco's modified eagle medium:nutrient mixture F-12 ,Gibco公司,批號:8114303)培養(yǎng)液配成各濃度待用。胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS,Gibco公司),青-鏈霉素(penicillin-streptomycin,P/S,Thermo公司,批號:J140031),一抗分別為巢蛋白(Nestin,Millipore公司)、Sox2(Invitrogen公司)、神經(jīng)元核抗原(neuronal nuclei ,NeuN)一抗(Millipore公司)、膠質(zhì)纖維酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein,GFAP,北京博奧森生物公司)、NG2(Upstate公司);二抗分別為Cy3標記羊抗小鼠IgG(Jackson公司)、Cy3標記驢抗兔IgG(Jackson公司)、異硫氰酸熒光素(fluorescein isothiocyanate,F(xiàn)ITC)標記驢抗兔IgG(Jackson公司);4',6-二脒基-2-苯基吲哚(4',6-diamidino-2-phenylindole,DAPI)染液(Sigma公司),RevertAidTM First Strand cDNA Synthesis Kit試劑盒(Thermo公司),PCR Master Mix Kit試劑盒(Thermo公司)。

    1.3 儀器 倒置熒光生物顯微鏡(NIB-100F,寧波永新光學股份有限公司),超低溫冰箱(DIV-86L386,青島海爾股份有限公司),二氧化碳(CO2)培養(yǎng)箱(BPN,NUAIRE), PCR儀(MG96G,杭州朗基科學儀器有限公司),凝膠成像系統(tǒng)(Gene Genius,UVP,上海天能科技有限公司)。

    1.4 NSCs的分離、培養(yǎng)與鑒定 取新生(48 h內(nèi))小鼠大腦并分離海馬和側(cè)腦室下區(qū),剪碎并用0.05%胰蛋白酶于37 ℃消化15 min,終止消化后經(jīng)篩網(wǎng)過濾,得到細胞懸液。細胞懸液以5×106個·mL-1接種于經(jīng)多聚賴氨酸包被過的24孔板中,加入含有20 ng·mL-1表皮生長因大(epidermal growth factor,EGF)、20 ng·mL-1堿性成纖維細胞生長固(basic fibroblast growth factor,bFGF)、2%B27和1%P/S的DMEM/F12培養(yǎng)液,置于37 ℃,5% CO2-95% 空氣培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。每隔3 d換液一次,7 d后取出細胞球,機械吹打為單細胞進行傳代培養(yǎng),取對數(shù)生長期細胞用于以下實驗。取第5代神經(jīng)球打散為單細胞,用抗小鼠Nestin抗體和Sox2抗體進行免疫熒光細胞化學染色,顯微鏡下進行檢測鑒定[8-9]。

    1.5 免疫熒光細胞化學法檢測NSCs分化能力 將第5代NSCs以5×106個·mL-1的密度置于96孔板含有不同濃度(0,10,50,100 μmol·L-1)Ost的DMEM/F12完全分化培養(yǎng)液(含有10% FBS和1% P/S 的DMEM/F12培養(yǎng)液)中培養(yǎng),每孔100 μL,并相應分為對照組(control組)、Ost 10 μmol·L-1組、Ost 50 μmol·L-1組、Ost 100 μmol·L-1組[10]。7 d后,用免疫熒光細胞化學染色法鑒定分化細胞中神經(jīng)元、星形膠質(zhì)細胞和少突膠質(zhì)細胞的特異性蛋白表達[11],重復3次。

    1.6 RT-PCR檢測Notch及其靶基因表達 將對照組、Ost 10 μmol·L-1組、Ost 50 μmol·L-1組、Ost 100 μmol·L-1組NSCs以5×106個·mL-1密度置于6孔板含有DMEM/F12完全分化培養(yǎng)液中,每孔4 mL。Trizol 法提取上述4組RNA,按照RevertAidTM First Strand cDNA Synthesis Kit合成cDNA;按照PCR Master Mix Kit 所示比例構(gòu)建PCR反應。Notch通路相關基因序列見表1。反應條件:預變性95 ℃ 2 min;變形95 ℃ 30 s,退火(Tm-5)℃ 30 s,延伸72 ℃ 1 min,擴增40個循環(huán);終延伸72 ℃ 5 min。以β-actin 作為內(nèi)參。結(jié)果用瓊脂糖凝膠電泳及凝膠成像系統(tǒng)分析,Image J圖像分析軟件對條帶進行吸光度掃描,結(jié)果用相對吸光度表示,相對吸光度=吸光度目的基因/吸光度β-actin,重復3次。

    表1 Notch通路相關基因序列

    2 結(jié)果

    2.1 NSCs的培養(yǎng)與鑒定 第5代NSCs在增殖培養(yǎng)基中逐漸變大成球,經(jīng)免疫熒光細胞化學法染色神經(jīng)球呈Nestin/Sox2陽性,核藍色(圖1A、B、C)。經(jīng)過多次傳代,原代神經(jīng)球形成新的神經(jīng)球,第2~18代神經(jīng)球無顯著差異(圖1D、E)。

    2.2 Ost對NSCs分化的影響 見圖2A。經(jīng)免疫熒光染色檢測,NSCs形成3種不同類型神經(jīng)細胞:神經(jīng)元(NeuN陽性)、少突膠質(zhì)細胞(NG2陽性)和星形膠質(zhì)細胞(GFAP陽性),均為紅色,核為藍色。定量分析顯示,Ost100 μmol·L-1組NeuN陽性細胞率31.9%,模型對照組17.4%(t=4.699,P<0.01);Ost100 μmol·L-1組NG2陽性細胞率17.2%,模型對照組9.3%(t=2.841,P<0.05)(圖2B)。提示Ost可促進NSCs向神經(jīng)元和少突膠質(zhì)細胞分化。

    2.3 Ost調(diào)節(jié)NSCs內(nèi)Notch通路相關基因的表達 見圖3。RT-PCR結(jié)果顯示,Ost 100 μmol·L-1組相對吸光度0.382,模型對照組0.822(t=4.625,P<0.01);Ost 100 μmol·L-1組Ngn2相對吸光度0.934,模型對照組0.268(t=8.291,P<0.01)。說明Ost顯著減少Notch1 mRNA表達并且增強Ngn 2 mRNA表達,但是其對Mash mRNA的表達無顯著改變。

    A.光鏡下典型神經(jīng)球;B.Nestin/Sox2 (綠色/紅色) 免疫熒光雙染神經(jīng)球;C.DAPI (藍色) 染色細胞核;D、E.光鏡下圖像顯示從第2到第18代培養(yǎng)的神經(jīng)球

    圖1 免疫熒光鑒定(×40)以及傳代擴增的神經(jīng)球(×20)

    A.typical neurosphere under the microscope;B.Neurosphere was immunostained with antibodies against nestin (green) and Sox2 (red);C. Nuclei was stained by DAPI (blue);D,E.Neurospheres at 2nd passage and 5th passage under the microscope

    Fig.1 Neurospheres (×40) identified by immunofluorescence and amplifiable neurospheres after passaged(×20)

    神經(jīng)干細胞分化為NeuN陽性神經(jīng)元(A)、GFAP陽性星形膠質(zhì)細胞(B)和NG2陽性少突膠質(zhì)細胞(C),DAPI染核;D.不同濃度Ost對NSCs 分化為3種細胞的百分比;與模型對照組比較,*1P<0.05,*2P<0.01

    圖2 Ost對NSCs分化程度百分比比較

    NSCs differentiated into NeuN+ neurons(A), GFAP+ astrocytes, NG2+ oligodendrocyte precursors(C), Nuclei were stained with DAPI;D.Percentages of three cells by different concentrations of Ost; Compared with the model control group,*1P<0.05,*2P<0.01

    Fig.2 Differentiation percentage of NSCs by Ost

    3 討論

    自從REYONDS等[12]從成年小鼠的紋狀體中獲得能不斷增殖的NSCs后,NSCs就受到關注[13]。由于NSCs具有自我更新及多向分化潛能,使其有可能成為治療中樞退行性疾病的一種有效手段[14]。然而,對NSCs的增殖和分化進行有效調(diào)控是需要面對的首要問題。

    A.RT-PCR檢測NSCs中Notch 1,Mash 1和Ngn 2 mRNA的表達(β-actin作為內(nèi)參);B.Image J 檢測并比較Notch 1,Math 1和Ngn 2 mRNA 的表達;與模型對照組比較,*1P<0.01,*2P<0.05

    圖3 4組細胞中Notch 1及其靶基因mRNA表達的比較

    A.mRNA expressions of Notch 1 and its target genes Math 1 and Ngn 2 were assessed by RT-PCR, normalized with β-actin internal control;B.The mRNA expressions were assessed and compared by Image J;Compared with the model control group,*1P<0.01,*2P<0.05

    Fig.3 Compared with the mRNA expression of Notch 1 and its target genes among four groups of cells

    Notch基因由MORGAN等在果蠅中發(fā)現(xiàn),因其部分喪失功能性突變在果蠅翅的邊緣造成缺口而得名。研究表明,動物中相鄰細胞可通過Notch受體傳遞信號,調(diào)節(jié)增殖、分化及凋亡等過程,影響器官的形成及形態(tài)的發(fā)生[15]。有證據(jù)表明細胞表面的Notch 1可被相鄰細胞表面的配體激活,經(jīng)蛋白水解后的活化形式(NICD)釋放入核內(nèi),并與其上的CSL DNA結(jié)合蛋白結(jié)合形成復合物,激活Hes等靶基因產(chǎn)生轉(zhuǎn)錄因子。后者通過抑制堿性螺旋-環(huán)-螺旋轉(zhuǎn)錄因子(basic helix-loop-helix-domain,bHLH)家族與神經(jīng)產(chǎn)生的相關基因如Mash 1、Neurogenin 2等的轉(zhuǎn)錄,體現(xiàn)“旁側(cè)抑制”,進而抑制細胞分化,維持NSCs的原始狀態(tài)[16-18]。

    本實驗按照YANG等[11]介紹的方法成功培養(yǎng)NSCs,經(jīng)鑒定該細胞為實驗所需要的NSCs。在此基礎上,筆者加入不同濃度Ost來觀察其分化情況,發(fā)現(xiàn)Ost能使NSCs更多地向神經(jīng)元和少突膠質(zhì)細胞分化并與濃度呈正相關。為此筆者還研究了在NSCs分化過程中Ost對Notch 1及其靶基因Mash 1和Ngn 2的作用。結(jié)果發(fā)現(xiàn)Ost能使Notch 1表達下降,Ngn 2表達上升,提示Ost可能通過抑制Notch信號通路來促使NSCs向神經(jīng)元和少突膠質(zhì)細胞分化,其作用機制有待進一步研究。

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    DOI 10.3870/yydb.2015.07.003

    Effects of Osthole on Differentiation of Neural Stem Cellsinvitro

    LI Shaoheng,HU Yu,YAO Yingjia,JIAO Yanan,KONG Liang,YANG Qingping,TAO Zhenyu,YANG Jingxian

    (GraduateSchool,LiaoningUniversityofTraditionalChineseMedicine,Dalian116600,China)

    Objective To investigate the effects of osthole on neural stem cells (NSCs) differentiation and explore the potential mechanism. Methods Brain-derived NSCs from newborn mice were isolated and culturedinvitroand determined by immunofluorescence.The P5 generations of NSCs were placed in culture solution with osthole at concentrations of (0,10,50,100 μmol·L-1).The neuron, astrocyte and oligodendroglia cell differentiation were determined by immunofluorescence.The mRNA expression of Notch 1 and its target genes Mash 1 and Neurogenin 2 were assessed by RT-PCR. Results The neurosphere displayed Nestin and Sox 2-postive by immunofluorescence, suggesting that the cultured cells were NSCs.Osthole promoted NSCs differentiating into more neuron(P<0.01) and oligodendrocyte(P<0.05), but not astrocyte.Meanwhile, osthole significantly reduced the mRNA expression of Notch 1(P<0.01) and increased Ngn 2(P<0.01)at the dose of 100 μmol·L-1. Conclusion Osthole enhances NSCs differentiating into more neuron and oligodendrocyte via probablly inhibiting Notch signal pathway.

    Osthole;Neural stem cells;Differentiation;Notch signal pathway

    2014-07-05

    2014-08-12

    *國家自然科學基金資助項目(81173580);國家自然科學基金國際合作交流項目(81210108050);沈陽市科技專項資金項目(F11-264-1-42)

    李少恒(1992-),男,黑龍江鶴崗人,在讀碩士,專業(yè)方向:中藥藥理學。E-mail:lsh199242@163.com。

    楊靜嫻(1963-),女,遼寧大連人,教授,博士,從事神經(jīng)藥理學研究。電話:0411-87586009,E-mail:jingxianyang@yahoo.com。

    R285.5;R965

    A

    1004-0781(2015)07-0856-05

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