小分子苦瓜多糖MCPⅡa的純化及結(jié)構(gòu)分析

陳紅漫,郭龍偉,章少在,劉姜曼,張海彥,闞國仕

(沈陽農(nóng)業(yè)大學生物科學技術(shù)學院,遼寧 沈陽 110866)

小分子苦瓜多糖MCPⅡa的純化及結(jié)構(gòu)分析

陳紅漫,郭龍偉,章少在,劉姜曼,張海彥,闞國仕*

(沈陽農(nóng)業(yè)大學生物科學技術(shù)學院,遼寧 沈陽 110866)

利用酶解結(jié)合水溶醇沉提取水溶性的苦瓜多糖（Momordica charantia polysaccharide，MCP），經(jīng)Sevag法除蛋白、DEAE-纖維素離子交換、Sephadex G-100凝膠過濾獲得活性多糖MCPⅡa。由高效凝膠滲透色譜檢測可知MCPⅡa為均一多糖，平均分子質(zhì)量為13.0 kD，單糖組分分析顯示其單糖組成為鼠李糖、半乳糖醛酸、半乳糖、木糖和阿拉伯糖（各組分物質(zhì)的量比為12∶3.05∶19.89∶5.95∶56）。傅里葉紅外光譜、核磁共振及剛果紅實驗發(fā)現(xiàn)其存在C1、C2、C3、C5連接，在水溶液中具有穩(wěn)定的β-三股螺旋構(gòu)象，掃描電鏡下顯示其為菱形晶體顆粒。

苦瓜；多糖；分離純化；結(jié)構(gòu)特征

近年來，由于多糖類化合物的重要生物學活性如免疫、抗氧化、降血糖及降血脂等，其研究受到了國內(nèi)外學者的青睞[1]。隨著多糖研究技術(shù)迅速改進和完善，國際科學界視多糖的研究為生命科學的前沿領(lǐng)域?？喙希∕omordica charantia）為葫蘆科（Curcubitaceae）苦瓜屬植物，廣泛分布于熱帶、亞熱帶地區(qū)，不僅有良好的食用價值，而且在亞洲許多國家和地區(qū)均有降脂和降糖的入藥記載[2-5]。目前研究[6-7]表明，苦瓜有顯著的降血糖作用，其重要活性成分之一是苦瓜多糖?？喙隙嗵悄軌驕p弱和改善鏈脲霉素對胰島β-細胞的損傷，并提高糖尿病小鼠的葡萄糖耐量與肝糖原含量，說明其有益于緩解糖尿病癥狀及促進肝糖原合成或抑制肝糖原降解而發(fā)揮降糖作用[8]。本實驗室前期研究表明，具有抗氧化活性的水溶苦瓜多糖（Momordica charantia polysaccharide， MCP）Ⅱa能夠顯著降低由四氧嘧啶誘導(dǎo)的小鼠血糖升高[9-10]。然而，盡管苦瓜多糖降血糖活性相關(guān)報道較多，但大都集中于分離提取方法、抗氧化活性、動物學實驗等[11-12]，其活性結(jié)構(gòu)的生物學信息尚不清晰，因而限制了其作為血糖功能性食品的應(yīng)用研究。本實驗以層析等分離純化技術(shù)明確苦瓜多糖降血糖活性組分，并利用高效凝膠滲透色譜（high performance gel permeation chromatography，HPGPC）結(jié)合高效液相色譜（high performance liquid chromatograph y，HPLC）、紅外光譜、核磁共振（nuclear magnetic resonance，NMR）、剛果紅實驗、掃描電鏡觀察等方法對其平均分子質(zhì)量范圍、單糖組成、糖苷鍵構(gòu)型、高級結(jié)構(gòu)、樣貌特征等進行解析，為開發(fā)新型天然降糖活性藥物及苦瓜資源的深加工利用提供重要的理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

鮮苦瓜 市售；纖維素酶、DEAE-52、Sephadex G-100、標準單糖:甘露糖、鼠李糖、葡萄糖醛酸、半乳糖醛酸、葡萄糖、半乳糖、木糖、阿拉伯糖、巖藻糖美國Sigma公司。

1.2 儀器與設(shè)備

Sorvall高速冷凍離心機 凱特試驗儀器公司；LGJ-10型冷凍干燥機 北京四環(huán)科學儀器廠；UNIC7200型可見分光光度計、UNIC9100型紫外-可見分光光度計尤尼柯（上海）儀器有限公司；Nexus670FT-IR紅外光譜儀 美國Nicolet公司；DRX-400核磁共振儀 美國Brüker公司；2410示差折光檢測器、515型高效液相色譜儀、515型凝膠色譜儀 美國Waters公司；SU1510型掃描電子顯微鏡 日本日立公司。

1.3 方法

1.3.1 MCP的制備

將鮮苦瓜切片后于50 ℃烘箱內(nèi)烘干，粉碎成干粉，稱取苦瓜干粉10 g，加入40 倍水，30 mg纖維素酶，50 ℃條件下浸提5 h。收集提取液，離心，上清液再減壓濃縮至原體積的1/3，加入3 倍體積的體積分數(shù)95%乙醇溶液，靜置過夜后離心。將沉淀冷凍干燥后用蒸餾水復(fù)溶，采用Sevag法脫蛋白，至游離蛋白質(zhì)完全去除，濃縮、醇沉、洗滌、真空冷凍干燥，得淡黃色粗MCP 0.76 g。

稱取MCP 600 mg溶于20 mL蒸餾水，高速離心后取上清液，過DEAE-52纖維素柱層析，依次用0.1、0.3、0.5、0.7 mol/L NaCl溶液洗脫分部收集，苯酚-硫酸法檢測，繪制洗脫曲線。合并洗脫高峰部分，減壓濃縮、透析、冷凍干燥，得各部分MCP。

稱取0.1 mol/L NaCl溶液洗脫下的多糖組分（MCPⅡ）50 mg溶于10 mL蒸餾水，高速離心后取上清液，于室溫條件下進行Sephadex G-100柱層析，0.05 mol/L NaCl溶液洗脫，苯酚-硫酸法跟蹤檢測。合并單一高峰部分，減壓濃縮、透析、高速離心、冷凍干燥，得白色MCP純品（MCPⅡa）21.17 mg。

1.3.2 MCPⅡa紫外光譜分析

將冷凍干燥后的MCPⅡa樣品配制成質(zhì)量濃度0.5 mg/mL溶液，在波長200～400 nm處紫外掃描，掃描間距為1 nm。

1.3.3 MCPⅡa平均分子質(zhì)量測定

取10 mg MCPⅡa溶于1 mL超純水中，采用HPGPC法分析。色譜柱:UltharydorgelTMLinear凝膠柱（7.8 mm id ×30.0 cm）；流動相:超純水；洗脫流速:1 mL/min；柱溫:50 ℃；樣品與標準品進樣量各20 ?L。根據(jù)HPGPC的洗脫峰形確定純度，由標準多糖Dextran T-2000、T-500、T-70、T-10、T-5（分子質(zhì)量分別為2 000、500、70、10、5 kD）的分子質(zhì)量對數(shù)與保留時間制得標準曲線，由標準曲線及GPC軟件計算樣品平均分子質(zhì)量。

1.3.4 MCPⅡa單糖組成分析

稱取10 mg樣品，加入2 mol/L三氟乙酸溶液2 mL，120 ℃條件下密封水解1 h，減壓濃縮。取減壓蒸干的多糖樣品分別依次加入0.5 mol/L的（1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮）-甲醇溶液0.5 mL和0.3 mol/L NaOH溶液1 mL，混勻，70 ℃反應(yīng)30 min。待冷卻至室溫，用0.3 mol/L鹽酸溶液1 mL中和。減壓蒸干，然后再溶解于1 mL水中，加入2 mL氯仿萃取，離心，吸棄下層溶液，同法重復(fù)操作2 次。取上層水相，用0.45 μm微孔濾膜過濾，取濾液供HPLC進樣分析。

供HPLC檢測分析同時，用經(jīng)1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮衍生化后的標準單糖作參照。HPLC檢測條件: SunFireTMC18色譜柱（4.6 mm id×25.0 cm）；示差折光檢測器；柱溫26 ℃；流動相:V（乙腈）∶V（水）= 80∶20；檢測波長254 nm；進樣體積20 μL。

1.3.5 MCPⅡa紅外光譜分析

取冷凍干燥后的MCPⅡa 1 mg與300 mg干燥的KBr混勻，研磨，壓片，于紅外光譜儀波數(shù)400～4 000 cm-1中紅外區(qū)掃描，測定透光率。

1.3.6 剛果紅實驗

配制質(zhì)量濃度為0.5 mg/mL的多糖樣品溶液，8.39×10-4mol/L的剛果紅溶液，濃度分別為0～0.5 mol/L NaOH溶液，取1 mL的樣品溶液加入1 mL剛果紅溶液、2 mL NaOH溶液，混勻，室溫條件下靜置15 min，于波長400～600 nm處進行光譜掃描，記錄剛果紅在不同濃度NaOH溶液中的最大吸收波長。

1.3.7 NMR分析

精密稱取充分干燥的MCPⅡa 15 mg，溶于0.5 mL重水中，冷凍干燥，如此重復(fù)用重水交換3 次，再溶于0.5 mL重水后，用微孔濾膜（0.45 μm）濾過后在DRX-400 NMR儀上進行13C-NMR分析。

1.3.8 掃描電鏡實驗

將適量樣品溶于超純水中，取1～2 滴溶液滴于蓋玻片上，置于30 ℃烘箱內(nèi)烘干備用。將蓋玻片粘于樣品臺，噴金后，在高真空模式下觀察樣品表面形貌。

2 結(jié)果與分析

2.1 MCPⅡa的紫外掃描分析

MCPⅡa脫蛋白后其水溶液在紫外-可見光波長200～400 nm范圍內(nèi)掃描顯示，經(jīng)脫蛋白后，在波長260 nm（核酸的特征吸收峰）和波長280 nm處（蛋白的特征吸收峰）吸收峰不明顯，說明MCPⅡa中幾乎不含有蛋白質(zhì)和核酸（圖1）。

2.2 MCPⅡa純度和平均分子質(zhì)量

標準曲線線性回歸方程為:lgMw=-0.119 0tR+ 8.479 6，式中:Mw為平均分子質(zhì)量/kD；tR為保留時間/min；相關(guān)系數(shù)R2為0.997 3。根據(jù)線性回歸方程計算得MCPⅡa的平均分子質(zhì)量為13 kD。圖2中色譜峰形單一，均勻?qū)ΨQ，可確認MCPⅡa為均一多糖。

2.3 MCPⅡa的單糖組成分析

經(jīng)HPLC分析后，用面積歸一化法得MCPⅡa的單糖組成及其物質(zhì)的量比為鼠李糖∶半乳糖醛酸∶半乳糖∶木糖∶阿拉伯糖=12∶3.05∶19.89∶5.95∶56，色譜圖見圖3。

2.4 MCPⅡa的紅外光譜分析

從圖4可以看出，3 420.4 cm-1處的強吸收峰是糖分子中O—H鍵的伸縮振動吸收。2 922.2 cm-1處的吸收峰是—CH2—次甲基的C—H伸縮振動引起的。在1 736.4 cm-1處出現(xiàn)了甲氧酯基的—C＝O伸縮振動的吸收峰。1 419.9 cm-1處的吸收峰是C—O伸縮振動引起的[13]。1 384.1 cm-1處吸收峰是＝CH2的變形吸收峰。1 247.4 cm-1處的吸收峰是C—H的變角振動。在1 100 cm-1與1 010 cm-1之間的吸收峰（1 072.2 cm-1），提示中可能含有吡喃糖[14]。894.1 cm-1處的吸收峰是β-D-吡喃葡萄糖的特征吸收峰[15]。620.8 cm-1為吡喃型糖環(huán)特征吸收峰。由以上分析，可推知該多糖組分含有β-D-吡喃糖環(huán)，分子以β-糖苷鍵連接。

2.513C-NMR圖譜分析

對于13C-NMR圖譜，α型的化學位移為δ 97～101，β型的化學位移為δ 103～105。由圖5分析可知，MCPⅡa糖鏈主要是β構(gòu)型（δC104.92），有少量為α構(gòu)型（δC99.61）。δ 170～180范圍的低場信號δC176.31反映有己糖醛酸的羧基或乙?；拇嬖凇＆?90～112為異頭碳（C1）的共振區(qū)，糖端基碳化學位移的信號區(qū)。一般還原末端的C1出現(xiàn)在δ 90～98間，取代碳水化合物的C1（非還原單糖）出現(xiàn)在δ 98～112，據(jù)此可推斷多糖的聚合程度。由圖5可看出，在δ 96.83～107.23的低磁場領(lǐng)域，出現(xiàn)了多個異頭碳信號峰，說明MCPⅡa中的聚合度較高，糖鏈比較復(fù)雜。δ 60～78為己碳糖環(huán)上其他位碳（C2、C3、C4、C5和C6）的共振區(qū)，非端基碳的信號區(qū)。

2.6 MCPⅡa的構(gòu)象分析

剛果紅可以與具有三股螺旋構(gòu)象的多糖形成配合物，配合物的最大吸收波長同剛果紅相比會發(fā)生紅移，且在一定的NaOH濃度范圍內(nèi)呈現(xiàn)亞穩(wěn)性，即最大吸收波長的特征變化[16-17]。從圖6可以看出，MCPⅡa與剛果紅發(fā)生絡(luò)合作用，在NaOH濃度0～0.5 mol/L范圍內(nèi)表現(xiàn)為最大吸收波長的特征變化，且吸收波長并沒有出現(xiàn)大幅度改變，可以推斷出MCPⅡa具有較為穩(wěn)定的三股螺旋結(jié)構(gòu)。

2.7 MCPⅡa掃描電鏡

由圖7可知，當放大倍數(shù)為17 000 倍時，MCPⅡa結(jié)構(gòu)較為規(guī)則，在電鏡下呈現(xiàn)為菱形顆粒 狀。掃描 電鏡結(jié)果為MCPⅡa在微米尺度的顯微形貌特征提供了直觀的信息。

3 討 論

本實驗采用纖維素酶法提取MCP，通過Sevag法脫蛋白后，經(jīng)DEAE-52分離純化得到0.1 mol/L NaCl溶液洗脫組分MCPⅡ，通過SephadexG-100凝膠柱純化后，得到MCPⅡa。實驗表明，MCPⅡa為均一多糖，平均分子質(zhì)量為13.0 kD，由鼠李糖、半乳糖醛酸、半乳糖、木糖、阿拉伯糖5 種單糖組成，其中阿拉伯糖含量占50%以上，可初步推斷MCPⅡa是以阿拉伯糖為主，可能帶有多個分支的酸性雜多糖。光譜分析表明，MCPⅡa其糖鏈構(gòu)型主要為β構(gòu)型，分子以β-糖苷鍵連接，含有β-D-吡喃葡萄糖環(huán)，且存在C1、C2、C3、C5連接。空間構(gòu)象研究表明，MCPⅡa在水溶液中具有較為穩(wěn)定三股螺旋結(jié)構(gòu)。電鏡結(jié)果顯示，MCPⅡa呈現(xiàn)為外形規(guī)整的菱形顆粒狀晶體。

有關(guān)多糖的研究表明，多糖的結(jié)構(gòu)與生物學活性有著密切的關(guān)系[18-21]。例如，分子質(zhì)量與多糖的溶解度和黏度有關(guān)，而溶解度和黏度影響著多糖的生物活性及實際應(yīng)用；大分子質(zhì)量多糖體積較大，不利于跨越多重細胞膜障礙進入生物體內(nèi)發(fā)揮生物學活性[22]。MCPⅡa為小分子質(zhì)量苦瓜多糖，其生物活性更容易在體內(nèi)發(fā)揮，適宜開發(fā)利用。多糖主鏈的構(gòu)型有α構(gòu)型和β構(gòu)型2 種。對于葡聚多糖而言，α-葡聚糖一般沒有活性，主要是因為人體內(nèi)存在α-葡萄糖苷酶，能使α-糖苷鍵發(fā)生水解；而對于其他類型的多糖，具有生物學活性者也多是β構(gòu)型[23]。一般認為，空間構(gòu)像比初級結(jié)構(gòu)對多糖活性的影響更大，多糖的特定空間構(gòu)像是其產(chǎn)生生物學活性所必需的，如具有抗腫瘤活性的香菇多糖呈三股螺旋結(jié)構(gòu)[24]；經(jīng)硫酸酯化的巖藻低聚糖表現(xiàn)出明顯的抗HSV病毒活性，且隨著硫酸酯化程度的增加而增強[25]；從金釵石斛莖中提取的果膠多糖DNP-W5的免疫活性的表達，與其分支結(jié)構(gòu)及乙?；兄匾P(guān)系[26-27]。而剛果紅實驗研究表明，MCPⅡa在水溶液中具較為穩(wěn)定的三股螺旋結(jié)構(gòu)，進一步說明苦瓜多糖具有著潛在的開發(fā)價值。

[1] NAGWA M A, NASSER B S, SHERWEIT H E, et al. Phytochemical and biological studies of some polysaccharides isolated from Aloe, Tamarindus, Opuntia and Citrus[J]. Journal of the Arab Society for Medical Researches, 2010, 5(2): 141-152.

[2] IZHARUL H, SHABNAM K. Effect of Momordica charantia (bitter gourd) tablets in diabetes mellitus: type 1 and type 2[J]. Prime Research on Medicine, 2012, 2(2): 72-74.

[3] NERURKARP V, LEEY K, MOTOSUE M, et al. Momordica charantia (bitter melon) reduces plasma apolipoprotein B-100 and increases hepatic insulin receptor substrate and phosphoinositide-3 kinase interactions[J]. British Journal of Nutrition, 2008, 100(4): 751-759.

[4] SRIDHAR M G, VINAYAGAMOORTHI R, ARUL S V, et al. Bitter gourd (Momordica charantia) improves insulin sensitivity by increasing skeletal muscle insulin-stimulated IRS-1 tyrosine phosphorylation in high-fat-fed rats[J]. British Journal of Nutrition, 2008, 99(4): 806-812.

[5] TOSHIHIRO M, CHISA I, NAOKI I. Hypoglycemic activity of the fruit of the Momordica charantia in type 2 diabetic mice[J]. Journal of Nutritional Science and Vitaminology, 2001, 47(5): 340-344.

[6] 何新益, 劉仲華. 苦瓜多糖降血糖活性的高通量篩選研究[J]. 食品科學, 2007, 28(2): 313-316.

[7] 徐斌, 董英, 張慧慧, 等. 苦瓜多糖對鏈脲佐菌素誘導(dǎo)糖尿病小鼠的降血糖效果[J]. 營養(yǎng)學報, 2006, 28(4): 401-408.

[8] 宋金平. 苦瓜多糖對糖尿病小鼠的降血糖作用和胰島素水平的影響[J]. 中國實用醫(yī)藥, 2012, 7(3): 250-251.

[9] 吳笳迪, 陳紅漫. 水溶性苦瓜多糖的提取及生物活性研究[J]. 食品科學, 2006, 27(3): 82-86.

[10] WANG Huihui, ZHANG Shaozai, CHEN Hongman, et al. Study on correlation between antioxidant and hypoglycemic activity polysaccharide isolation from Momordica charantia[J]. Bothalia Joural, 2013, 43(11): 117-128.

[11] 焦宇知. 苦瓜多糖的提取與分離純化[J]. 食品科技, 2007, 32(4): 59-61.

[12] 董加寶, 李芳. 苦瓜多糖的制備及其抗氧化性質(zhì)研究[J]. 湖南科技學院學報, 2008, 29(8): 51-54.

[13] MAO Wenjun, LI Bafang, GU Qianqun, et al. Preliminary studies on the chemical characterization and antihyper lipidemic activity of polysaccharide from the brown alga Sargassum fusiforme[J]. Hydrobiologia, 2004, 512: 263-266.

[14] 路國兵, 任春久, 崔為正, 等. 桑葉多糖MLP Ⅱ的基本結(jié)構(gòu)及對糖尿病模型大鼠的降血糖作用[J]. 蠶業(yè)科學, 2010, 37(6): 1053-1060.

[15] KACURAKOVA M, CAPEK P, SASINKOVA V, et al. FT-IR study of plant cell wall model compounds: pectic polysaccharides and hemicelluloses[J]. Carbohydrate Polymers, 2000, 43(2): 195-203.

[16] 劉微微, 劉旭, 曹學麗, 等. 白背三七多糖的結(jié)構(gòu)表征及α-葡萄糖苷酶的抑制活性[J]. 食品科學, 2013, 34(7): 115-120.

[17] BAO Xingfeng, LIU Guiping, FANG Jinian, et al. Structural and immunological studies of a major polysaccharide from spores of Ganoderma lucidum (Fr.) Karst[J]. Carbohydrate Research, 2001, 332(1): 67-74.

[18] HROM?DKOV? Z, PAULSEN B S, POLOVKA M, et al. Structural features of two heteroxylan polysaccharide fractions from wheat bran with anti-complementary and antioxidant activities[J]. Carbohydrate Polymers, 2013, 93(1): 22-30.

[19] WIJESEKARA I, PANGESTUTI R, KIM S K. Biological activities and potential health benefits of sulfated polysaccharides derived from marine algae[J]. Carbohydrate Polymers, 2011, 84(1): 14-21.

[20] COSTA L S, FIDELIS G P, CORDEIRO S L, et al. Biological activities of sulfated polysaccharides from tropical seaweeds[J]. Biomedicine & Pharmacotherapy, 2010, 64(1): 21-28.

[21] JIAO Guangling, YU Guangli, ZHANG Junzeng, et al. Chemical structures and bioactivities of sulfated polysaccharides from marine algae[J]. Marine Drugs, 2011, 9(2): 196-223.

[22] ZHANG Xuehong, LIU Lina, LIN Guiwu. Structural features, antioxidant and immunological activity of a new polysaccharide (SP1) from sisal residue[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2013, 59(6): 184-191.

[23] 王兆梅, 李琳, 郭杞遠, 等. 多糖結(jié)構(gòu)修飾研究進展[J]. 中國醫(yī)藥工業(yè)雜志, 2002, 33(12): 616-620.

[24] MISAKI A, KAKUTA M, SASAKI T M, et al. Studies on interrelation of structure and antitumor effects of polysaccharides: antitumor action of periodate modified, branched (1→3) β-D-glucan of Auricularia auricular judee, and other p olysaccharides containing (1→3) β-glucosidic linkages[J]. Carbohydrate Research, 1981, 92(1): 115-129.

[25] SINHA S, ASTANI A, GHOSH T, et al. Polysaccharides from Sargassum tenerrimum: structural features, chemical modification and anti-viral activity[J]. Phytochemistry, 2010, 71(2): 235-242.

[26] HRICOVINI M, GUERRINI M, BISIO A, et al. Conformation of heparin pentasaccharide bound to antithrombin Ⅲ[J]. Biochemical Journal, 2001, 59: 265-272.

[ 27] WANG J, GONG X. Advancesin the studies on the antitumor activity and immunomodulating action of polysacchrides[J]. Chinese Journal of Biochemical Pharmaceutics, 2001, 22(1): 52-54.

Purification and Structural Analysis of a Polysaccharide from Bitter Gourd (Momordica charantia)

CHEN Hongman, GUO Longwei, ZHANG Shaozai, LIU Jiangman, ZHANG Haiyan, KAN Guoshi*
(College of Bioscience and Biotechnology, Shenyang Agricultural University, Shenyang 110866, China)

In this research, a water-soluble polysaccharide (MCP Ⅱa) w as extracted from Momordica charantia by cellulase hydrolysis, precipitated with ethanol, and then puri?ed by DEAE-52 cellulose anion-exchange and Sephadex G-100 gel?ltration chromatography. The high performance gel permeation chromatography (HPGPC) analysis showed that the average molecular weight of MCP Ⅱa was 13.0 kD. Monosaccharides analysis revealed that the MCP Ⅱa was composed of Rha, GalA, Gal, Xyl and Ara with a relative molar ratio of 12:3.05:19.89:5.95:56. Infrared (IR) spectrum,13C-nuclear magnetic resonance (NMR) and Cango-red tests indicated that MCP Ⅱa formed a β-triple helix in aqueous solution and the C1, C2 and C3, C5 positions were its binding sites. Moreover, it existed as a rhombus crystal under a scanning electron microscope.

Momordica charantia; polysaccharide; purification; structural analysis

O629.12

A

10.7506/spkx1002-6630-201510018

2014-04-14

國家自然科學基金面上項目(31271842)

陳紅漫(1969—),女,副教授,博士,主要從事食品生物化學研究。E-mail：chenhm99@sina.com

*通信作者：闞國仕(1971—),男,副教授,碩士,主要從事酶學與生物活性物質(zhì)研究。E-mail：kanguoshi@163.com