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    電離輻射對小鼠骨髓c-kit陽性細(xì)胞損傷效應(yīng)體外研究*

    2015-03-18 01:46:32張俊伶李德冠孟愛民
    重慶醫(yī)學(xué) 2015年24期
    關(guān)鍵詞:電離輻射懸液孵育

    張俊伶,劉 冰,路 璐,李德冠,孟愛民

    (中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院放射醫(yī)學(xué)研究所/天津市放射醫(yī)學(xué)與分子核醫(yī)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津300192)

    造血系統(tǒng)對電離輻射高度敏感,電離輻射能夠引起造血系統(tǒng)損傷,包括急性骨髓抑制和持久性骨髓損傷。急性骨髓抑制在受到照射后很快發(fā)生,主要是快速增殖的造血祖細(xì)胞(hematopoietic progenitor cell,HPC)損傷所致。持久性骨髓損傷是輻射遠(yuǎn)期損傷的主要表現(xiàn),主要是由于電離輻射引起的造血干細(xì)胞(hematopoietic stem cell,HSC)損傷所致[1-2]。c-kit+細(xì)胞是一群經(jīng)過富集的富含HPC和HSC的一類細(xì)胞,目前利用磁珠分選系統(tǒng)能在短時(shí)間內(nèi)快速分選出大量的c-kit+細(xì)胞,因此對c-kit+細(xì)胞電離輻射損傷的研究能夠初步反應(yīng) HPC和HSC損傷情況,對輻射引起造血系統(tǒng)損傷機(jī)制研究及損傷防護(hù)藥的初步篩選具有重要意義。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 試劑與儀器 無血清擴(kuò)增培養(yǎng)基SFEM,購自Stem Cell Technologies公司;c-kit磁珠,購自美天旎公司;細(xì)胞活力檢測試劑盒Celltiter-Glo,購自Promega公司;甲基纖維素半固體培養(yǎng)基 M3534,購自Stem Cell Technologies公司;活性氧(ROS)檢測試劑盒,購自碧云天生物技術(shù)有限公司;碘化丙啶(PI)染液,購自索萊寶公司;凋亡檢測試劑盒,購自BD公司。多功能酶標(biāo)儀,型號(hào)InfiniteM200,購自 TECAN公司。137Csγ射線輻射源,型號(hào)USD,Autocell40,購自加拿大原子能有限公司;流式細(xì)胞儀,型號(hào)C6,購自BD公司。

    1.1.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 無特定病原體(SPF)級C57BL/6雄性小鼠15只,18~25g,購自維通利華,飼養(yǎng)于中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院放射醫(yī)學(xué)研究所實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心。

    1.2 方法

    1.2.1 c-kit+細(xì)胞分離 無菌分離小鼠雙側(cè)股骨脛骨,去除表面附著肌肉,用2.5mL一次性無菌注射器在磷酸鹽緩沖液(PBS)中將骨髓細(xì)胞沖出,計(jì)數(shù)獲取的細(xì)胞數(shù)目。每1×108細(xì)胞加20μL的c-kit磁珠,冰上孵育30min,孵育結(jié)束后加入5mL PBS,離心1 500r/min,5min。離心完畢用10mL PBS重懸細(xì)胞,利用磁珠分選系統(tǒng)進(jìn)行c-kit+細(xì)胞分離[3]。

    1.2.2 實(shí)驗(yàn)分組 實(shí)驗(yàn)分為3組,對照組:取1×107個(gè)/mL濃度的c-kit+細(xì)胞懸液600μL加入至2mL EP管內(nèi),再加入無血清擴(kuò)增(SFEM)培養(yǎng)基600μL吹打混勻。1Gy照射組:在對照組基礎(chǔ)上進(jìn)行1Gy劑量γ射線照射;4Gy照射組:在對照組基礎(chǔ)上進(jìn)行4Gy劑量γ射線照射。

    1.2.3 小鼠c-kit+細(xì)胞活力檢測 將細(xì)胞懸液接種于96孔板內(nèi),每孔200μL,每個(gè)實(shí)驗(yàn)組設(shè)置4個(gè)平行孔。每孔加入20 μL生物發(fā)光試劑,室溫避光震蕩孵育30min,多功能酶標(biāo)儀檢測細(xì)胞發(fā)光值。

    1.2.4 小鼠c-kit+細(xì)胞克隆形成能力檢測 0Gy接種細(xì)胞濃度1×104個(gè)/mL、1Gy接種細(xì)胞濃度2×104個(gè)/mL、4Gy接種細(xì)胞濃度1×105個(gè)/mL(根據(jù)前期系列預(yù)實(shí)驗(yàn)提示,以上接種細(xì)胞濃度在顯微鏡下計(jì)數(shù)最為適宜,克隆數(shù)目既不會(huì)太多也不會(huì)太少;隨照射劑量增加,造血祖細(xì)胞損傷嚴(yán)重,形成克隆數(shù)目減少,所以隨照射劑量增加需要加大接種細(xì)胞濃度)。調(diào)整細(xì)胞濃度為接種濃度的10倍,加0.2mL細(xì)胞至2mL M3534,振蕩器充分混勻,靜置2~5min,待氣泡消失。用2.5 mL注射器連接16#平頭注射器針頭,吸取0.5mL細(xì)胞混懸液,加入24孔板,輕搖培養(yǎng)板,使培養(yǎng)基均勻分布。將培養(yǎng)板置入37℃,5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),第5天低倍觀察集落形成情況,細(xì)胞數(shù)大于或等于30為陽性集落。

    1.2.5 小鼠c-kit+細(xì)胞內(nèi)ROS水平檢測 將c-kit+細(xì)胞懸液1mL加入2mL無菌EP管內(nèi),1 500r/min,離心5min后棄上清液。每管內(nèi)加入500μL ROS檢測探針[無血清1640與ROS探針(DCFH-DA)比例為3 000∶1],37℃ CO2水浴鍋內(nèi)孵育30min后離心,棄去上清液后用無血清RPMI-1640培養(yǎng)基洗滌3次以洗去多余未結(jié)合探針,最后用無血清RPMI-1640培養(yǎng)基將細(xì)胞懸起,流式細(xì)胞儀檢測熒光素(FITC)通道平均熒光強(qiáng)度。

    1.2.6 小鼠c-kit+細(xì)胞周期檢測 取c-kit+細(xì)胞懸液500 μL,加入1mg/mL的PI染液25μL,使PI染液終濃度為50 μg/mL,室溫避光孵育1h。孵育結(jié)束加5mL體積的PBS溶液,1 500r/min,離心5min后棄上清液。加入200μL體積的PBS溶液重懸細(xì)胞,流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞周期。

    1.2.7 小鼠c-kit+細(xì)胞凋亡檢測 取c-kit+細(xì)胞懸液,離心去上清液后加入100μL BD凋亡試劑盒內(nèi)1×Binding buffer試劑,加入BD凋亡試劑盒內(nèi)的Annexin V試劑和7-AAD試劑各5μL,室溫避光孵育15min,再加入BD凋亡試劑盒內(nèi)1×Binding buffer試劑200μL,流式細(xì)胞儀檢測凋亡情況。

    1.2.8 小鼠c-kit+細(xì)胞受照射后發(fā)生改變的信號(hào)通路分析取c-kit+細(xì)胞懸液,離心去上清液后加入1mL體積的Trizol試劑,交由上海康成生物工程有限公司進(jìn)行全基因組的基因芯片分析后進(jìn)行聚類分析。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用GraphPad Prism5軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行處理,計(jì)量資料以±s表示,多組間的均數(shù)比較采用單因素方差分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié) 果

    2.1 電離輻射對小鼠c-kit+細(xì)胞活力、細(xì)胞克隆形成能力(CFU-GM)及細(xì)胞內(nèi)ROS水平的影響與對照組比較,受照射后小鼠c-kit+細(xì)胞活力下降,細(xì)胞克隆形成能力下降,以上兩項(xiàng)檢測指標(biāo)隨細(xì)胞受照射劑量增加而遞減。與對照組比較,受照射后小鼠c-kit+細(xì)胞內(nèi)ROS水平升高,且隨照射劑量增加遞增,見表1。

    2.2 電離輻射對小鼠c-kit+細(xì)胞S/G2/M 期、早期凋亡及晚期凋亡的影響與對照組比較與對照組比較,受1Gy照射后小鼠處于S/G2/M 期細(xì)胞比例增加(P<0.05),受4Gy照射后小鼠c-kit+細(xì)胞處于S/G2/M 期細(xì)胞比例明顯下降(P<0.05)。與對照組比較,受照射后小鼠早期凋亡及晚期凋亡細(xì)胞比例隨照射劑量加大而明顯增加,見表2。

    表1 受照射后c-kit+細(xì)胞細(xì)胞活力、克隆形成能力、細(xì)胞內(nèi)ROS水平變化(±s)

    表1 受照射后c-kit+細(xì)胞細(xì)胞活力、克隆形成能力、細(xì)胞內(nèi)ROS水平變化(±s)

    a:P<0.01,與對照組比較。

    組別 細(xì)胞活力(RLU)克隆數(shù)目(個(gè)/105細(xì)胞) ROS(MFI)n 4 6 3對照組 333 837.5±3 339.6 705.0±53.9 733 933.0±71 742.8 1Gy組 187 787.5±2 568.5a 340.8±22.0a1 795 565.0±230 079.6a 4Gy組 101 239.3±2 197.7a 22.7±4.6a2 815 854.0±189 153.2a

    表2 受照射后c-kit+細(xì)胞S/G2/M期、早期凋亡及晚期凋亡細(xì)胞比例變化(±s)

    表2 受照射后c-kit+細(xì)胞S/G2/M期、早期凋亡及晚期凋亡細(xì)胞比例變化(±s)

    a:P<0.05,與對照組比較。

    組別 S/G2/M 期細(xì)胞比例(%)早期凋亡細(xì)胞比例(%)晚期凋亡細(xì)胞比例(%)26.3±2.6 3.2±0.4 1.3±0.2 1Gy組 32.3±0.5a 4.5±0.7a 2.3±0.3a 4Gy組 19.9±0.2a 11.0±1.0a 4.5±0.5對照組a

    2.3 小鼠c-kit+細(xì)胞受照射后上調(diào)基因變化與對照組比較,c-kit+細(xì)胞受4Gy劑量γ射線照射后,氧化應(yīng)激相關(guān)的2個(gè)基因表達(dá)上調(diào)、細(xì)胞周期相關(guān)的34個(gè)基因表達(dá)上調(diào)、細(xì)胞凋亡相關(guān)的35個(gè)基因表達(dá)上調(diào),見表3。

    表3 表達(dá)升高2倍以上的前10位基因

    2.4 小鼠c-kit+細(xì)胞受照射后下調(diào)基因變化與對照組比較,c-kit+細(xì)胞受4Gy劑量γ射線照射后,氧化應(yīng)激相關(guān)的6個(gè)基因表達(dá)下調(diào)、細(xì)胞周期相關(guān)的96個(gè)基因表達(dá)下調(diào)、細(xì)胞凋亡相關(guān)的56個(gè)基因表達(dá)下調(diào),見表4。

    表4 表達(dá)降低2倍以上的前10位基因

    3 討 論

    HSC是造血系統(tǒng)中一類特殊的的細(xì)胞群,在進(jìn)行自我更新的同時(shí)能夠定向分化為HPC及各類成熟的血液細(xì)胞。c-kit又名CD117,是特異性存在于HSC及HPC表面的抗原分子,c-kit能夠與干細(xì)胞因子特異性結(jié)合,調(diào)控細(xì)胞的生存及增殖[4]。由于在已經(jīng)成熟分化的造血細(xì)胞表面沒有c-kit的表達(dá),因此本研究選用c-kit+細(xì)胞群研究電離輻射對 HSC及HPC損傷效應(yīng)及損傷相關(guān)的基因表達(dá)變化。

    研究提示,c-kit+細(xì)胞在經(jīng)過1Gy和4Gy劑量照射后,細(xì)胞活力下降,造血祖細(xì)胞克隆形成數(shù)目減少,細(xì)胞內(nèi)ROS水平升高,這些變化隨照射劑量的增加而呈遞減或遞增變化。研究結(jié)果與之前對小鼠進(jìn)行整體照射后的HSC變化一致[5-7],說明對c-kit+細(xì)胞體外研究能夠反映全身照射小鼠造血系統(tǒng)變化。本研究進(jìn)一步應(yīng)用流式細(xì)胞儀對電離輻射后c-kit+細(xì)胞增殖凋亡變化進(jìn)行分析,結(jié)果提示,經(jīng)過1Gy照射后,處于增殖期(S/G2/M 期)c-kit+細(xì)胞比例明顯增加,凋亡細(xì)胞明顯增加;然而經(jīng)過4Gy照射后,處于增殖期(S/G2/M 期)c-kit+細(xì)胞比例明顯下降,凋亡細(xì)胞明顯增加。分析上述結(jié)果,低劑量的電離輻射(1Gy)較短時(shí)間內(nèi)可能會(huì)刺激c-kit+細(xì)胞進(jìn)入增殖期,對電離輻射引起的細(xì)胞損傷起到代償作用,然而,受損傷后發(fā)生凋亡的細(xì)胞明顯多于增殖細(xì)胞,導(dǎo)致1Gy照射后存活細(xì)胞減少。隨著照射劑量增加到4Gy,增殖細(xì)胞減少,凋亡細(xì)胞增加,存活細(xì)胞數(shù)目進(jìn)一步減少。對細(xì)胞增殖和凋亡的檢測能夠更深入地解釋細(xì)胞活力隨照射劑量的增加而下降的現(xiàn)象。

    電離輻射引起HSC及HPC損傷的分子機(jī)制尚不完全明確,已有的研究提示電離輻射引起 ROS-NOX4-p38MAPK-p16,ATM-Chk2-p53-p21[6,8]等信號(hào)通路發(fā)生變化,對這些基因采取激活或者抑制的方法不能完全阻斷電離輻射引起的HSC及HPC損傷。因此對c-kit+細(xì)胞進(jìn)行4Gy照射后,提取細(xì)胞RNA進(jìn)行全基因組基因芯片分析,對分析出的基因進(jìn)行進(jìn)一步的聚類分析,總結(jié)出經(jīng)過照射后表達(dá)上調(diào)及下調(diào)的與氧化應(yīng)激、細(xì)胞周期、細(xì)胞凋亡的一系列相關(guān)基因,并列表總結(jié)出涉及以上細(xì)胞生物學(xué)過程的表達(dá)上調(diào)及下調(diào)的前十位基因。結(jié)果提示,氧化應(yīng)激相關(guān)的基因Srxn1[9]、Psmb5[10],細(xì)胞周期相 關(guān) 的 Cdkn1a[8]、Smc1b[11]等基因,細(xì)胞凋亡相關(guān)的Bcl2l1[12]、Lrdd[13]等基因表達(dá)上調(diào)。氧化應(yīng)激相關(guān)的Mpo[14]、Mtf1[15]等基因,細(xì)胞周期相關(guān)的 Chek1[16]、Rcc1[17]等基因,細(xì)胞凋亡相關(guān)的Ebag9、Ciapin1[18]等基因表達(dá)下調(diào)。之前的關(guān)于電離輻射對小鼠造血干祖細(xì)胞損傷的研究都較少涉及以上相關(guān)基因,進(jìn)一步的研究工作可以參考以上基因表達(dá)變化,因此篩選出的新基因?qū)υ煅到y(tǒng)電離輻射損傷研究可能具有重要意義。

    綜上,本研究在體外水平分析了受到不同劑量照射后,ckit+細(xì)胞在細(xì)胞活力、細(xì)胞內(nèi)ROS水平、細(xì)胞功能、細(xì)胞增殖及凋亡水平的變化,進(jìn)一步揭示了引起這些變化可能存在的分子機(jī)制,為電離輻射導(dǎo)致HSC及HPC損傷的研究奠定了基礎(chǔ),具有重要的提示意義。

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