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    干旱脅迫對(duì)金線蘭POD活性及同工酶酶譜的影響

    2015-01-15 21:23:55李光龔寧
    江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2014年11期
    關(guān)鍵詞:干旱脅迫

    李光+龔寧

    摘要:對(duì)生長一致的金線蘭組培苗進(jìn)行干旱脅迫試驗(yàn),采用分光光度法和同工酶電泳技術(shù)分別研究了干旱脅迫期間金線蘭POD活性及同工酶酶譜的變化。結(jié)果表明:干旱脅迫下,金線蘭POD活性呈現(xiàn)“M”形的變化規(guī)律,同工酶條帶數(shù)量發(fā)生改變,在脅迫的前2d,在“-”區(qū)產(chǎn)生4條新的酶帶,表明在干旱脅迫下,金線蘭試管苗迅速誘導(dǎo)POD新酶帶以適應(yīng)脅迫環(huán)境。脅迫3d,酶帶條數(shù)減少到5條,與此同時(shí)POD活性也降到最低。從脅迫后4d起,在“+”區(qū)產(chǎn)生2條新的酶帶。這可能是POD同工酶的表達(dá)基因有部分關(guān)閉或開啟,導(dǎo)致酶帶條數(shù)的增減。

    關(guān)鍵詞:干旱脅迫;金線蘭;同工酶酶譜

    中圖分類號(hào):Q945.78文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A文章編號(hào):1002-1302(2014)11-0208-02

    干旱脅迫導(dǎo)致植物體內(nèi)產(chǎn)生大量的活性氧,活性氧可以導(dǎo)致蛋白質(zhì)、膜脂、DNA及其他細(xì)胞組分嚴(yán)重?fù)p傷[1-3]。在植物的抗氧化酶系統(tǒng)中,POD能將H2O2分解為無害的H2O和O2,降低細(xì)胞內(nèi)活性氧的濃度,對(duì)維持植物正常的生理功能具有重要意義[4-6]。金線蘭[Anoectochilusroxburghii(Wall.)Lindl],別名花葉開唇蘭,為蘭科開唇蘭屬植物[7],生活在陰濕環(huán)境中,干旱脅迫對(duì)金線蘭的傷害較其他逆境嚴(yán)重。目前,金線蘭組培快繁已經(jīng)取得成功,已經(jīng)進(jìn)行工廠化生產(chǎn),但是有關(guān)金線蘭組培苗抗旱的研究鮮見報(bào)道,本試驗(yàn)對(duì)干旱脅迫下金線蘭的POD活性和同工酶變化進(jìn)行研究,為進(jìn)一步了解干旱脅迫條件下金線蘭的生理響應(yīng)機(jī)制提供參考。

    1材料與方法

    1.1材料

    材料為生長一致的金線蘭組培苗,由貴州師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院培養(yǎng)室提供。

    1.2方法

    取出金線蘭組培苗,無菌水將幼根沖洗干凈,放入MS營養(yǎng)液中適應(yīng)性培養(yǎng)3d,再移入含不同濃度PEG6000的溶液中進(jìn)行根際干旱脅迫處理。PEG6000的干旱脅迫設(shè)4個(gè)濃度處理:10%(處理Ⅰ)、20%(處理Ⅱ)、30%(處理Ⅲ)、40%(處理Ⅳ),每種處理重復(fù)3次。同工酶分析選擇20%PEG6000處理的金線蘭組培苗,培養(yǎng)溫度為(23±2)℃,每天光照12h(08:00—20:00),光照強(qiáng)度為3000lx。

    1.2.1粗酶液的制備準(zhǔn)確稱取成熟鮮葉0.50g,加入預(yù)冷的酶提取液(50mmol/LpH值7.8磷酸緩沖液內(nèi)含0.1mmol/LEDTA,0.3%TritonX-100,4%PVP)5mL,冰浴充分研磨,于冷凍離心機(jī)(4℃)12000r/min離心20min,上清液即為粗酶液,冷藏備用。

    1.2.2過氧化物酶(POD)活性的測定采用愈創(chuàng)木酚法[8],3.0mL反應(yīng)混合液(50.0mmol/L磷酸緩沖液500mL中含0.28mL愈創(chuàng)木酚和30%的H2O20.19mL)中加入50.0μL酶液,迅速搖勻,測D470nm。每30s讀數(shù)1次,以每分鐘吸光度變化值表示酶活性大小,單位為U/(min·g)。

    1.2.3電泳

    1.2.3.1加樣

    濃縮膠聚合之后,小心拔出梳子,用濾紙條吸干梳孔中的水分,并注入預(yù)冷已稀釋10倍的電極緩沖液。從冰箱冷凍室中取出樣品,4℃下解凍,待樣品解凍后,用微量進(jìn)樣器吸取80.0μL酶液,小心注入梳孔底部,同時(shí)記錄樣品號(hào)和相應(yīng)的樣品槽號(hào),加入1滴0.1%的溴酚藍(lán)指示劑。將電泳槽小心移入4℃冰箱中電泳。電泳條件:120min前電泳電壓100B,120min后電泳電壓200B,電泳時(shí)間22h。

    1.2.3.2過氧化物同工酶染色

    膠電泳完畢并經(jīng)雙蒸水沖洗3次后,在染液(0.1g聯(lián)苯胺,5.0mL無水乙醇,10.0mL1.5mol/L乙酸鈉,10.0mL1.5mol/L乙酸)中加入6~10滴30%的H2O2,迅速搖勻后倒在凝膠上,并將染色盒置于水平搖床上,室溫下輕微搖動(dòng)。待橙黃色酶帶完全出現(xiàn)(約15min)后,倒出染色液,自來水沖洗,數(shù)碼相機(jī)拍照后放入7%乙酸中保存。

    2結(jié)果與分析

    2.1干旱脅迫對(duì)金線蘭組培苗葉片過氧化物酶(POD)的影響

    由圖1可知,干旱脅迫下不同處理葉片POD活性總體上呈現(xiàn)“M”形的變化規(guī)律,處理1在處理后2d,達(dá)到第1個(gè)峰值,達(dá)152.94U/(min·g),脅迫3~4d逐步降低,脅迫5~6d再次升高,到脅迫6d達(dá)第2個(gè)峰值。處理2、處理3、處理4的第1個(gè)峰值在脅迫3d出現(xiàn)。脅迫3~5d逐步降低,脅迫5d達(dá)最低,脅迫6d又迅速升高,達(dá)第2個(gè)峰值,脅迫7d再次下降。各處理第1次的峰值大于第2次的峰值,第1次峰值的大小順序依次為:處理2[298.098U/(min·g)]>處理4[232.888U/(min·g)]>處理3[195.584U/(min·g)]>處理1[152.941U/(min·g)]。可見,金線蘭對(duì)不同濃度的PEG6000干旱脅迫處理影響存在很大差異,其中20%的PEG6000處理,POD活性上升最高,因而選取這一濃度處理用于后續(xù)同工酶分析。

    2.2組培苗過氧化物同工酶分析

    組培苗POD同工酶電泳結(jié)果見圖2。從圖2可見過氧化物同工酶譜帶共11條。隨著干旱脅迫時(shí)間的延長,酶帶表現(xiàn)一定的變化。脅迫1~2d,在“-”區(qū)產(chǎn)生4條新的酶帶,表明在干旱脅迫下,金線蘭試管苗迅速誘導(dǎo)POD新酶帶產(chǎn)生以適應(yīng)脅迫環(huán)境。脅迫3d,酶帶條數(shù)減少到5條,與此同時(shí)POD活性也降到最低。脅迫4d起,在“+”區(qū)產(chǎn)生2條新的酶帶,表明在干旱脅迫過程中,金線蘭可能通過2種響應(yīng)途徑產(chǎn)生POD同工酶。

    3結(jié)論

    水分是植物的重要組成部分,是植物賴以生存的必要條件之一,無論是長期干旱還是短時(shí)間的水分虧缺都可能對(duì)植物的生長發(fā)育產(chǎn)生不同程度的影響。近年來,國內(nèi)外學(xué)者對(duì)植物抗旱機(jī)理作了大量研究,取得了較好的研究成果,但是金線蘭分布范圍較窄,長期以來人們多關(guān)注于金線蘭的藥效研究,對(duì)于其抗旱性研究較少。周黎等以3種不同來源的金線蘭組培苗(種子苗、根狀莖苗、地上莖苗)為試驗(yàn)材料,研究金線蘭組培苗滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)在土壤干旱脅迫下的變化規(guī)律[9],但是他們僅僅研究了可溶性糖、可溶性蛋白、脯氨酸和游離脯氨酸受干旱脅迫后的變化情況,未提及POD在干逆脅迫條件下的變化情況。POD是重要的抗旱相關(guān)酶,對(duì)金線蘭干旱脅迫下POD活性及同工酶帶的變化進(jìn)行研究具有重要的意義。

    本研究結(jié)果表明,在持續(xù)干旱脅迫下,金線蘭POD同工酶的電泳條帶發(fā)生變化,即在干旱脅迫處理1~2d,金線蘭POD同工酶的酶帶數(shù)量逐漸增加,脅迫2d酶帶數(shù)量達(dá)到最大。脅迫3d酶帶數(shù)量急劇減少到最少,脅迫4~6d的酶帶數(shù)量有所回升,這個(gè)變化與金線蘭POD活性的變化基本一致??赡艿脑蚴牵诟珊得{迫的過程中,由于金線蘭POD同工酶的部分酶帶前體的活化,產(chǎn)生了新的酶帶,這可能是在干旱脅迫下,金線蘭POD酶帶在脅迫1~2d有所增加的原因。隨著脅迫時(shí)間的延長,酶發(fā)生了降解或部分降解,導(dǎo)致部分酶帶消失或變淺,這可能就是干旱脅迫4dPOD同工酶酶帶減少至最少的原因。而后3dPOD酶帶有所增加,這可能是金線蘭在受到較長時(shí)間的干旱脅迫后啟動(dòng)了新的POD的機(jī)制。由于POD較易失活,金線蘭POD同工酶酶帶的變化也可能完全是由相關(guān)基因的關(guān)閉和開啟造成的,即在干旱脅迫的初期,金線蘭迅速打開應(yīng)急機(jī)制增加POD含量,隨著脅迫的持續(xù),金線蘭增加POD含量的應(yīng)急機(jī)制逐漸失效,導(dǎo)致脅迫3dPOD酶帶減少至最少,脅迫5~7d金線蘭POD酶帶的增加,可能是由于金線蘭啟動(dòng)了抵抗干旱脅迫的長效機(jī)制。然而金線蘭在干旱脅迫條件下POD活性及酶帶的變化究竟是由哪種機(jī)制調(diào)控的,需要進(jìn)一步分子生物學(xué)的研究,以深入了解干旱脅迫下金線蘭POD相關(guān)基因表達(dá)的變化情況。

    參考文獻(xiàn):

    [1]劉永輝.夏玉米不同生育期對(duì)水分脅迫的生理反應(yīng)與適應(yīng)[J].干旱區(qū)資源與環(huán)境,2013,27(2):171-175.

    [2]陳文佳,張楠,杭璐璐,等.干旱脅迫與復(fù)水過程中遮光對(duì)細(xì)葉小羽蘚的生理生化影響[J].應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào),2013,24(1):57-62.

    [3]張青,王進(jìn)鑫,鄒朋,等.水分和鉛交互脅迫對(duì)國槐幼苗生理生化特性的影響[J].農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2012,31(3):476-483.

    [4]王玉麗,焦培培,顧亞亞,等.胡楊葉形變化與POD同工酶的關(guān)系研究[J].干旱區(qū)資源與環(huán)境,2013,27(4):181-186.

    [5]程淑娟,唐東芹,劉群錄.鹽脅迫對(duì)兩種忍冬屬植物活性氧平衡的影響[J].南京林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2013,37(1):137-141.

    [6]YouJ,ZhangJ,WangWR,etal.ChangesofphysiologicalpropertiesinLimoniumaureum(Linn.)Hillseedlingsundersaltstress[J].BulletinofBotanicalResearch,2013,33:45-50.

    [7]中國植物志編委會(huì).中國植物志[M].北京:科學(xué)出版社,2000:220.

    [8]金冬雁,黎孟楓.分子克隆實(shí)驗(yàn)指南[M].北京:科學(xué)出版社,1992:55-56.

    [9]周黎,龔寧,彭健.干旱脅迫下金線蘭滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的變化規(guī)律[J].貴州科學(xué),2008,26(4):68-71.

    本研究結(jié)果表明,在持續(xù)干旱脅迫下,金線蘭POD同工酶的電泳條帶發(fā)生變化,即在干旱脅迫處理1~2d,金線蘭POD同工酶的酶帶數(shù)量逐漸增加,脅迫2d酶帶數(shù)量達(dá)到最大。脅迫3d酶帶數(shù)量急劇減少到最少,脅迫4~6d的酶帶數(shù)量有所回升,這個(gè)變化與金線蘭POD活性的變化基本一致??赡艿脑蚴?,在干旱脅迫的過程中,由于金線蘭POD同工酶的部分酶帶前體的活化,產(chǎn)生了新的酶帶,這可能是在干旱脅迫下,金線蘭POD酶帶在脅迫1~2d有所增加的原因。隨著脅迫時(shí)間的延長,酶發(fā)生了降解或部分降解,導(dǎo)致部分酶帶消失或變淺,這可能就是干旱脅迫4dPOD同工酶酶帶減少至最少的原因。而后3dPOD酶帶有所增加,這可能是金線蘭在受到較長時(shí)間的干旱脅迫后啟動(dòng)了新的POD的機(jī)制。由于POD較易失活,金線蘭POD同工酶酶帶的變化也可能完全是由相關(guān)基因的關(guān)閉和開啟造成的,即在干旱脅迫的初期,金線蘭迅速打開應(yīng)急機(jī)制增加POD含量,隨著脅迫的持續(xù),金線蘭增加POD含量的應(yīng)急機(jī)制逐漸失效,導(dǎo)致脅迫3dPOD酶帶減少至最少,脅迫5~7d金線蘭POD酶帶的增加,可能是由于金線蘭啟動(dòng)了抵抗干旱脅迫的長效機(jī)制。然而金線蘭在干旱脅迫條件下POD活性及酶帶的變化究竟是由哪種機(jī)制調(diào)控的,需要進(jìn)一步分子生物學(xué)的研究,以深入了解干旱脅迫下金線蘭POD相關(guān)基因表達(dá)的變化情況。

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    [5]程淑娟,唐東芹,劉群錄.鹽脅迫對(duì)兩種忍冬屬植物活性氧平衡的影響[J].南京林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2013,37(1):137-141.

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    [6]YouJ,ZhangJ,WangWR,etal.ChangesofphysiologicalpropertiesinLimoniumaureum(Linn.)Hillseedlingsundersaltstress[J].BulletinofBotanicalResearch,2013,33:45-50.

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