趙盈盈,彭盡暉,陳小超,黃 宇
(湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝園林學(xué)院,湖南 長沙 410128)
八仙花葉片誘導(dǎo)再生技術(shù)
趙盈盈,彭盡暉,陳小超,黃 宇
(湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝園林學(xué)院,湖南 長沙 410128)
以八仙花(Hydrangea macrophylla 'Adria)' 紅色品種無菌苗為試驗(yàn)材料,使用其葉片為外植體進(jìn)行再生研究,建立了八仙花葉片高效離體再生體系。結(jié)果顯示:適宜的葉片誘導(dǎo)愈傷培養(yǎng)基為MS+6-BA 2.5Mg/L+IAA 0.2Mg/L,出愈率達(dá)100%;適宜的芽直接誘導(dǎo)分化培養(yǎng)基為MS+6-BA 3.0Mg/L+N AA 0.3Mg/L,分化率可達(dá)80%;暗培養(yǎng)15 d是葉片誘導(dǎo)芽再生最適合的時(shí)間。最適宜的葉片切割大小是垂直于主脈切兩刀,但是不能斷開,此時(shí)芽誘導(dǎo)率最佳。切取3 c m高的無菌苗接種在生根培養(yǎng)基上,最適宜的生根培養(yǎng)基為1/2MS+蛭石和珍珠巖各一半混合,不添加激素,生根率達(dá)100%,且根生長健壯。
八仙花;葉片再生;暗培養(yǎng)
八仙花(Hydrangeamacrophylla)為虎兒草科木本觀賞植物,原產(chǎn)于中國和日本。因其花大色艷,寓意美好,深受人們的喜愛[1]?,F(xiàn)代花卉市場上,八仙花的生產(chǎn)量遠(yuǎn)不及其需求量。關(guān)于八仙花組織培養(yǎng)的報(bào)道較多,任叔輝等[2-7]以八仙花帶腋芽的莖段、莖尖、葉柄和葉片為外植體,分別獲得了八仙花的再生體系。2011年馮潤東等[8]報(bào)道了八仙花組織培養(yǎng)技術(shù),之后劉峰[9]以八仙花葉片為外植體,誘導(dǎo)出了不定芽,王忠武[10]報(bào)道了關(guān)于八仙花莖尖離體培養(yǎng),但近年來幾乎沒有關(guān)于八仙花組織培養(yǎng)技術(shù)的報(bào)道。八仙花多為不育花,難以通過傳統(tǒng)的雜交育種獲得優(yōu)良性狀,而分子技術(shù)的興起克服了這一障礙。分子技術(shù)育種可以定向修改某一特定形狀而不改變其原有的性狀,但是遺傳轉(zhuǎn)化需要良好的受體,而植物葉片是分子轉(zhuǎn)化中最佳受體。因此,研究植物葉片再生可以為今后分子遺傳轉(zhuǎn)化提供良好的受體[1]。關(guān)于植物葉片直接再生的研究較多,最近報(bào)道的有關(guān)于無患子優(yōu)樹[11]、‘惠’蘋果自交實(shí)生苗[12]、歐洲甜櫻桃砧木‘SL64’離體[13]、結(jié)球甘藍(lán)離體[14]、玫瑰[15]、‘北林雄株1號’和‘北林雄株2號’[16]及番茄[17]等植物葉片再生的研究。本試驗(yàn)主要研究八仙花葉片直接再生體系的建立,為今后八仙花分子遺傳轉(zhuǎn)化試驗(yàn)提供科學(xué)參考。
1.1 試驗(yàn)材料
供試材料為八仙花紅色品種(H.macrophylla 'Adria)',見圖1所示,由湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)觀賞園藝研究所提供。
圖1 試驗(yàn)八仙花品種
1.2 試驗(yàn)方法
1.2.1培養(yǎng)條件 光照時(shí)間約14 h,光照強(qiáng)度約1 500~2 000 lx,培養(yǎng)溫度25℃左右。
1.2.2 八仙花葉片愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng) 挑選長勢一致、生長健壯的八仙花組培苗,選取頂端葉面充分展開的幼嫩葉片,垂直葉片主脈方向剪切3~5個傷口將其葉背朝下與誘導(dǎo)培養(yǎng)基充分接觸培養(yǎng)。接種于以MS為基本培養(yǎng)基,添加不同配比激素的培養(yǎng)基上。每個處理接種10瓶且每瓶接種5個葉片,設(shè)3個重復(fù)接種后70 d觀察愈傷組織的分化情況,統(tǒng)計(jì)其出愈率。
1.2.3 八仙花葉片不定芽直接誘導(dǎo)培養(yǎng) 以MS為基本培養(yǎng)基,添加不同配比激素的培養(yǎng)基上。接種后70 d檢查出芽率。
1.2.4 葉片切割大小對芽直接再生的誘導(dǎo) 將生長健壯的葉片切割成面積大小不同的正方形,轉(zhuǎn)接到6-BA 3.0mg/L+NAA 0.3mg/L的培養(yǎng)基上,先放到暗條件下培養(yǎng)15 d后,轉(zhuǎn)到其他條件相同的光下培養(yǎng)。70 d后觀察芽的增殖情況。
1.2.5 暗培養(yǎng)對芽直接再生的誘導(dǎo) 設(shè)置暗培養(yǎng)0 10、15、20、25 d 5種處理,黑暗培養(yǎng)完成后將其轉(zhuǎn)到光下繼續(xù)培養(yǎng);以0 d暗培養(yǎng)為對照。接種70 d統(tǒng)計(jì)其出芽率。
1.2.6 再生植株的生根培養(yǎng) 將生長至3 cm以上的不定芽轉(zhuǎn)入生根培養(yǎng)基進(jìn)行生根誘導(dǎo),每組處理接種2瓶,每瓶接種5個不定芽,設(shè)3次重復(fù)。培養(yǎng)基均為1/2MS培養(yǎng)基,不添加任何激素。25 d后觀察其生根情況,統(tǒng)計(jì)其平均根長,平均生根數(shù)和生根率。
1.2.7 計(jì)算公式 出愈率(%)=(產(chǎn)生愈傷葉片數(shù)/接種總?cè)~片數(shù))×100
出芽率(%)=(分化芽的葉塊數(shù)/接種的葉塊數(shù))× 100
再生芽平均數(shù)(個)=葉片再生芽的總數(shù)/再生芽的葉片數(shù)
生根率(%)=(生根試管苗數(shù)/接種試管苗數(shù))×100
2.1 八仙花葉片愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基篩選
由表1可知,處理1的出愈率在6組培養(yǎng)基中最低,僅為54%。隨著6-BA的濃度增加到2.5mg/L,出愈率提高到100%。處理5產(chǎn)生愈傷葉片個數(shù)最多,平均為50個,即所有的葉片均能在此培養(yǎng)基上產(chǎn)生愈傷。從表1中還可以看出,隨著6-BA濃度的增加,出愈率也隨著增加,說明在一定情況下高濃度的細(xì)胞分裂素有利于細(xì)胞的分化,但是當(dāng)濃度增加到3.0mg/L時(shí),出愈率減弱,說明較高的細(xì)胞分裂素能夠抑制葉片愈傷組織的產(chǎn)生。由此可知,2.5mg/L的6-BA有利于八仙花葉片產(chǎn)生愈傷組織。因此,處理5(MS+ 6-BA 2.5mg/L+NAA 0.2mg/L)是最適合八仙花葉片愈傷組織誘導(dǎo)的培養(yǎng)基。
表1 不同培養(yǎng)基對八仙花葉片出愈率的影響
2.2 葉片切割大小對芽誘導(dǎo)的影響
由表2可知,將葉片切割成大小不同的正方形接種于培養(yǎng)基上,葉片切割較小時(shí),出芽率芽和平均數(shù)都較低,不利于芽的再生。但是將整個葉片垂直于主脈切兩刀,出芽率可達(dá)90%,芽平均數(shù)也達(dá)到了7.2個。由此可知:八仙花葉片再生最佳切割方式是,不應(yīng)將主脈切斷,而是傷其主脈后直接將整個葉片放在培養(yǎng)基上培養(yǎng)。
大?。╟ m)3 × 3 5 × 5整片葉片接種葉片(片)1 0 1 0 1 0分化葉塊(塊)1 6 9芽分化(個)1 3 1 6 6出芽率(%)1 0 6 0 9 0芽平均數(shù)(個)1 . 0 5 . 0 7 . 2
2.3 八仙花葉片不定芽直接誘導(dǎo)培養(yǎng)基的篩選
將生長健壯的葉片放入芽誘導(dǎo)培養(yǎng)基上,不同濃度激素的培養(yǎng)基對葉片直接誘導(dǎo)芽的產(chǎn)生影響很大。表3表明:10組處理中,處理8分化的葉片數(shù)最多,為43個,芽誘導(dǎo)率最高達(dá)86%,不定芽分化總數(shù)可達(dá)172個,單個葉片平均分化芽數(shù)也最多,高達(dá)4.0個,與其他培養(yǎng)基的分化率差異也較為顯著。與處理8相比,處理7雖然只有28個葉片有芽的分化,但是其平均再生芽個數(shù)也達(dá)到了4.0個,且芽生長粗壯,顏色濃綠,傷口處還有顏色濃綠、生長緊密的愈傷組織出現(xiàn)。處理9雖然出芽率可達(dá)78%,但是其平均再生芽個數(shù)較少,其芽較為健壯。由以上數(shù)據(jù)可知,要讓葉片直接分化出芽,且芽健壯易于在繼代培養(yǎng)基上增殖生長,最適的培養(yǎng)基為處理8即6-BA 3.0mg/L+NAA 0.3 mg/L。
2.4 暗培養(yǎng)對芽直接再生的誘導(dǎo)
暗培養(yǎng)一段時(shí)間有利于芽的分化[6]。由表4可知:八仙花在暗處理15 d后芽的分化率最高,芽分化平均數(shù)可達(dá)7.2個。八仙花葉片增殖過程如圖2所示,重芽分化量多,且芽生長健壯。但是過長時(shí)間的暗培養(yǎng)處理,不利于芽的分化。研究還發(fā)現(xiàn),在黑暗條件下,八仙花葉片很難分化愈傷組織,但是將葉片進(jìn)行一段時(shí)間的暗處理,然后將其在光照下培養(yǎng),在較短的時(shí)間內(nèi)就有大量的愈傷分化。
表3 不同激素對八仙花不定芽誘導(dǎo)率與再生芽數(shù)的影響
2.5 再生植株的生根誘導(dǎo)培養(yǎng)
從表5可知:在不同基質(zhì)上,八仙花幼苗均能長出根來,且生根率在80%以上,其中處理1、2、4、5的生根率可達(dá)到100%。其中處理4、5、7的平均生根數(shù)達(dá)到14條及以上,且處理5的生根數(shù)達(dá)到了25以上,根系生長粗壯濃密,且有側(cè)根的分化,芽生長健壯。由此可知,粗蛭石+珍珠巖作為八仙花生根誘導(dǎo)的基質(zhì)更加有利于根的分化和生長,而直徑較小的細(xì)蛭石和凝固的瓊脂會產(chǎn)生大量氣生根。所以,粗蛭石+珍珠巖是八仙花根誘導(dǎo)分化的最佳基質(zhì)。如圖3所示,6種基質(zhì)各有優(yōu)缺點(diǎn)。瓊脂能更好地固定不定芽,但是其透氣性相對較差,容易被細(xì)菌污染導(dǎo)致植株死亡;細(xì)蛭石和珍珠巖,可以相對好的保水和固定無菌苗,但其透氣性也相對較弱,易導(dǎo)致植株與其接觸部分潰爛,使植株后期生長較弱;粗蛭石雖然透氣性較好,但是保水能力相對較弱,不易固定植株;植株入土種植后生長更加健壯,且根系發(fā)達(dá)。但是從后期生長來看,粗蛭石+珠巖的苗子能更好地適應(yīng)環(huán)境。
表4 暗處理對八仙花葉片分化的影響
圖2葉片增殖過程(A,接種5 d的葉片;B,開始出現(xiàn)芽點(diǎn);C,出現(xiàn)一個子葉;D,出現(xiàn)兩片子葉;E、F,大量芽產(chǎn)生;G,轉(zhuǎn)入繼代培養(yǎng)的芽)
植物激素對八仙花葉片的出愈率和芽誘導(dǎo)率都有較大的影響。在八仙花葉片愈傷組織誘導(dǎo)的過程中,隨著細(xì)胞分裂素即6-BA濃度的增加,出愈率呈現(xiàn)先升高后降低的變化,因而選擇適當(dāng)?shù)募?xì)胞分裂素濃度對八仙花葉片直接再生誘導(dǎo)有著極為關(guān)鍵的意義。選擇較高的細(xì)胞分裂素和較低的生長素,有利于愈傷組織的分化。細(xì)胞分裂素與生長素NAA的比值在3.0∶0.3時(shí),有利于芽的直接再生。
表5 不同基質(zhì)對八仙花不定芽生根的影響
圖3 植株生根培養(yǎng)
適當(dāng)?shù)陌蹬囵B(yǎng)可促進(jìn)芽的分化,但應(yīng)注意的是暗培養(yǎng)時(shí)間過長,不但不能促進(jìn)芽的分化,愈傷組織也很難形成。劉峰[9]在研究八仙花葉片分化時(shí),也發(fā)現(xiàn)了一定的暗培養(yǎng)可以誘導(dǎo)芽的分化。師校欣等[18]認(rèn)為,暗培養(yǎng)可以促進(jìn)試管苗的生長與生根,這與內(nèi)源激素的變化有關(guān),通常認(rèn)為生長素可促進(jìn)生根,生長素IAA易在光照條件下分解。但也有報(bào)道認(rèn)為,暗處理可使黑桃試管苗生根率提高,而在光照條件下IAA含量始終大于暗培養(yǎng)條件[19]。暗培養(yǎng)促進(jìn)芽分化與暗培養(yǎng)促進(jìn)根的生長有什么不同的地方還無從得之,也沒有相關(guān)的文獻(xiàn)報(bào)道,光照條件為何會導(dǎo)致芽分化率降低且分化速度緩慢,還需要進(jìn)一步的研究證明。
本試驗(yàn)采用在1/2MS培養(yǎng)基的營養(yǎng)液中,加入不同基質(zhì)誘導(dǎo)八仙花幼苗生根。添加的幾種基質(zhì),市場上容易買到,價(jià)格便宜,能重復(fù)利用,且生根率高,不易有氣生根的產(chǎn)生。氣生根的產(chǎn)生,可能是因?yàn)榄傊图?xì)蛭石之間空隙較小,氧氣缺乏。使用粗的蛭石幾乎無氣生根產(chǎn)生。
最近的研究主要集中于獲得八仙花的脫毒苗,而八仙花外植體消毒,品種差異大,不定芽分化率低等問題仍然是急需解決的問題[1]。而之前的文章主要介紹了快速繁殖獲得無菌苗運(yùn)用在生產(chǎn)上,少有文章提及分子技術(shù)遺傳育種。本試驗(yàn)中采用葉片為外植體,建立八仙花高效再生體系,可為八仙花今后的分子育種提供基礎(chǔ)。
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(責(zé)任編輯:盧紅玲)
Leaf Regeneration Technology of Hydrangea Macrophylla
ZHAO Ying-ying,PENG Jin-hui,CHEN Xiao-chao,HUANG Yu
(College of Horticulture and Landscape,Hunan Agricultural University,Changsha 410128,PRC)
An efficaciousmethod for plants regenerate froMleaf exp lants of Hydrangeamacrophylla was established.The optimal callus inducingmediuMfor Hydrangeamacrophylla leaveswasMS+6-BA 2.5mg/L+IAA 0.2mg/L,and the callus induction rateswas 100%. The resultsshowed thatbud differentiation thegreatmediuMwasMS+6-BA 3.0mg/L+NAA 0.3mg/L,and thebud differentiations rate was80%.The proper timewhich could promote bud’sdifferentiation of the leafwas darkness treatment for15 days.Perpendicular to the main vein cut two kniveswas bestway to the bud differentiations.Buds over 3 cMheightcould forMadventitious roots in 1/2MS+50% vermiculite+50%perlitewithouthormone,and the rateof rootingwasup to 100%.
Hydrangeamacrophylla;leaf regeneration;dark treatment
S685.99
A
1006-060X(2015)04-0081-04
10.16498/j.cnki.hnnykx.2015.04.026
2014-10-30
國家自然基金青年項(xiàng)目(N o.31201656);湖南省大學(xué)生科技創(chuàng)新項(xiàng)目(C X1112)
趙盈盈(1989-),女,貴州綏陽縣人,碩士研究生,研究方向?yàn)橛^賞園藝分子技術(shù)。
彭盡暉