韓學(xué)府,王麗麗,王 健,陳 茜,楊 笛
(1濰坊市人民醫(yī)院,山東濰坊261000;2南京醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院)
動(dòng)脈粥樣硬化(AS)是心腦血管疾病的發(fā)病基礎(chǔ)。臨床上各種急癥多是由易損斑塊發(fā)生破裂及血栓形成,部分或完全阻塞管腔引起相應(yīng)器官缺血壞死所致,但尚不明確導(dǎo)致斑塊不穩(wěn)定及破裂的確切機(jī)制。載脂蛋白E(ApoE)缺陷小鼠普通飲食即可自發(fā)高脂血癥[1,2]。大量研究[3~5]報(bào)道了 ApoE 缺陷小鼠各級(jí)動(dòng)脈斑塊病變的過程,病變中包含大量脂質(zhì)、泡沫細(xì)胞和動(dòng)脈內(nèi)膜增生等,但很少觀察到斑塊破裂。已有的小鼠斑塊破裂模型由于實(shí)驗(yàn)周期長,重復(fù)性差,斑塊破裂率低等原因引起廣泛的爭議。目前尚沒有一種公認(rèn)的斑塊破裂模型。有研究者[6,7]通過在ApoE缺陷小鼠左側(cè)頸總動(dòng)脈結(jié)扎并套管誘發(fā)了明顯的斑塊破裂,創(chuàng)造出一種新的動(dòng)脈斑塊破裂模型。該模型由于簡便、快速、重復(fù)性好、斑塊破裂率高等優(yōu)點(diǎn)大大改善了以往模型的弊端。本研究建立了ApoE缺陷小鼠頸動(dòng)脈斑塊破裂模型,并初步探討該模型意義。
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 8周齡、雄性、ApoE缺陷小鼠36只,購自北京大學(xué)動(dòng)物試驗(yàn)中心,SPF級(jí),合格證號(hào)為SCXK(京)2006-0008,普通飲食。
1.2 試劑與儀器 兔抗小鼠vWF一抗(abcam,1∶800)、兔抗小鼠 αSMC-actin 一抗(abcam,1∶100)、生物素標(biāo)記山羊抗兔二抗(Vector Laboratories,1∶200)、R.T.U.ABC kit(Vector Laboratories,1∶200)、DAB 顯色液(Vector Laboratories,SK-4100)。雙目體式顯微鏡(南京江南永新光學(xué)有限公司)、熒光顯微鏡(Carl Zeiss,Inc)。
1.3 方法
1.3.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物分組 36只ApoE缺陷小鼠隨機(jī)分為6組:未結(jié)扎組、單純結(jié)扎組、結(jié)扎套管2天組、結(jié)扎套管4天組、結(jié)扎套管7天組和假手術(shù)組(套管后即取下),各6只。實(shí)驗(yàn)在濰坊醫(yī)學(xué)院動(dòng)物飼養(yǎng)中心SPF級(jí)環(huán)境中進(jìn)行。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)操作均遵循動(dòng)物實(shí)驗(yàn)規(guī)章制度。
1.3.2 小鼠斑塊破裂模型的制作 小鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后9周齡時(shí)開始實(shí)驗(yàn)。未結(jié)扎組繼續(xù)普通飲食4周,其他組小鼠用7.5%水合氯醛(0.1 mL/20 g,4 ℃避光保存)麻醉固定,體式鏡下沿頸部正中做一長約1 cm矢狀切口,逐層剝離組織,分離左側(cè)頸總動(dòng)脈,注意勿傷及迷走神經(jīng)和靜脈。用絲線在頸總動(dòng)脈分叉處近端結(jié)扎血管,完全阻斷血流,逐層縫合組織,普通小鼠飼料喂養(yǎng)4周,飲水不限。4周后,未結(jié)扎組與單純結(jié)扎組小鼠麻醉取材,套管各組和假手術(shù)組小鼠再次分離左側(cè)頸總動(dòng)脈,并于結(jié)扎處近端置一聚乙烯管(長度2 mm,外徑0.965 mm,內(nèi)徑0.580 mm,BD Biosciences),絲線固定套管,縫合組織。結(jié)扎套管2天組、結(jié)扎套管4天組、結(jié)扎套管7天組分別于套管后的第2天、第4天和第7天取材。假手術(shù)組小鼠套管后即刻取下套管,術(shù)后2周取材。
1.3.3 觀察方法 動(dòng)脈取材后,冷PBS清洗,浸入4%多聚甲醛固定。制作石蠟切片,行連續(xù)切片,每隔60 μm切片行HE染色和Masson染色,免疫組織化學(xué)觀察管腔斑塊內(nèi)α肌動(dòng)蛋白(αSMC-actin)和血管性血友病因子(vWF)的表達(dá)狀況。用HE染色切片觀察所有小鼠頸總動(dòng)脈內(nèi)斑塊形態(tài),使用Photoshop 7.0和Image Pro Plus 6.0研究頸總動(dòng)脈結(jié)扎、套管前后管腔狹窄程度(管腔狹窄率為新生內(nèi)膜面積占管腔面積的百分?jǐn)?shù))、中膜厚度(內(nèi)外彈力膜間垂直距離,分別于血管 0、2、4、6、8、10 點(diǎn)方向處測(cè)量,取其均值)、單位中膜面積細(xì)胞數(shù)(內(nèi)外彈力膜間細(xì)胞數(shù),以細(xì)胞核數(shù)為準(zhǔn))和斑塊內(nèi)膠原含量的變化。
1.3.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS16.0統(tǒng)計(jì)軟件。未結(jié)扎組與單純結(jié)扎組小鼠管腔狹窄程度、中膜厚度和單位中膜面積細(xì)胞數(shù)數(shù)據(jù)采用兩獨(dú)立樣本t檢驗(yàn);單純結(jié)扎組與套管各組管腔狹窄程度、中膜厚度、膠原含量和單位中膜面積細(xì)胞數(shù)數(shù)據(jù)采用單因素方差分析。P≤0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
未結(jié)扎組、單純結(jié)扎組管腔狹窄率分別為0.10% ±0.018%、0.88% ±0.033%,中膜厚度分別為(0.44 ±0.02)、(0.70 ±0.04)mm,單位中膜面積細(xì)胞數(shù)分別為(16.5 ±1.03)、(12.7 ±1.07)個(gè),兩組比較,P均<0.05。單純結(jié)扎組小鼠自結(jié)扎動(dòng)脈遠(yuǎn)端至近端血管可見管腔內(nèi)膜增生明顯,管腔狹窄,斑塊內(nèi)散在分布大量泡沫細(xì)胞,斑塊表面可見明顯纖維帽形成(圖1)。單純結(jié)扎組、結(jié)扎套管2天組、結(jié)扎套管4天組、結(jié)扎套管7天組和假手術(shù)組斑塊破裂分別為0、5、4、6、0只。未結(jié)扎組管壁內(nèi)無膠原表達(dá),其他各組斑塊內(nèi)及斑塊破裂處均有膠原表達(dá),但斑塊破裂后膠原明顯較少。單純結(jié)扎組、結(jié)扎套管2天組、結(jié)扎套管4天組、結(jié)扎套管7天組和假手術(shù)組單位斑塊面積內(nèi)膠原含量分別為0.47±0.04、0.09 ±0.03、0.12 ±0.04、0.16 ±0.08、0.41 ±0.07,單純結(jié)扎組與假手術(shù)組比較,P>0.05,單純結(jié)扎組與套管各組比較,P均<0.05。單純結(jié)扎組動(dòng)脈斑塊內(nèi)部和纖維帽處均可檢測(cè)到αSMC-actin表達(dá),但纖維帽處表達(dá)更明顯;斑塊破裂后局部仍有表達(dá),但纖維帽處表達(dá)減弱。vWF在部分斑塊內(nèi)表達(dá),在斑塊破裂處無表達(dá)(圖2)。
圖1 單純結(jié)扎組結(jié)扎動(dòng)脈血管HE染色(×400)
圖2 破裂斑塊αSMC-actin、vWF免疫組織化學(xué)染色
正常ApoE缺陷小鼠普通飲食4周后血管內(nèi)膜光滑平整,中膜僅由3~4層彈力膜及平滑肌細(xì)胞組成,外膜細(xì)胞成分少。動(dòng)脈結(jié)扎4周后,管腔內(nèi)出現(xiàn)了明顯的富含膠原的新生內(nèi)膜,該內(nèi)膜中伴有泡沫細(xì)胞聚集和纖維帽形成,通過免疫組織化學(xué)方法于斑塊內(nèi)可檢測(cè)到αSMC-actin及vWF因子的表達(dá),行Masson染色于斑塊內(nèi)檢測(cè)到膠原蛋白表達(dá)??梢姡覀兺ㄟ^結(jié)扎小鼠頸總動(dòng)脈,并飼以普通飲食,在其管腔內(nèi)形成了富含膠原、平滑肌細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、泡沫細(xì)胞的斑塊,雖然該斑塊與人類斑塊形態(tài)上仍有差異,但該新生內(nèi)膜中包含了纖維帽、脂質(zhì)池等斑塊的基本特征[8,9]。因此,該新生內(nèi)膜可稱其為斑塊。4周后通過血管外置管來誘發(fā)斑塊破裂。套管后2、4和7 d均出現(xiàn)了斑塊破裂,但套管7 d后全部小鼠斑塊均發(fā)生破裂。15只ApoE缺陷小鼠套管后發(fā)生斑塊破裂,其中發(fā)生破裂伴斑塊內(nèi)出血10(66.7%)只,發(fā)生破裂伴管腔內(nèi)血栓形成4(26.7%)只,發(fā)生斑塊脫落1(6.7%)只,提示本模型小鼠斑塊破裂的主要表現(xiàn)是斑塊破裂伴出血。假手術(shù)組小鼠均未出現(xiàn)斑塊破裂,提示手術(shù)操作過程不會(huì)對(duì)斑塊破裂造成影響。
單純結(jié)扎組較未結(jié)扎組管腔狹窄、管壁增厚、管壁單位面積細(xì)胞數(shù)減少,均提示結(jié)扎促使了血管發(fā)生病理性重塑。vWF僅在正常血管內(nèi)有表達(dá),結(jié)扎和套管后血管管腔內(nèi)均未見表達(dá),而在部分斑塊內(nèi)出現(xiàn)表達(dá),提示在該模型小鼠斑塊內(nèi)并發(fā)新生血管的形成,而此可導(dǎo)致斑塊不穩(wěn)定,容易發(fā)生破裂。大量的αSMC-actin細(xì)胞彌漫性分布于斑塊內(nèi),而在管壁中的表達(dá)減弱甚至消失,而且在管壁內(nèi)彈力膜斷裂處可見細(xì)胞發(fā)生遷移,均提示中膜平滑肌細(xì)胞可能遷移至管腔參與了斑塊的形成。有研究者[10,11]分別證明結(jié)扎ApoE缺陷小鼠頸總動(dòng)脈后管腔內(nèi)形成的斑塊內(nèi)富含平滑肌和巨噬細(xì)胞。套管后促使斑塊發(fā)生破裂,破裂斑塊纖維帽處αSMC-actin表達(dá)減弱,同時(shí)斑塊內(nèi)膠原含量也減少,提示平滑肌細(xì)胞的減少和膠原含量的下降可能為導(dǎo)致斑塊破裂的機(jī)制之一。
已有的ApoE缺陷小鼠斑塊破裂模型采用長時(shí)間(42~54周)普通飲食飼養(yǎng)[5],或飼以高脂飲食2個(gè)月[12]誘發(fā)頭臂干動(dòng)脈不穩(wěn)定斑塊形成,或通過血管外套管誘發(fā)動(dòng)脈斑塊形成,后轉(zhuǎn)入p53蛋白,加用血管收縮劑促進(jìn)斑塊破裂[13,14]或利用血流動(dòng)力學(xué)在低剪切力區(qū)形成不穩(wěn)定斑塊,加用血管收縮劑誘發(fā)破裂[15]等方法,但這些模型存在實(shí)驗(yàn)周期長,重復(fù)性差、斑塊破裂率低等問題。與這些模型相比,該模型具有簡便,快速,斑塊破裂率高,重復(fù)性好等優(yōu)勢(shì)。該動(dòng)物模型也有自己的缺陷和不足,如斑塊是由血管損傷后誘發(fā)形成,形態(tài)上并非典型的動(dòng)脈粥樣硬化斑塊,斑塊內(nèi)脂質(zhì)成分少,膠原分布彌漫,斑塊內(nèi)未見鈣化等。套管后斑塊內(nèi)多處出現(xiàn)出血,但并未見明顯的破裂口,斑塊內(nèi)出血可能由斑塊內(nèi)新生血管形成所致。因此,該模型小鼠斑塊破裂的機(jī)制有待進(jìn)一步研究。我們通過結(jié)扎頸總動(dòng)脈在管腔內(nèi)產(chǎn)生了富含平滑肌細(xì)胞、泡沫細(xì)胞和膠原的斑塊,通過套管誘發(fā)了斑塊破裂、出血及血栓形成。雖然該模型斑塊破裂的機(jī)制有待進(jìn)一步研究,但該模型小鼠為在體研究致斑塊破裂因素提供了良好的平臺(tái)。
[1]Jackson CL.Ruptures of delight A new mouse model of plaque rupture[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2006,26(6):1191-1192.
[2]Plump AS,Smith JD,Hayek T,et al.Severe hypercholesterolemia and atherosclerosis in apolipoprotein E-deficient mice created by homologous recombination in ES cells[J].Cell,1992,71(2):343-353.
[3]Falk E.Pathogenesis of atherosclerosis[J].J Am Coll Cardiol,2006,47(8 Suppl):C7-12.
[4]Nakashima Y,Plump AS,Raines EW,et al.ApoE-deficient mice develop lesions of all phases of atherosclerosis throughout the arterial tree[J].Arterioscler Thromb,1994,14(1):133-140.
[5]Rosenfeld ME,Polinsky P,Virmani R,et al.Advanced atherosclerotic lesions in the innominate artery of the ApoE knockout mouse[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2000,20(12):2587-2592.
[6]Sasaki T,Kuzuya M,Nakamura K,et al.A simple method of plaque rupture induction in apolipoprotein E-deficient mice[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2006,26(6):1304-1309.
[7]Nakamura K,Sasaki T,Cheng XW,et al.Statin prevents plaque disruption in apoE-knockout mouse model through pleiotropic effect on acute inflammation[J].Atherosclerosis,2009,206(2):355-361.
[8]Falk E,Shah PK,F(xiàn)uster V.Coronary plaque disruption[J].Circulation,1995,92(3):657-671.
[9]Kristensen SD,Ravn HB,F(xiàn)alk E.Insights into the pathophysiology of unstable coronary artery disease[J].Am J Cardiol,1997,80(5A):5E-9E.
[10]Kawasaki T,Dewerchin M,Lijnen HR,et al.Mouse carotid artery ligation induces platelet-leukocyte-dependent luminal fibrin,required for neointima development[J].Circ Res,2001,88(2):159-166.
[11]Ivan E,Khatri JJ,Johnson C,et al.Expansive arterial remodeling is associated with increased neointimal macrophage foam cell content:the murine model of macrophage-rich carotid artery lesions[J].Circulation,2002,105(22):2686-2691.
[12]Johnson J,Carson K,Williams H,et al.Plaque rupture after short periods of fat feeding in the apolipoprotein E-knockout mouse:model characterization and effects of pravastatin treatment[J].Circulation,2005,111(11):1422-1430.
[13]von der Thüsen JH,van Berkel TJ,Biessen EA.Induction of rapid atherogenesis by perivascular carotid collar placement in apolipoprotein E-deficient and low-density lipoprotein receptor-deficient mice[J].Circulation,2001,103(8):1164-1170.
[14]von der Thüsen JH,van Vlijmen BJ,Hoeben RC,et al.Induction of atherosclerotic plaque rupture in apolipoprotein E-/-mice after adenovirus-mediated transfer of p53[J].Circulation,2002,105(17):2064-2070.
[15]Cheng C,Tempel D,van Haperen R,et al.Atherosclerotic lesion size and vulnerability are determined by patterns of fluid shear stress[J].Circulation,2006,113(23):2744-2753.