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    豬流感病毒分子檢測(cè)技術(shù)研究進(jìn)展

    2014-11-15 05:11張文慧李雪嬌錢愛(ài)東
    江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2014年9期

    張文慧 李雪嬌 錢愛(ài)東

    摘要:豬流感是由豬流感病毒引起的一種急性、高度接觸傳染性豬傳染病,對(duì)養(yǎng)豬業(yè)危害極大。豬流感病毒也可感染人類,對(duì)人類的生命健康造成威脅。對(duì)豬流感病毒的分子檢測(cè)技術(shù)及我國(guó)豬流感的流行現(xiàn)狀進(jìn)行了綜述。

    關(guān)鍵詞:豬流感;流行現(xiàn)狀;分子檢測(cè)

    中圖分類號(hào): S858.28;S852.65+1文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A文章編號(hào):1002-1302(2014)09-0059-02

    收稿日期:2013-12-09

    基金項(xiàng)目:國(guó)家科技支撐計(jì)劃(編號(hào):2012BAD04B01-5)。

    作者簡(jiǎn)介:張文慧(1977—),女,吉林樺甸人,博士,副教授,從事微生物學(xué)研究。E-mail:215267612@qq.com。

    通信作者:錢愛(ài)東,從事微生物學(xué)研究。Tel:(0431)84533426;E-mail:qianaidongO115@163.com。豬流感(swine influenza,SI)是由豬流感病毒(swine influenza virus,SIV)引起的一種急性、高度接觸傳染性豬傳染病。1918年,美國(guó)首次報(bào)道了SI。1930年,Shope分離并鑒定了第一株豬流感病毒SIV A/Swine/Iowa/15/30(H1N1),該病毒被認(rèn)為是美國(guó)20世紀(jì)初發(fā)生的SI病原[1]。該病傳播迅速,往往2~3 d內(nèi)波及全群。康復(fù)豬、隱性感染豬是豬流感病毒的主要儲(chǔ)存宿主,也是豬流感的主要傳染源[2]。該病一年四季都可發(fā)生,在規(guī)?;B(yǎng)豬場(chǎng)難以根除,對(duì)養(yǎng)豬業(yè)危害極大。另外,SIV的HA受體結(jié)合位點(diǎn)具有與人流感病毒、禽流感病毒2種流感病毒受體相同的結(jié)合特異性,這決定了SIV不僅可以感染豬,同時(shí)也可感染人類[3]。歷史上SIV感染人的報(bào)道并不罕見(jiàn)。1976年美國(guó)新澤西州一名士兵死于古典H1N1 SIV感染,這是人類歷史上首例SIV致死人的報(bào)道,之后在其他地區(qū)也出現(xiàn)SIV感染人并致死的報(bào)告[4-5]。迄今為止,豬流感已遍及世界各地,已經(jīng)分離出H1N1、H1N2、 H2N3、H3N1、H1N7、H3N3、H4N6、H5N1等多種血清型,其中在豬群中廣泛流行的豬流感病毒主要有古典豬H1N1毒株、類禽H1N1毒株、類人H3N2毒株[6]。本研究對(duì)豬流感病毒的分子檢測(cè)技術(shù)以及豬流感在我國(guó)的流行現(xiàn)狀進(jìn)行綜述,旨在為開(kāi)展豬流感研究提供參考。

    1豬流感病毒分子檢測(cè)技術(shù)研究進(jìn)展

    1.1反轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)

    反轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(RT-PCR)是目前發(fā)展最成熟的分子診斷技術(shù),可以從基因水平檢測(cè)SIV的RNA,大大縮短了SI病原的檢出時(shí)間,為豬流感的快速診斷提供了更敏感、更快速的方法。該方法具有省時(shí)、省力、靈敏度高、特異性強(qiáng)、診斷速度快等優(yōu)點(diǎn),已在豬流感病毒檢測(cè)中得到廣泛應(yīng)用[7]。Lee等利用RT-PCR方法分別在臨床樣本中鑒定出H1、H3、N1、N2亞型豬流感病毒[8]。楊煥良等建立了豬流感病毒H1N1、H1N2、H3N2亞型多重RT-PCR診斷方法,可以在2個(gè)反應(yīng)體系中對(duì)豬流感HA、NA基因進(jìn)行亞型鑒定,極大地節(jié)約了人力與時(shí)間[9]。特異性試驗(yàn)檢測(cè)多重RT-PCR不能擴(kuò)增其他豬病毒核酸,核酸最低檢測(cè)量達(dá)2 ng。

    1.2實(shí)時(shí)熒光定量PCR

    實(shí)時(shí)熒光定量PCR(real-tmie flurescent quantitive polymerase chain reaction)是將熒光基團(tuán)加入PCR反應(yīng)體系中,利用熒光信號(hào)積累對(duì)整個(gè)PCR進(jìn)程進(jìn)行實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè),敏感性遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于普通的RT-PCR。實(shí)時(shí)PCR/RT-PCR技術(shù)是將PCR、核酸雜交、信號(hào)放大相結(jié)合的實(shí)時(shí)、在線檢測(cè)的定量PCR技術(shù),比常規(guī)PCR更靈敏、特異性更強(qiáng)。目前已被廣泛應(yīng)用于基因表達(dá)研究、轉(zhuǎn)基因研究、藥物療效分析、病原體檢測(cè)等諸多領(lǐng)域。此方法已被用于A型、B型流感病毒檢測(cè),檢測(cè)流感病毒的M 基因、HA基因來(lái)區(qū)別A型、B型流感病毒,或是用于區(qū)別A型流感病毒的亞型[10-11]。段廷云等建立了實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)H1N1亞型豬流感病毒,以NP基因的陽(yáng)性重組質(zhì)粒為熒光定量PCR標(biāo)準(zhǔn)品模板建立標(biāo)準(zhǔn)曲線。對(duì)探針濃度、引物濃度、鎂離子濃度、退火溫度進(jìn)行優(yōu)化,建立最佳熒光定量PCR反應(yīng)體系、擴(kuò)增程序[12]。熒光定量PCR的建立為早期診斷豬流感病毒、定量分析豬流感病毒感染程度奠定了基礎(chǔ)。張?zhí)璧冗x取豬流感病毒的NP基因序列設(shè)計(jì)引物、探針,建立了檢測(cè)SIV的TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法[13]。張鵬超等建立的豬流感病毒SYBR Green Ⅰ定量RT-PCR 檢測(cè)方法對(duì)SIV核酸檢測(cè)靈敏度達(dá)30 TCID[14]。陳艷等建立了H3N2亞型豬流感病毒實(shí)時(shí)熒光定量PCR快速檢測(cè)方法[15]。徐敏等建立了以RNA為反應(yīng)模板的一步法熒光定量RT-PCR診斷方法,該方法操作簡(jiǎn)單,可以用RNA作為模板直接檢測(cè),節(jié)省時(shí)間,特異性好,靈敏度高[16]。張春明等根據(jù)豬流感病毒(SIV) M 基因的保守序列,設(shè)計(jì)并合成1對(duì)特異性引物及TaqMan MGB 探針,建立了SIV M 基因?qū)崟r(shí)熒光定量PCR 檢測(cè)方法,結(jié)果表明,該方法樣品檢測(cè)與病毒滴定及病毒分離結(jié)果的符合率均達(dá)到100%,特異性強(qiáng),重復(fù)性好[17]。Real-Time PCR技術(shù)能精確檢測(cè)樣品中SIV的含量,對(duì)SI臨床檢測(cè)診斷具有較強(qiáng)的實(shí)用價(jià)值[18]。

    1.3基因芯片

    基因芯片技術(shù)指將大量探針?lè)肿庸潭ㄓ谥С治锖?,與標(biāo)記的樣品分子進(jìn)行雜交,通過(guò)檢測(cè)雜交信號(hào)強(qiáng)度而獲取樣品分子的數(shù)量、序列信息。通過(guò)設(shè)計(jì)不同的探針陣列,使用特定的分析方法,可將該技術(shù)用于基因表達(dá)檢測(cè)、突變檢測(cè)、多態(tài)性分析、基因文庫(kù)作圖、雜交測(cè)序、微生物檢測(cè)等領(lǐng)域[19]。陳紅軍等根據(jù)流感病毒血凝素、神經(jīng)氨酸酶、亞型基因序列間的差異性,分別設(shè)計(jì)H1、H3、H9、N1、N2的特異分型引物,根據(jù)M基因設(shè)計(jì)A型流感病毒的通用引物制成基因芯片,并對(duì)217 份不同地區(qū)的樣品進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果表明,該芯片可以同時(shí)檢測(cè)待檢樣品中5種亞型A型流感病毒,并顯示了較高的靈敏度、特異性,靈敏度比PCR 高1個(gè)稀釋度,比病毒分離高2個(gè)稀釋度[20]。楊林等根據(jù)豬流感病毒的M基因序列設(shè)計(jì)了1對(duì)特異性引物,通過(guò)將單鏈PCR產(chǎn)物與芯片雜交實(shí)現(xiàn)對(duì)SIV的檢測(cè)[21]。高淑霞等制備了檢測(cè)H1N1、H3N2、H5N1、H9N2 4種亞型豬流感病毒的基因芯片技術(shù),與PCR方法相比,該基因芯片技術(shù)顯示了較高的靈敏度[22]。王慧煜等建立了能同時(shí)鑒別甲型H1N1及豬流感病毒常見(jiàn)亞型的新型基因芯片檢測(cè)方法[23]。

    2我國(guó)豬流感流行現(xiàn)狀

    近年來(lái),我國(guó)很多學(xué)者分離到不同亞型的SIV[24]。李海燕等對(duì)黑龍江省、吉林省、遼寧省等地豬群進(jìn)行了豬流感血清學(xué)、病原學(xué)調(diào)查研究,從1 306份豬鼻棉拭子樣品及死亡豬肺、氣管樣品中分離到39株H3N2 亞型豬流感病毒、12株H1亞型豬流感病毒及其他亞型豬流感病毒[25]。辛?xí)怨獾冗M(jìn)行了黑龍江省豬流感病原學(xué)及血清學(xué)調(diào)查,1997—2002年共采集到414份豬血清樣品,經(jīng)豬流感血清學(xué)檢查出豬流感陽(yáng)性血清57份,平均陽(yáng)性率為14%;采集到豬的病毒材料275例,經(jīng)技術(shù)處理后接雞胚,分離出豬流感病毒26株,表明有些豬場(chǎng)污染情況比較嚴(yán)重,直接影響豬場(chǎng)的生存及發(fā)展[26]。王隆柏等于2005年8—12月對(duì)福建省豬群豬流感病毒感染情況進(jìn)行調(diào)查,豬流感H1亞型抗體檢測(cè)的平均陽(yáng)性率為530%,豬流感H3亞型抗體檢測(cè)的平均陽(yáng)性率為23.7%,由此可知,福建省豬群不僅存在不同程度的H1、H3亞型SIV感染,而且感染較為普遍[27]。康文彪等在甘肅省11個(gè)市州的豬群中檢出豬流感H3N2抗體陽(yáng)性118份,平均陽(yáng)性率為2789%,其中健康豬血清檢出陽(yáng)性42份,陽(yáng)性率為2234%;患病豬血清檢出陽(yáng)性76份,陽(yáng)性率為32.34%[28]。朱善德等對(duì)浙江省寧波市10個(gè)縣(市、區(qū))5個(gè)豬場(chǎng)的457份血清進(jìn)行豬流感H3N2抗體檢測(cè),結(jié)果表明,豬場(chǎng)陽(yáng)性率為2593%,全市豬群平均陽(yáng)性率為16.41%;檢測(cè)健康豬血清373份,陽(yáng)性率達(dá)11%;檢測(cè)發(fā)病豬血清84份,陽(yáng)性率達(dá)4048%[29]。姚敬明等2010年6月至2011年11月在山西省采集了1 018份血樣,用ELISA試劑盒檢測(cè)豬流感血清抗體,陽(yáng)性率為0.98%[30]。禹思宇等2010年6月采用間接ELISA及實(shí)時(shí)熒光RT-PCR技術(shù),對(duì)湖南省規(guī)模化豬場(chǎng)采集的 1 065 份豬血清、16 796份豬棉拭子、360份肺臟樣品進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果顯示,SIV H1N1抗體陽(yáng)性率達(dá)37.84%,H1N1豬流感病毒抗原陽(yáng)性率為0.12%[31]。由此可知,SIV在我國(guó)不同地區(qū)均呈現(xiàn)地方性流行趨勢(shì),豬群普遍受H1亞型、H3亞型SIV感染。

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