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    夏氏瘧原蟲感染過程中調(diào)節(jié)性B細(xì)胞的表達(dá)變化

    2014-10-25 08:40:40祁贊梅張婭琳趙國(guó)明曹雅明
    微生物學(xué)雜志 2014年2期
    關(guān)鍵詞:瘧原蟲免疫調(diào)節(jié)瘧疾

    祁贊梅,楊 冀,韓 雪,張婭琳,趙國(guó)明,曹雅明

    (中國(guó)醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院免疫學(xué)教研室,遼寧 沈陽(yáng) 110001)

    瘧疾是嚴(yán)重威脅人類健康的寄生原蟲感染性疾?。?]。在瘧原蟲誘導(dǎo)的免疫應(yīng)答中,前炎癥反應(yīng)與抗炎因素的平衡是清除寄生蟲感染并避免產(chǎn)生病理反應(yīng)的重要基礎(chǔ)[2-3]。白細(xì)胞介素-10(interleukin-10,IL-10)是建立這種平衡過程中具有重要免疫調(diào)節(jié)作用的關(guān)鍵細(xì)胞因子[3]。大量臨床研究顯示,瘧疾所導(dǎo)致的嚴(yán)重貧血與患者血漿中較低的IL-10水平有關(guān),而高原蟲血癥及部分腦瘧患者具有較高的血漿IL-10水平[4-8]。因此,IL-10水平異常與瘧疾臨床表現(xiàn)密切相關(guān),了解瘧疾免疫應(yīng)答過程中IL-10的產(chǎn)生及調(diào)節(jié)機(jī)制對(duì)于研究瘧疾免疫應(yīng)答調(diào)控以及預(yù)防和治療臨床并發(fā)癥具有重要意義。2002年Bhan及其同事[9]首次證實(shí)產(chǎn)生IL-10的B細(xì)胞能夠抑制炎癥反應(yīng),并將其稱為調(diào)節(jié)性 B細(xì)胞(regulatory T cells,Bregs)。Bregs的關(guān)鍵特性是產(chǎn)生IL-10,尚未發(fā)現(xiàn)Bregs獨(dú)有的表面分子或標(biāo)志性轉(zhuǎn)錄因子,其分化來源和機(jī)制也未闡明[10]。Bregs的主要生物學(xué)作用包括,通過與T細(xì)胞的同源相互作用和釋放IL-10抑制Th1和Th17介導(dǎo)的炎癥反應(yīng)[10-11];參與維持Tregs的數(shù)量和功能[11];分化為產(chǎn)生抗體的漿細(xì)胞[12]。Bregs的上述生物學(xué)作用使其在自身免疫性疾病、移植、腫瘤和部分感染性疾病中的作用逐漸受到重視,但目前對(duì)Bregs在瘧疾免疫應(yīng)答中的作用尚缺少了解。本研究利用P.c AS感染的小鼠模型,觀察了瘧疾免疫應(yīng)答過程中Bregs數(shù)量變化和表型特點(diǎn),以期探討B(tài)regs在瘧疾免疫調(diào)節(jié)中的作用地位。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物及瘧原蟲感染模型 6~8周齡、雌性BALB/c小鼠(購(gòu)自北京華阜康生物科技股份有限公司)經(jīng)腹腔感染1×106P.c As寄生的紅細(xì)胞(Parasitized Red Blood Cell,pRBC),感染不同時(shí)間的小鼠經(jīng)尾靜脈采血,制備薄血膜,Giemsa染色,鏡檢計(jì)數(shù)紅細(xì)胞感染率。

    1.1.2 主要儀器及試劑 流式細(xì)胞儀(FACS Calibur,BI);CD16/32 封閉抗體(93 克隆)、抗CDld-FITC單抗(1B1克隆)、抗 IL-10-PE單抗(JES5-16E3克隆)、抗CD19-PE/cy5單抗(6D5克隆)、抗 CD5-APC 單抗(53-7.3克隆)、抗 CD4-APC單抗(GK1.5克隆)及其相關(guān)熒光標(biāo)記同種型對(duì)照購(gòu)于Biolegend公司;固定透膜液(Fixation and Permeabilization Solution)購(gòu)于BD公司。

    1.2 方法

    1.2.1 實(shí)時(shí)定量 RT-PCR 在感染后第0、3、5、8天處死小鼠,取少量脾組織,使用Trizol試劑提取總RNA,按PrimeScript RT Reagent Kit說明書進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄。取100 ng RNA的逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物,按SYBR Premix Ex Ta試劑盒說明書配制20 μL PCR體系,于Corbett Rotor-Gene 6000(Corbett Life Science,Australia)實(shí)時(shí)定量PCR儀中進(jìn)行擴(kuò)增。熱循環(huán)過程:95℃預(yù)變性30 s;95℃ 5 s,60℃ 30 s,45個(gè)循環(huán)。使用核糖體 S17蛋白(RPS17)作為內(nèi)參,利用兩倍系列稀釋樣品制作標(biāo)準(zhǔn)曲線。使用的特異性引物序列如下:RPS17 F:5'-TGTCGGGATCCACCTCAATG-3';RPS17R:5'-CGCCATTATCCCCAGCAAG-3';IFN-γ F:5'-AAAGACAATCAGGCCATCAG-3';IFN-γ R:5'-TGGGTTGTTGACCTCAAACT-3';IL-10F:5'-CAGTACAGCCGGGAAGACA-3';IL-10 R:5'-GCATTAAGGAGTCGGTTAGCA-3'。

    1.2.2 流式細(xì)胞儀檢測(cè) 感染后第0、3、5、8天取小鼠脾臟,常規(guī)方法制備脾細(xì)胞懸液,用0.17 mol/L NH4Cl裂解紅細(xì)胞。脾細(xì)胞在添加PMA(50 ng/mL)、LPS(10 μg/mL)、Ionomycin(1 μg/mL)及 Monensin(20 μmol/L)的含 10%胎牛血清 (FCS)的RPMII 1640刺激培養(yǎng)5 h。取1×106脾細(xì)胞,用含2%BSA的PBS洗滌后,加入FcR III/II封閉20 min,然后加入特異性熒光抗體或相應(yīng)同種型對(duì)照抗體進(jìn)行多重表面染色。在表面染色后,固定透膜,加入抗IL-10單抗進(jìn)行細(xì)胞內(nèi)細(xì)胞因子染色。用固定透膜液充分洗滌后,重懸于0.5 mL 1%多聚甲醛中。流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測(cè),使用WINMID2.9軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。

    1.2.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 應(yīng)用SPSS 11.5統(tǒng)計(jì)學(xué)分析軟件,t檢驗(yàn)比較分析組內(nèi)和組間均值的顯著性差異。P﹤0.05為差異顯著。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 P.c AS感染后小鼠紅細(xì)胞感染率和脾細(xì)胞因子 IL-10、IFN-γmRNA 水平變化

    P.c AS感染小鼠于感染后第5天在外周血中出現(xiàn)瘧原蟲感染的紅細(xì)胞,隨后,原蟲血癥水平持續(xù)升高,于感染后第9天達(dá)到30%左右,并出現(xiàn)大量死亡,在感染后第10天全部死亡;脾組織細(xì)胞因子IL-10 mRNA水平在感染后第3天明顯升高,在感染后第5天達(dá)到高峰,此后緩慢下降,感染后第8天仍為未感染小鼠的10倍左右。IFN-γ mRNA水平在感染后3~5 d有小幅上升,約為未感染小鼠的5倍左右,感染后第8天恢復(fù)到正常水平。

    圖1 BALB/c小鼠感染P.c AS后的原蟲血癥水平(A)和脾細(xì)胞因子IL-10、IFN-γ mRNA水平(B)變化Fig.1 The changes of parasitaemia(A)and the splenic mRNA levels of IL-10、IFN-γ(B)of BALB/c mice infected with P.c AS

    2.2 P.c AS 感染后脾細(xì)胞中 CD19+IL-10+、CD4+IL-10+細(xì)胞百分比和絕對(duì)數(shù)量比較

    P.c AS感染后第3天,脾中CD19+細(xì)胞和CD4+細(xì)胞中IL-10+細(xì)胞百分比均出現(xiàn)有意義的升高。CD4+細(xì)胞中IL-10+細(xì)胞百分比在感染后第5天達(dá)到高峰,約占CD4+細(xì)胞的15%,感染后第8天回落至正常水平附近;CD19+細(xì)胞中IL-10+細(xì)胞百分比在感染后持續(xù)上升,至感染后第8天達(dá)到5%左右,未見回落趨勢(shì)。CD19+IL-10+、CD4+IL-10+細(xì)胞絕對(duì)數(shù)量變化趨勢(shì)與百分比變化趨勢(shì)相似,感染后第5天內(nèi)CD4+IL-10+細(xì)胞絕對(duì)數(shù)量高于CD19+IL-10+細(xì)胞數(shù)量,但感染后第8天,CD19+IL-10+細(xì)胞數(shù)量達(dá)到CD4+IL-10+細(xì)胞數(shù)的5倍左右。

    圖2 BALB/c小鼠感染P.c AS后脾內(nèi)CD4+和CD19+細(xì)胞中IL-10+細(xì)胞百分比變化(A)和絕對(duì)數(shù)量比較(B)Fig.2 The changes of the persentage of IL-10+cells in the splenic CD4+and CD19+cells and(A)the comparasion of their absolute numbers(B)in P.c AS-infected BALB/c mice

    2.3 CD19+IL-10+Bregs表型分析

    P.c AS感染后第8天,脾細(xì)胞中IL-10+細(xì)胞約占脾細(xì)胞總數(shù)的2%,其中80%以上為CD4-CD19loBregs細(xì)胞。對(duì)CD19loIL-10+Breg表面CD5和CD1d的分析顯示,約90%的CD19loIL-10+Bregs為CD5-細(xì)胞,其中一半以上為CD1d+細(xì)胞。

    圖3 P.c AS感染后第8天BALB/c小鼠脾內(nèi)IL-10+細(xì)胞表面分子的表達(dá)分析Fig.3 The expression of surface molecules on IL-10+cells in the spleen from BALB/c mice at day 8 post P.c AS infection

    3 討論

    由于IL-10來源復(fù)雜,作用多樣,目前對(duì)IL-10在瘧疾免疫應(yīng)答中的活化及其調(diào)節(jié)機(jī)制知之甚少。能夠產(chǎn)生IL-10的CD4+CD25+調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(regulatory T cells,Tregs)曾被認(rèn)為在瘧疾免疫調(diào)節(jié)中扮演關(guān)鍵角色,但研究顯示,Tregs只能部分地抑制保護(hù)性Th1應(yīng)答,并且在抑制免疫病理?yè)p傷方面的作用有限[13-14]。另有研究顯示,約氏瘧原蟲感染的小鼠模型中,IL-10在Tregs的免疫調(diào)節(jié)功能中并不起主要作用[15]。

    本研究顯示,P.c AS感染后脾組織 IL-10 mRNA水平隨原蟲血癥的升高而不斷上升,在感染初期的0~5 d內(nèi),T細(xì)胞是IL-10的主要來源,但其后,CD19+B細(xì)胞取代T細(xì)胞成為主要的IL-10產(chǎn)生細(xì)胞。在約氏瘧原蟲感染的小鼠中也觀察到類似的結(jié)果。由此可知,Bregs在鼠瘧模型中大量活化,是感染中后期IL-10的主要來源,但是此前Bregs的作用一直沒有得到足夠認(rèn)識(shí)。Bao等[16]在反復(fù)藥物治愈的對(duì)腦瘧有抵抗作用的小鼠中發(fā)現(xiàn),感染后第7天,血漿IL-10水平顯著高于對(duì)照組,顯著增高的IL-10+淋巴細(xì)胞亞群是CD19+細(xì)胞,被動(dòng)轉(zhuǎn)移脾CD19+B細(xì)胞可保護(hù)小鼠不發(fā)生腦瘧。Liu等[17]的研究也顯示過繼轉(zhuǎn)移Bregs而非Tregs對(duì)腦瘧的發(fā)生有抑制作用。這些結(jié)果都顯示,Bregs在瘧疾免疫應(yīng)答過程中可能發(fā)揮重要免疫調(diào)節(jié)作用。

    目前研究較多的小鼠脾中Bregs為B10細(xì)胞,其較為公認(rèn)的表型為 CD19+CD5+CD1dhi[9]。雖然有研究顯示伯氏瘧原蟲感染過程中有B10細(xì)胞的擴(kuò)增[17],但 Bao 等[16]的研究顯示反復(fù)藥物治愈的伯氏瘧原蟲感染小鼠中,高水平血漿IL-10的主要來源是CD5-CD19+細(xì)胞。本研究也顯示,夏氏瘧原蟲感染后第8天脾中分泌IL-10細(xì)胞主要為CD5-Bregs。這些結(jié)果提示,瘧疾模型中Bregs的表型和功能具有特殊性,有必要進(jìn)行更深入研究。

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