潘騰莉,孫莉,周興蓓,陳麗,於學(xué)軍,譚友文
(1.江蘇大學(xué)臨床醫(yī)學(xué)院,江蘇鎮(zhèn)江212001;2.鎮(zhèn)江市第三人民醫(yī)院肝病科,江蘇鎮(zhèn)江212005)
血清microRNA表達(dá)譜對(duì)原發(fā)性膽汁性肝硬化的診斷價(jià)值
潘騰莉1,2,孫莉2,周興蓓2,陳麗2,於學(xué)軍2,譚友文2
(1.江蘇大學(xué)臨床醫(yī)學(xué)院,江蘇鎮(zhèn)江212001;2.鎮(zhèn)江市第三人民醫(yī)院肝病科,江蘇鎮(zhèn)江212005)
目的:尋找原發(fā)性膽汁性肝硬化(primary biliary cirrhosis,PBC)患者血清中差異表達(dá)的microRNAs。方法:首先,將PBC組和健康對(duì)照組血清標(biāo)本各3例各自混合,采用Illumina GAⅡx高通量測(cè)序技術(shù)分析上述2組樣本,篩選出PBC患者與健康對(duì)照者表達(dá)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義的miRNAs;其次,采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR(qRT-PCR)對(duì)差異表達(dá)的miRNAs在擴(kuò)大標(biāo)本中進(jìn)行驗(yàn)證。最后,預(yù)測(cè)miRNAs的靶基因并進(jìn)一步分析其作用。結(jié)果:高通量測(cè)序技術(shù)篩選出143條miRNAs表達(dá)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,其中,22條差異倍數(shù)>2倍。經(jīng)過(guò)qRT-PCR驗(yàn)證,miR-122,miR-141,miR-34a在PBC組中的表達(dá)水平明顯高于對(duì)照組,與測(cè)序結(jié)果表達(dá)趨勢(shì)一致。靶基因預(yù)測(cè)結(jié)果顯示,在細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)中,miRNAs主要通過(guò)與蛋白質(zhì)結(jié)合發(fā)揮信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)的作用。結(jié)論:PBC患者存在差異表達(dá)的miRNAs,且其對(duì)PBC的診斷有一定的參考價(jià)值。
原發(fā)性膽汁性肝硬化;miRNA;高通量測(cè)序
MicroRNA(miRNA)是長(zhǎng)度18~22 bp的核苷酸序列,通過(guò)3′UTR區(qū)域與宿主mRNA結(jié)合,降解或抑制其表達(dá)。研究表明,miRNA在機(jī)體發(fā)育、腫瘤形成和轉(zhuǎn)移、細(xì)胞凋亡和壞死等眾多病理生理過(guò)程中發(fā)揮著重要的調(diào)控作用。其中,研究最多的是miRNA對(duì)腫瘤發(fā)生發(fā)展及預(yù)后的調(diào)控作用[1-4]。近年來(lái),miRNA與免疫調(diào)節(jié)機(jī)制的作用受到越來(lái)越多的關(guān)注[5-7]。原發(fā)性膽汁性肝硬化(primary biliary cirrhosis,PBC)是一種原因不明的,以肝內(nèi)中小膽管淋巴細(xì)胞浸潤(rùn)、小膽管炎性破壞、血清特征性抗線粒體抗體(antimitochondrial antibody,AMA)陽(yáng)性為特征的進(jìn)行性非化膿性破壞,主要臨床表現(xiàn)為肝內(nèi)膽汁淤積,是一種以女性發(fā)病為主的慢性自身免疫?。?,8]。研究表明,在環(huán)境或遺傳因素的作用下,免疫細(xì)胞分化、發(fā)育與活化過(guò)程中固有的精細(xì)調(diào)節(jié)機(jī)制被破壞,導(dǎo)致免疫系統(tǒng)對(duì)自身組織產(chǎn)生免疫應(yīng)答,這是PBC發(fā)生與發(fā)展的根本原因[9]。但是,具體的發(fā)病機(jī)制有待于進(jìn)一步闡明。本研究旨在尋找PBC患者中存在差異表達(dá)的miRNA,評(píng)估其對(duì)PBC的診斷價(jià)值,并對(duì)其作用機(jī)制進(jìn)行初步闡述。
1.1 病例
23例PBC患者和23例健康對(duì)照者血清標(biāo)本均來(lái)自于2012年6月至2013年11月鎮(zhèn)江市第三人民醫(yī)院的門診與住院患者。對(duì)照組為在本院體檢的健康志愿者。其中,隨機(jī)選取PBC組和對(duì)照組血清標(biāo)本各3例分別進(jìn)行混合測(cè)序,其余標(biāo)本用于實(shí)時(shí)熒光定量PCR(qRT-PCR)驗(yàn)證。
PBC的診斷標(biāo)準(zhǔn)參照國(guó)際診斷指南[9]:肝臟的組織學(xué)診斷與PBC一致;膽汁淤積的肝功能試驗(yàn);間接免疫熒光法測(cè)得抗線粒體抗體(AMA)陽(yáng)性。
本研究所有標(biāo)本的收集均通過(guò)鎮(zhèn)江市第三人民醫(yī)院倫理委員會(huì)的同意。所有受試者均簽署知情同意書(shū)。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 樣品采集 患者在初次門診或住院時(shí)采集全血5 mL于醫(yī)用血清管中(無(wú)肝素抗凝),上下輕輕顛倒混勻,立即4℃保存,于2 h內(nèi)4 000×g,離心10 min。取上層血清至1.5 mL離心管中(無(wú)RNA酶),13 000×g,離心2 min。最后將上清液轉(zhuǎn)移至2 mL離心管中(無(wú)RNA酶),每管吸入250μL血清進(jìn)行分裝,棄血細(xì)胞沉淀。置于-80℃長(zhǎng)期保存。
1.2.2 總RNA提取與文庫(kù)構(gòu)建 血清RNA的提取按照LCSTRK1001試劑盒說(shuō)明書(shū)操作。小RNA文庫(kù)構(gòu)建采用Illumina Truseq Small RNA Preparation kit試劑盒(LC Sciences)。總RNA鏈接5′接頭和3′接頭后經(jīng)RT-PCR擴(kuò)增形成小分子RNA的cDNA文庫(kù),經(jīng)6%電泳緩沖液變性膠電泳分離,將長(zhǎng)度為47 bp的小分子RNA切膠回收。
1.2.3 高通量測(cè)序 cDNA純化后經(jīng)Illumina′s Cluster Station生成DNA簇,然后行Illumina GAⅡx測(cè)序。通過(guò)SCS v2.8軟件實(shí)時(shí)分析測(cè)序圖片,并使用RTA v1.8.70提取堿基信息。提取的原始序列利用ACGT101-miR v4.2(LC Sciences)軟件分析,生成原始數(shù)據(jù)庫(kù)。為保證篩選到高質(zhì)量的基因結(jié)果,剔除可比對(duì)離列數(shù)<10的基因。最后分析PBC組和對(duì)照組之間差異表達(dá)的miRNA。
1.2.4 miRNA的靶基因預(yù)測(cè) 采用軟件Miranda和Target Scan在線服務(wù)站點(diǎn)輸入共同表達(dá)的miRNA進(jìn)行靶基因預(yù)測(cè)。
1.3 差異表達(dá)miRNA的qRT-PCR驗(yàn)證
隨機(jī)挑選差異表達(dá)的miRNA進(jìn)行驗(yàn)證,根據(jù)經(jīng)驗(yàn)以miR-24為內(nèi)參照[10]。取3μL總RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,然后取1.5μL cDNA加入20μL的反應(yīng)體系中。qRT-PCR反應(yīng)中樣本均重復(fù)3次,然后于Rotor-gene 3000儀器中完成相應(yīng)的循環(huán)。55℃30 s預(yù)變性,95℃2 min變性,經(jīng)過(guò)40個(gè)95℃15 s、60℃30 s循環(huán)后在65℃溶解。miRNA的表達(dá)量用Ct值表示。2組差異表達(dá)基因的相對(duì)表達(dá)量用2-△△Ct表示。
1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。計(jì)量資料用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差±s)表示,兩組間均數(shù)比較采用配對(duì)t檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 基本臨床參數(shù)
測(cè)序標(biāo)本中PBC組與對(duì)照組的臨床參數(shù)見(jiàn)表1。結(jié)果顯示,PBC組患者的血清總膽紅素(TBIL)、谷草轉(zhuǎn)氨酶(AST)、谷丙轉(zhuǎn)氨酶(ALT)、堿性磷酸酶(ALP)、谷氨酰轉(zhuǎn)肽酶(GGT)的表達(dá)水平明顯高于對(duì)照組(P均<0.05)。兩組患者的年齡差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。
表1 兩組血清相關(guān)指標(biāo)的比較 n=3,±s
表1 兩組血清相關(guān)指標(biāo)的比較 n=3,±s
組別 平均年齡(歲) TBIL(μmol/L) AST(U/L) ALT(U/L) ALP(U/L) GGT(U/L)對(duì)照組 31.67±8.02 12.50±1.08 29.00±6.00 27.00±3.61 54.67±13.05 33.67±7.77 PBC組 56.33±9.61 128.87±21.27 162.00±46.00 124.00±12.17 711.33±47.72 751.67±58.53 t值 -2.425 -9.563 -4.675 -10.778 -20.447 -19.403 P值 >0.05 <0.05 <0.05 <0.01 <0.01 <0.01
2.2 第2代測(cè)序結(jié)果分析
經(jīng)過(guò)初級(jí)分析后,對(duì)照組得到4 691 800條原始序列,去除冗余后剩余881 742條,占總序列18.79%;PBC組測(cè)得944 362條原始序列,462 263條可比對(duì)序列,占總序列48.95%。對(duì)兩組可比對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行長(zhǎng)度分析,顯示序列長(zhǎng)度主要集中在19 bp,占總數(shù)量的38.85%,符合miRNA的長(zhǎng)度分布范圍。見(jiàn)圖1。
2.3 差異表達(dá)和新發(fā)現(xiàn)miRNA
結(jié)果顯示,共143條miRNA表達(dá)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,其中PBC組表達(dá)上調(diào)105條,表達(dá)下調(diào)38條。已知的有137條,新發(fā)現(xiàn)6條,分別為hsa-miR-3665-p5,hsa-miR-3960-p3,hsa-miR-4508-p5,hsamiR-7641-2-p5,hsa-miR-7641-2-p3,PC-3p-755_3750。比
圖1 可比對(duì)RNA序列長(zhǎng)度分布圖
較上述差異序列,差異倍數(shù)>2倍的miRNA有22條,其中,miR-122差異倍數(shù)最大,在PBC組中比對(duì)照組高8.76倍;其次,miR-34a比對(duì)照組高7.26倍,miR-141比對(duì)照組高4.98倍;miR-26b是PBC組唯一下調(diào)的miRNA,比對(duì)照組下調(diào)2.49倍。見(jiàn)表2。
表2 兩組差異倍數(shù)>2倍的22條m iRNA序列
2.4 miRNA的qRT-PCR驗(yàn)證
選取差異倍數(shù)較大的3條miRNA(miR-122,miR-34a,miR-141),分別在20、12、18例PBC患者和20名健康對(duì)照標(biāo)本中進(jìn)行初步驗(yàn)證。結(jié)果顯示,miR-122在PBC患者中的表達(dá)量明顯升高,升高21.24倍(t=18.06,P<0.000 1),明顯高于測(cè)序結(jié)果的差異倍數(shù)。而miR-141和miR-34a的差異倍數(shù)與測(cè)序相符,分別為5.51和5.43倍(t=4.54,P= 0.000 8;t=7.03,P<0.000 1)。見(jiàn)圖2。
圖2 m iR-122,m iR-141和m iR-34a表達(dá)水平的驗(yàn)證
2.5 靶基因預(yù)測(cè)
Target Scan human 6.2軟件預(yù)測(cè)結(jié)果顯示,hasmiR-34a共有655個(gè)可能的靶基因;Miranda軟件預(yù)測(cè)has-miR-34a共有1 100個(gè)可能的靶基因;Bingo分析顯示,靶基因功能涵蓋生物過(guò)程、細(xì)胞組分和分子功能三大類生物功能,部分功能預(yù)測(cè)見(jiàn)圖3。
圖3 m iR-34a靶基因生物過(guò)程部分預(yù)測(cè)結(jié)果
高通量測(cè)序已廣泛應(yīng)用于小RNA或非編碼RNA(non-coding RNA)研究領(lǐng)域。相對(duì)于miRNA基因芯片而言,miRNA測(cè)序有更高的數(shù)據(jù)通量、更豐富的生物信息學(xué)分析,同時(shí),不受數(shù)據(jù)庫(kù)和物種的限制,并可檢測(cè)到多種未知的miRNA。本研究中,首先對(duì)PBC組和對(duì)照組血清標(biāo)本進(jìn)行混合后采取Illumina GAⅡx高通量測(cè)序的方法,經(jīng)過(guò)軟件分析后發(fā)現(xiàn),PBC組和對(duì)照組血清中143條miRNA的表達(dá)存在差異。該結(jié)果提示外周血清miRNA可作為PBC診斷的分子生物標(biāo)志物。以往對(duì)PBC的診斷主要集中在自身免疫抗體AMA陽(yáng)性以及肝穿刺病理檢查結(jié)果陽(yáng)性。近年來(lái),研究發(fā)現(xiàn)miRNA在疾病的診斷方面起著重要作用,尤其在腫瘤的早期診斷[11]、靶向性治療以及判斷預(yù)后方面有很大進(jìn)展[12]。
本研究中檢測(cè)到一些在肝臟疾病方面有特殊意義的已知miRNA。miR-122是肝臟特異性表達(dá)的miRNA,在慢性乙型肝炎[10]、慢性丙型肝炎[13]和原發(fā)性肝癌[14]等疾病中均存在差異表達(dá)。本研究證實(shí)了miR-122在PBC患者外周血中表達(dá)明顯升高。升高倍數(shù)的不同可能是由于研究前后采用的方法不同,測(cè)序采用的是混合標(biāo)本,對(duì)年齡、病情相似的患者血清混合后進(jìn)行高通量檢測(cè);而RT-PCR驗(yàn)證是來(lái)自于單獨(dú)擴(kuò)大血清樣本的單一序列檢測(cè)。因此,我們推測(cè),miR-122的表達(dá)量可能受肝臟損傷嚴(yán)重程度的影響,而與引起肝臟損傷致病因素的影響不明顯。miR-141屬于miR-200家族,在引起器官纖維化方面研究較多。本研究中PBC患者外周血清中miR-141的表達(dá)變化也可能與其影響膽管細(xì)胞上皮間質(zhì)表型轉(zhuǎn)變(epithelial-mesenchymal transition,EMT)的作用有關(guān)。另有研究顯示,在低氧致腎小管上皮細(xì)胞EMT模型中miR-34a表達(dá)下降,予以轉(zhuǎn)染miR-34a可有效預(yù)防低氧導(dǎo)致的EMT,而抑制miR-34a的表達(dá)可促進(jìn)EMT,同時(shí)證實(shí)這一作用通過(guò)Notch信號(hào)通路完成[15]。
本研究綜合2種miRNA作用靶基因的結(jié)果,推測(cè)miRNA在細(xì)胞內(nèi)通過(guò)與編碼蛋白質(zhì)的靶基因結(jié)合發(fā)揮分子生物功能,包括生物過(guò)程、細(xì)胞組分、分子功能等。但本研究在原始數(shù)據(jù)方面尚存在一定的不足,如miRNA靶基因預(yù)測(cè)軟件數(shù)據(jù)有較高的假陽(yáng)性率、相關(guān)生物學(xué)知識(shí)和基因數(shù)據(jù)尚不全面等,可能影響分析結(jié)果,有待進(jìn)一步研究。
[1] Zhao H,Shen J,Medico L,et al.A pilot study of circulatingmiRNAs as potential biomarkers of early stage breast cancer[J].PLoSOne,2005,5(10):e13735.
[2] Zhang HH,Wang XJ,LiGX,etal.Detection of let-7a microRNA by real-time PCR in gastric carcinoma[J].World JGastroenterol,2007,13(20):2883-2888.
[3] Redova M,Sana J,Slaby O.Circulating miRNAs as new blood-based biomarkers for solid cancers[J].Future Oncol,2013,9(3):387-402.
[4] De Guire V,Robitaille R,Tetreault N,et al.CirculatingmiRNAs as sensitive and specific biomarkers for the diagnosis and monitoring of human diseases:promises and challenges[J].Clin Biochem,2013,46(10/11):846-860.
[5] Banales JM,Sáez E,Uriz M,et al.Up-regulation of microRNA 506 leads to decreased Cl-/HCO3-anion exchanger 2 expression in biliary epithelium of patients with primary biliary cirrhosis[J].Hepatology,2012,56(2):687-697.
[6] Ninomiya M,Kondo Y,F(xiàn)unayama R,et al.Distinct microRNAs expression profile in primary biliary cirrhosis and evaluation of miR505-3p and miR197-3p as novel biomarkers[J].PLoSOne,2013,8(6):e66086.
[7] Gu Y,Li M,Wang T,et al.Lactation-related microRNA expression profiles of porcine breastmilk exosomes[J].PLos One,2012,7(8):e43691.
[8] Wu SJ,Yang YH,Tsuneyama K,etal.Innate immunity and primary biliary cirrhosis:activated invariantnatural killer T cells exacerbatemurine autoimmune cholangitis and fibrosis[J].Hepatology,2011,53(3):915-925.
[9] Lindor KD,Gershwin ME,Poupon R,et al.Primary biliary cirrhosis[J].Hepatology,2009,50(1):291-308.
[10] Zhang H,Li QY,Guo ZZ,et al.Serum levels of microRNAs can specifically predict liver injury of chronic hepatitis B[J].World JGastroenterol,2012,18(37):5188-5196.
[11] Kishimoto T,EguchiH,Nagano H,et al.PlasmamiR-21 is a novel diagnostic biomarker for biliary tract cancer[J].Cancer Sci,2013,104(12):1626-1631.
[12] Habbe N,Koorstra JB,Mendell JT,et al.MicroRNA miR-155 is a biomarker of early pancreatic neoplasia[J].Cancer Biol Ther,2009,8(4):340-346.
[13] Hou W,Tian Q,Zheng J,etal.MicroRNA-196 represses Bach1 protein and hepatitis C virus gene expression in human hepatoma cells expressing hepatitis C viral proteins[J].Hepatology,2010,51(5):1494-1504.
[14] Liu Y,Ding Y,Huang J,et al.MiR-141 suppresses themigration and invasion of HCC cells by targeting Tiam1[J].PLoSOne,2014,9(2):e88393.
[15] Du R,Sun W,Xia L,et al.Hypoxia-induced downregulation ofmicroRNA-34a promotes EMT by targeting the Notch signaling pathway in tubular epithelial cells[J].PLoSOne,2012,7(2):e30771.
A pilot study of serum m icroRNA profiles as a novel biomarker for primary biliary cirrhosis
PAN Teng-li1,2,SUN Li2,ZHOU Xing-bei2,CHEN Li2,YU Xue-jun2,TAN You-wen2
(1.School ofClinicalMedicine,Jiangsu University,Zhenjiang Jiangsu 212001;2.Departmentof Liver Diseases,the Third People′s Hospital of Zhenjiang,Zhenjiang Jiangsu 212005,China)
Objective:To screen serum microRNA profiles by high throughput sequencing technology method as diagnostic markers for primary biliary cirrhosis(PBC).M ethods:First,we employed Illumina GA IIx deep sequencing for the initial screening to indicate the read numbers ofmicroRNAs expression in serum pool of 3 PBC and 3 healthy controls,respectively.Second,qRT-PCR validation study was conducted in more samples.Finally,computer analysiswas conducted to predict target genes and biological functions.Results:Twenty-two miRNAs,whose fold change were greater than 2,were filtered out by high throughput sequencing technology.After qRT-PCR validation,the serum expression levels of miR-122,miR-34a and miR-141 were significantly higher in PBC,consistent with the sequencing results.Target genes of prediction results showed thatmicroRNAs played a role in signal transduction,in the nucleus and cytoplasm,through combined with protein.Conclusion:The distinguishing expressed microRNAs had certain reference value on the diagnosis of PBC.
primary biliary cirrhosis;microRNAs;high-throughput sequencing
R575.22
A
1671-7783(2014)03-0230-05
10.13312/j.issn.1671-7783.y140045
江蘇省自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(BK2011515)
潘騰莉(1988—),女,碩士研究生;譚友文(通訊作者),主任醫(yī)師,碩士生導(dǎo)師E-mail:tyw915@sina.com
2014-03-05 [編輯]劉星星