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    電針對腦缺血再灌注大鼠齒狀回Nestin、GFAP表達(dá)的影響

    2014-07-05 08:06:38張業(yè)貴李懷斌
    關(guān)鍵詞:模型

    張業(yè)貴 龔 鑫 李懷斌

    (皖南醫(yī)學(xué)院解剖學(xué)教研室,安徽 蕪湖 241002)

    缺血性腦卒中是臨床上常見的急性腦血管病,具有高致殘率的特點(diǎn),嚴(yán)重影響了患者的生存質(zhì)量。傳統(tǒng)觀點(diǎn)認(rèn)為,腦缺血致殘的原因,與成年哺乳動(dòng)物腦內(nèi)神經(jīng)元缺乏再生能力、損傷后易形成膠質(zhì)瘢痕有關(guān)。因此,近年來,與神經(jīng)再生有關(guān)的神經(jīng)干細(xì)胞,與膠質(zhì)瘢痕形成有關(guān)的反應(yīng)性星形膠質(zhì)細(xì)胞越來越受到人們的重視,成為神經(jīng)科學(xué)領(lǐng)域研究的熱點(diǎn)。針灸在臨床上對腦缺血有良好的治療作用,但其具體作用機(jī)制尚不明確,本實(shí)驗(yàn)參照Longa等[1],采用線栓法制作大腦中動(dòng)脈栓塞(MCAO)模型,通過動(dòng)態(tài)觀察腦缺血再灌注大鼠齒狀回巢蛋白(nestin)和膠質(zhì)纖維酸性蛋白(glial fibrilliary acidic protein,GFAP)表達(dá)的變化,以及電針對內(nèi)源性神經(jīng)干細(xì)胞增殖、星形膠質(zhì)細(xì)胞活化狀態(tài)的影響,探討電針治療腦梗死的可能機(jī)制。

    材料和方法

    1.材料、試劑及儀器

    成年SD大鼠72只,體重250-300g,由浙江省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,合格證號:SCXK(浙)2008-0033。兔抗nestin、兔抗GFAP(北京博奧森公司)及SABC免疫組化試劑盒(武漢博士德公司),低頻電子脈沖治療儀(G6805-2,上海醫(yī)用電子儀器廠),Olympus顯微鏡及成像系統(tǒng)(日本),Image-J(National Institute of Health,美國)圖像分析軟件。

    2.造模及分組

    采用線栓法建立MCAO再灌注模型,用3%戊巴比妥鈉(1ml/kg)腹腔注射麻醉大鼠,麻醉生效后,將大鼠仰臥固定,去頸部毛,碘伏消毒。沿頸部正中切開皮膚,在右側(cè)肌肉深部分離頸總動(dòng)脈(CCA)、頸外動(dòng)脈(ECA)、頸內(nèi)動(dòng)脈(ICA),結(jié)扎并剪斷ECA遠(yuǎn)端。暫時(shí)夾閉ICA、CCA,用眼科剪將ECA結(jié)扎處近端剪一小口,從此口插入釣魚線(直徑0.26mm,頭端燒成圓形),經(jīng)ICA插至大腦前動(dòng)脈(ACA),魚線平均插入深度為18.5±0.5mm至微感阻力。結(jié)扎ECA殘端以固定魚線和防止出血,將栓線末端留少許在外。缺血2h后,將栓線拉出至ECA結(jié)扎端進(jìn)行再灌注。造模后大鼠出現(xiàn)患側(cè)Horner綜合征,對側(cè)不同程度偏癱體征,視為模型成功。假手術(shù)組僅暴露CCA、ECA、ICA,縫合皮膚即可。將造模成功的大鼠隨機(jī)分模型組、電針組,每組再分為3、7、14和21d等4個(gè)亞組,每個(gè)亞組6只大鼠,另設(shè)各時(shí)間點(diǎn)假手術(shù)組各6只。

    3.電針方法

    取百會和大椎穴,用30號1寸毫針電針,頻率2Hz,強(qiáng)度以大鼠頭部能輕微抖動(dòng)為度。持續(xù)30 min,每天1次,分別治療3d、7d、14d、21d。假手術(shù)組和模型組給予常規(guī)飼養(yǎng),不做任何處理。

    4.行為學(xué)觀察

    各組大鼠在處死前進(jìn)行神經(jīng)功能評分,評分標(biāo)準(zhǔn)參照Longa[1]評分法。0分:正常;1分:左側(cè)前肢不能完全伸直;2分:向左側(cè)轉(zhuǎn)圈;3分:行走向左側(cè)傾倒;4分:不能自己行走或昏迷。

    5.取材和免疫組織化學(xué)染色

    用30mg/kg戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉,剪開胸腔暴露心臟,穿刺針經(jīng)左心室至升主動(dòng)脈,先快速灌注100ml生理鹽水,再用4℃1%多聚甲醛300 ml灌注,30min內(nèi)完成。斷頭取腦,于4%多聚甲醛中固定,過夜,常規(guī)石蠟包埋。連續(xù)切片,片厚5 μm。常規(guī)脫蠟至水,微波熱抗原修復(fù),一抗nestin、GFAP均選用兔抗人多克隆抗體(北京博奧森公司),稀釋度為1∶100,陰性對照實(shí)驗(yàn)用PBS代替一抗,余步驟相同,按照SABC(武漢博士德公司)試劑盒說明書進(jìn)行免疫組化染色,光學(xué)顯微鏡下觀察結(jié)果。

    6.細(xì)胞計(jì)數(shù)及灰度值測定

    每亞組選取相同冠狀切面的切片各12張(其中每只大鼠選取2張),利用讀數(shù)顯微鏡在10×40倍視野下對每張切片DG區(qū)域的nestin、GFAP陽性細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù),使用Image-J圖像分析軟件檢測細(xì)胞平均灰度值。

    7.統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

    使用SPSS 16.0統(tǒng)計(jì)軟件分析數(shù)據(jù),結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,采用單因素方差分析,兩兩比較用q檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    結(jié) 果

    1.各組大鼠神經(jīng)功能缺損評分比較

    假手術(shù)組大鼠在各時(shí)間點(diǎn)未見神經(jīng)功能缺損,評分均為0分(未列數(shù)據(jù));模型組神經(jīng)功能缺損癥狀明顯,3d時(shí)最重,且功能恢復(fù)較慢 (7d、14d,P>0.05),而電針組在7d、14d、21d時(shí)神經(jīng)功能缺損癥狀明顯改善,評分和同時(shí)間點(diǎn)模型組之間,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義 (P<0.01或P<0.05)(表1)。

    表1 各組大鼠神經(jīng)功能缺損評分(n=6,±s)Table1 Table1Neurologic imparment scores in each group(n=6,±s)

    表1 各組大鼠神經(jīng)功能缺損評分(n=6,±s)Table1 Table1Neurologic imparment scores in each group(n=6,±s)

    *P<0.05,**P<0.01,與同時(shí)間點(diǎn)模型組比較(Compared with model group at the same time);△P<0.01,與同組3d比較(Compared with the same group of 3day)

    組別(Group)3d 7d 14d 21d模型組(Model Group) 3.17±0.75 2.67±0.52 2.50±0.55 2.17±0.75△電針組(EA Group) 2.83±0.41 1.83±0.75*△ 1.33±0.52**△ 1.17±0.41**△

    2.各組大鼠齒狀回nestin陽性細(xì)胞數(shù)及平均灰度值比較

    表2、圖1示,在正常大鼠齒狀回顆粒細(xì)胞下區(qū),nestin陽性細(xì)胞呈棕黃色,以胞漿著色為主,表達(dá)較弱;模型組nestin的陽性細(xì)胞數(shù)在3d時(shí)開始增加,7d時(shí)數(shù)目最多(P<0.01),灰度值明顯降低(P<0.01),14d時(shí)表達(dá)稍有下降,但仍顯著高于假手術(shù)組(P<0.05),21d時(shí)表達(dá)降低;與模型組比較,各時(shí)間點(diǎn)電針組陽性細(xì)胞數(shù)目均顯著增加,灰度值降低 (P<0.01或P<0.05)。

    表2 各組大鼠齒狀回nestin陽性細(xì)胞數(shù)及平均灰度值(n=6,±s)Table2 The number of nestin IR positive cells and average gray value in DG in each group(n=6,±s)

    表2 各組大鼠齒狀回nestin陽性細(xì)胞數(shù)及平均灰度值(n=6,±s)Table2 The number of nestin IR positive cells and average gray value in DG in each group(n=6,±s)

    *P<0.05,**P<0.01,與同時(shí)間點(diǎn)假手術(shù)組比較(Compared with sham operation group at the same time);△P<0.05,△△P<0.01,與同時(shí)間點(diǎn)模型組比較(Compared with model group at the same time)

    組別(Group)細(xì)胞數(shù)(個(gè)/400倍視野)(Cell number/×400)平均灰度值(average gray value)3d假手術(shù)組(Sham operation group of 3day)5.50±4.30 183.49±4.06 3d模型組(model group of 3day) 15.67±5.60** 179.03±3.50 3d電針組(EA group of 3day) 20.75±6.30**△ 172.41±6.73**△△7d假手術(shù)組(Sham operation group of 7day) 5.08±4.01 182.67±3.98 7d模型組(model opertion group of 7day) 21.33±6.51** 175.04±7.77**7d電針組(EA group of 7day) 29.42±6.56**△△ 155.54±8.68**△△14d假手術(shù)組(Sham operation group of 14day) 6.42±4.76 183.62±4.08 14d模型組(model opertion group of 21day) 17.00±6.93** 177.23±5.85*14d電針組(EA group of 14day) 22.17±7.17**△ 171.42±5.81**△21d假手術(shù)組(Sham operation group of 21day) 5.83±5.01 182.25±5.28 21d模型組(model opertion group of 21day) 8.83±3.35 179.64±6.91 21d電針組(EA group of 21day) 14.33±6.64**△ 174.40±6.12**△

    3.各組大鼠齒狀回GFAP陽性細(xì)胞數(shù)及平均灰度值比較

    各組大鼠齒狀回均有GFAP陽性表達(dá),多呈棕褐色,以胞漿和突起著色為主,假手術(shù)組胞體較小,突起較短,模型組和電針組胞體較大,突起較長,染色較深。假手術(shù)組GFAP的表達(dá)較少;模型組各時(shí)間點(diǎn)陽性細(xì)胞數(shù)較假手術(shù)組均明顯增加,灰度值降低(P<0.05或P<0.01),3d時(shí)表達(dá)開始增高,14 d達(dá)高峰,21d有所下降;與模型組比較,電針組在7d、14d時(shí)GFAP的表達(dá)強(qiáng)度均明顯降低,灰度值增加(P<0.05或P<0.01),但陽性細(xì)胞數(shù)變化不明顯(P>0.05),電針21d時(shí)GFAP陽性細(xì)胞數(shù)及表達(dá)強(qiáng)度均顯著下降(P<0.01)(表3、圖2)。

    表3 各組大鼠齒狀回GFAP陽性細(xì)胞數(shù)及平均灰度值(n=6,±s)Table3 The number of nestin GFAP IR positive cells and average gray value in DG in each group(n=6,±s)

    表3 各組大鼠齒狀回GFAP陽性細(xì)胞數(shù)及平均灰度值(n=6,±s)Table3 The number of nestin GFAP IR positive cells and average gray value in DG in each group(n=6,±s)

    *P<0.05,**P<0.01,與同時(shí)間點(diǎn)假手術(shù)組比較(Compared with sham operation group at the same time);△P<0.05,△△P<0.01,與同時(shí)間點(diǎn)模型組比較(Compared with model group at the same time)

    組別(Group)細(xì)胞數(shù)(個(gè)/400倍視野)(Cell number/×400)平均灰度值(average gray value)3d假手術(shù)組(Sham operation group of 3day)17.25±4.11 184.27±8.92 3d模型組(model group of 3day) 24.08±5.60** 175.16±6.43*3d電針組(EA group of 3day) 25.00±5.83** 177.55±8.49 7d假手術(shù)組(Sham operation group of 7day) 16.17±5.31 182.44±7.97 7d模型組(model opertion group of 7day) 28.75±5.82** 171.11±7.93**7d電針組(EA group of 7day) 27.75±5.01** 178.99±9.57△14d假手術(shù)組(Sham operation group of 14day) 15.33±6.10 180.82±7.51 14d模型組(model opertion group of 14day) 37.25±6.98** 154.53±8.04**14d電針組(EA group of 14day) 33.58±6.72** 172.49±12.03*△△21d假手術(shù)組(Sham operation group of 21day) 15.08±5.26 181.95±6.45 21d模型組(model opertion group of 21day) 26.92±6.37** 169.56±9.97**21d電針組(EA group of 21day) 19.83±6.91△△ 181.90±10.53△△

    討 論

    Nestin是一種胚胎性中間絲蛋白,在成年中樞神經(jīng)系統(tǒng)中,表達(dá)于多潛能神經(jīng)前體細(xì)胞胞質(zhì)中,因此nestin已成為鑒定神經(jīng)干細(xì)胞的重要標(biāo)志蛋白之一[2]。成年鼠海馬齒狀回顆粒下層存在著神經(jīng)干細(xì)胞,為了保持齒狀回顆粒細(xì)胞定期死亡后細(xì)胞數(shù)量的穩(wěn)定,顆粒下層的神經(jīng)干細(xì)胞會以同樣的速度進(jìn)行增殖[3]。在缺血等病理性損傷時(shí),齒狀回神經(jīng)干細(xì)胞也可以增殖、遷移及分化為神經(jīng)元,參與受損神經(jīng)元的自我修復(fù),但腦缺血刺激產(chǎn)生的內(nèi)源性神經(jīng)干細(xì)胞數(shù)量不足,而且調(diào)節(jié)干細(xì)胞增殖、遷移、分化以及神經(jīng)元修復(fù)和突觸形成的因子也不足[4],因此,需要介入適當(dāng)?shù)闹委熓侄我源龠M(jìn)內(nèi)源性神經(jīng)干細(xì)胞的增殖和分化,加速神經(jīng)功能的恢復(fù)[5]。

    Kluska等[6]研究發(fā)現(xiàn),成年大鼠局灶性腦梗死后,能刺激齒狀回區(qū)的神經(jīng)再生,本研究結(jié)果也顯示,腦缺血后齒狀回顆粒下區(qū)nestin在各時(shí)間點(diǎn)的表達(dá)均增加,7d時(shí)表達(dá)最多,但隨著時(shí)間的延長,nestin陽性細(xì)胞逐漸減少,表達(dá)強(qiáng)度也逐漸降低,神經(jīng)缺損癥狀恢復(fù)不明顯,結(jié)果表明腦缺血可以刺激內(nèi)源性神經(jīng)干細(xì)胞的增殖,但這種自我調(diào)節(jié)的能力是有限的,尚不足以持續(xù)修復(fù)受損神經(jīng)元。在給予電針治療后,nestin陽性細(xì)胞的數(shù)量及表達(dá)強(qiáng)度均顯著提高,神經(jīng)缺損評分明顯降低,說明電針可以增強(qiáng)腦缺血后內(nèi)源性神經(jīng)干細(xì)胞的增殖,改善神經(jīng)功能。有研究發(fā)現(xiàn),腦損傷后神經(jīng)干細(xì)胞可以分化為未成熟神經(jīng)細(xì)胞和星型膠質(zhì)細(xì)胞[7],因此電針治療后,可能通過促進(jìn)神經(jīng)干細(xì)胞的增殖及分化,修復(fù)受損神經(jīng)元,恢復(fù)神經(jīng)功能[8],這可能是電針對腦缺血產(chǎn)生治療作用的重要機(jī)制之一。

    星形膠質(zhì)細(xì)胞是中樞神經(jīng)系統(tǒng)中數(shù)量最多的一種神經(jīng)細(xì)胞,廣泛分布于腦的各個(gè)區(qū)域,能維持神經(jīng)元的正常功能,在神經(jīng)元的發(fā)育、遷移、突觸連接的形成中扮演了重要角色[9,10]。近年來研究發(fā)現(xiàn),腦缺血后星形膠質(zhì)細(xì)胞增生活躍,星形膠質(zhì)細(xì)胞的反應(yīng)性增生可以吞噬壞死組織碎片、充填神經(jīng)元損傷后產(chǎn)生的空缺,并可以降低谷氨酸等有毒分子對神經(jīng)元的毒性作用,還能夠分泌多種具有神經(jīng)營養(yǎng)和保護(hù)作用的細(xì)胞因子等[11],因而對受損神經(jīng)元起到代償和修復(fù)作用。但過度增殖的星形膠質(zhì)細(xì)胞,也可能分泌毒性細(xì)胞因子等有害物質(zhì),加劇神經(jīng)元的損傷,并且可形成瘢痕,導(dǎo)致軸突的再生障礙[12]。

    GFAP是星形膠質(zhì)細(xì)胞的特異性蛋白,其表達(dá)量的多少可作為腦損傷后星型膠質(zhì)細(xì)胞活化及增殖的標(biāo)志[13]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,腦缺血后7d時(shí)齒狀回GFAP的表達(dá)即明顯增加,至14d時(shí)陽性細(xì)胞表達(dá)最強(qiáng)烈,突起變粗,21d時(shí)的表達(dá)依然較高,顯示腦缺血能明顯刺激星形膠質(zhì)細(xì)胞的反應(yīng)性增生,是機(jī)體的代償性保護(hù)反應(yīng)。電針治療7、14、21d后,GFAP的表達(dá)強(qiáng)度明顯降低,相同時(shí)間點(diǎn)的神經(jīng)功能評分顯著降低,表明電針抑制了星形膠質(zhì)細(xì)胞的過度活化及增殖狀態(tài),為神經(jīng)再生和功能重建提供了更有利的生存環(huán)境[14,15]。楊卓欣等[16]研究證實(shí),腦缺血后海馬部位星形膠質(zhì)細(xì)胞增生活躍,電針治療后可明顯抑制其過度增殖,并可以促進(jìn)其分化。

    綜上所述,本研究結(jié)果顯示,電針能明顯改善腦缺血大鼠的神經(jīng)功能缺損癥狀,其作用機(jī)制可能與其促進(jìn)內(nèi)源性神經(jīng)干細(xì)胞的增殖和神經(jīng)再生,下調(diào)GFAP的持續(xù)過度表達(dá),干預(yù)星型膠質(zhì)細(xì)胞的活化狀態(tài)有關(guān)。但神經(jīng)干細(xì)胞和星型膠質(zhì)細(xì)胞向神經(jīng)元發(fā)生分化、遷移的分子機(jī)制如何,尚需進(jìn)一步深入研究。

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