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    大黃炮制前后物質(zhì)基礎(chǔ)變化研究

    2014-05-21 08:55:36胡永淑成都市第六人民醫(yī)院藥劑科成都610051
    中國藥房 2014年11期
    關(guān)鍵詞:質(zhì)量

    胡永淑(成都市第六人民醫(yī)院藥劑科,成都 610051)

    中藥炮制是在中醫(yī)藥理論指導(dǎo)下,按照中藥藥理及藥物配伍需求,將藥材或飲片進一步加工,使其在炮制后藥性發(fā)生一定改變,降低或消除毒性及副作用,或者增加某方面療效,達到增效減毒的目的,使其更適應(yīng)臨床用藥需求。而炮制前后藥材或飲片自身化學(xué)組分及生物活性變化規(guī)律,可以豐富藥性理論,闡明炮制原理,為制訂不同炮制品的質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)提供可靠依據(jù)[1]。

    大黃,始載于《神農(nóng)本草經(jīng)》,為蓼科植物掌葉大黃、唐古特大黃或藥用大黃等的干燥根和根莖,味苦,性寒,歸脾、胃、大腸、心、肝經(jīng)[2]。它既能攻擊導(dǎo)滯、通腸泄熱,又可以導(dǎo)濕熱之邪自大便而出,促進黃疸消退;同時入心肝血分,可以泄血中實熱火毒、涼血止血而解毒,還可以通利血脈、活血化瘀。目前,有關(guān)大黃的炮制品記載較多,常用的有生大黃、酒大黃、熟大黃、大黃炭等4種炮制品。生大黃擅長攻擊導(dǎo)滯;酒大黃善解上焦熱毒,用于治療齒齦腫痛、目赤咽痛;熟大黃能瀉火解毒,用于治療瘡瘍火毒;大黃炭能化瘀、涼血、止血,用于治療血熱積滯的出血諸證。筆者主要以生大黃、酒大黃、熟大黃、大黃炭4種大黃炮制品為對象,研究炮制前后化學(xué)組分及物質(zhì)基礎(chǔ)變化,為大黃不同炮制品的質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)制訂提供科學(xué)依據(jù)。

    1 材料

    1.1 儀器

    722分光光度計(上海第三分析儀器廠)。

    1.2 飲片

    大黃飲片(四川新荷花醫(yī)藥飲片公司,批號:111002)。

    1.3 試劑

    沒食子酸、大黃素、1,8-二羥基蒽醌對照品(中國食品藥品檢定研究院,批號分別為041105、756-9003、847-4001);碳酸鈉(重慶北碚精細化工廠);干酪素(成都科龍化學(xué)試劑廠,批號:041005;杭州天和微生物試劑廠,批號:041028)。

    2 方法與結(jié)果

    2.1 大黃不同炮制品的制備

    2.1.1 酒大黃 取生大黃飲片適量,按每100kg飲片用15kg黃酒的比例,將大黃飲片用黃酒拌勻,藥材悶潤1~2h,用80~120Ⅸ文火炒干,取出晾涼,備用。

    2.1.2 熟大黃 取生大黃飲片適量,按照每100kg飲片用50kg黃酒的比例,將大黃飲片用黃酒拌勻,藥材悶潤1~2 h,待黃酒被藥材吸盡后,將藥材裝入特制蒸制容器,密封蒸制18~24h,待藥材表面呈黑褐色,內(nèi)部呈黃褐色時取出晾干,備用。

    2.1.3 大黃炭 取生大黃飲片適量,180~220Ⅸ下在熱鍋中用武火炒至表面焦黑、內(nèi)部焦褐色時,在飲片表面噴淋少許清水,待火星熄滅后取出晾涼,備用。

    2.2 樣品溶液的制備[3]

    按文獻方法,分別將大黃各炮制品粉碎成粗粉,將粗粉過100目篩,得到大黃各炮制品粉末樣品。將制得的大黃各炮制品粉末用10倍量的甲醇提取3次,每次30min,濾過,減壓回收濾液,裝于棕色玻璃瓶中,置陰涼處貯藏,得大黃不同炮制品的樣品溶液,備用。

    2.3 檢測項目

    2.3.1 薄層色譜(TLC)鑒別 取生大黃粉末樣品0.1 g,加入20ml甲醇浸漬1 h,濾過后取5ml濾液蒸干,加10ml水溶解后,再加入1ml鹽酸,水浴加熱30min,冷卻后用乙醚提取,每次20ml,提取2次,將提取的乙醚液蒸干,殘渣加入氯仿進行溶解,制成1ml的生大黃溶液,作為對照溶液;按上述方法分別制備大黃不同炮制品的溶液。分別吸取生大黃及各炮制品溶液4μl,點于同一加入0.3%羥甲基纖維素鈉的硅膠H板上,以正己烷-醋酸乙醋-甲酸(30∶10∶0.5,V/V/V)為展開劑,展開晾干后,置紫外光燈(365nm)下檢視[4]。結(jié)果,大黃不同炮制品色譜中,在與生大黃色譜相應(yīng)的位置上,顯相同的5個橙黃色熒光斑點;經(jīng)氨蒸氣熏后,置日光下檢視,斑點變?yōu)榧t色。大黃不同炮制品的TLC圖見圖1。

    圖1 大黃不同炮制品的TLC圖1,5.生大黃;2~4.熟大黃;6~7.酒大黃;8.大黃炭Fig 1 TLC of processed R.palmatum products1,5.R.palmatum;2-4.prepared R.palmatum;6-7.prepared R.palmatum with wine;8.charred R.palmatum

    2.3.2 鞣質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)的測定[5-6]精密稱取0.027mg/ml的沒食子酸溶液25ml,置50ml棕色量瓶中,加水稀釋至50ml,再精密量取5ml,加水稀釋至25ml,搖勻,作為對照品溶液。分別量取大黃不同炮制品的樣品溶液2ml,置25ml棕色量瓶中,加入1ml磷鉬鎢酸溶液和10ml水,在760nm波長下分別測定吸光度(A),根據(jù)回歸方程[A=5.188c-0.00568(r=0.9999),c為沒食子酸質(zhì)量濃度]計算溶液中沒食子酸含量,作為溶液中總酚量。取大黃不同炮制品的樣品溶液12.5ml,加入含有0.3 g干酪素的50ml具塞錐形瓶中,密封后30Ⅸ水浴1 h保溫處理,隨后取出,待冷卻后濾過,精密量取2ml濾液,置25ml棕色量瓶中,在760nm波長下測定A,根據(jù)上述回歸方程計算溶液中沒食子酸的含量,作為不被吸附的多酚量。根據(jù)下式計算大黃不同炮制品中鞣質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù):鞣質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)=總酚量-不被吸附的多酚量,結(jié)果見表1。

    表1 大黃不同炮制品炮制前后鞣質(zhì)、蔥醌質(zhì)量分?jǐn)?shù)測定結(jié)果(,‰)Tab 1 Comparison of the contents of tannin and anthraquinone in R.palmatum before and after processing(,‰)

    表1 大黃不同炮制品炮制前后鞣質(zhì)、蔥醌質(zhì)量分?jǐn)?shù)測定結(jié)果(,‰)Tab 1 Comparison of the contents of tannin and anthraquinone in R.palmatum before and after processing(,‰)

    樣品生大黃酒大黃熟大黃大黃炭成分鞣質(zhì)2.61±0.212.54±0.340.39±0.050.01±0.01結(jié)合蒽醌40.02±4.4536.21±5.2417.02±1.362.11±1.18游離蒽醌4.08±1.025.45±3.126.87±1.542.58±0.54總蒽醌44.10±3.0441.66±4.1223.89±1.184.69±1.89

    2.3.3 蒽醌質(zhì)量分?jǐn)?shù)的測定[7]精密稱取大黃素對照品1.24mg,置10ml容量瓶中,用甲醇溶解并稀釋至刻度,搖勻,制成每1ml含0.124mg的大黃素對照品溶液。精密吸取大黃不同炮制品的樣品溶液10ml,揮去甲醇,作為樣品貯備液。加1.0%醋酸鎂甲醇溶液,定容至10ml量瓶中,搖勻后在509nm波長處測定A。根據(jù)回歸方程[A=3.4624 x+0.0234(r=0.9992),x為大黃素進樣量,大黃素進樣量在0.0248~0.248mg范圍內(nèi)與吸收度呈良好線性關(guān)系]計算溶液中大黃素質(zhì)量分?jǐn)?shù),作為溶液中總蒽醌質(zhì)量分?jǐn)?shù);取大黃不同炮制品的樣品溶液10ml,加丙酮稀釋至25ml量瓶中,加入1,8二羥基蒽醌對照品溶液(精密稱取1,8-二羥基蒽醌對照品25mg,置50ml容量瓶中,加丙酮溶解至刻度),以丙酮為空白,在460、540nm波長處測定A(蒽醌的最大激發(fā)波長為460nm,固定該激發(fā)波長,掃描得發(fā)射圖譜,得到其發(fā)射波長為540nm。選擇該最大激發(fā)波長和最大發(fā)射波長作為測定波長。),根據(jù)回歸方程[A=122.81 c+46.224(r=0.9996),c為1,8二羥基蒽醌質(zhì)量濃度,1,8二羥基蒽醌質(zhì)量濃度在0.25~3μg/ml范圍內(nèi)與吸光度呈良好的線性關(guān)系]計算溶液中游離蒽醌含量。并按下式計算結(jié)合蒽醌的質(zhì)量分?jǐn)?shù):結(jié)合蒽醌質(zhì)量分?jǐn)?shù)=總蒽醌質(zhì)量分?jǐn)?shù)-游離蒽醌質(zhì)量分?jǐn)?shù),結(jié)果見表1。

    由表1可知,大黃在炮制前、后蒽醌及鞣質(zhì)含量發(fā)生了變化,且變化程度同炮制條件的強烈程度相關(guān)。大黃不同炮制品中,熟大黃中游離蒽醌含量最高,生大黃中結(jié)合蒽醌含量最高。各成分含量高低排列順序分別為游離蒽醌:大黃炭<生大黃<酒大黃<熟大黃;結(jié)合蒽醌:大黃炭<熟大黃<酒大黃<生大黃;鞣質(zhì):大黃炭<熟大黃<酒大黃<生大黃。

    2.3.4 其他指標(biāo)[8]按2010年版《中國藥典》(一部)中灰分測定法、干燥失質(zhì)量測定法和浸出物測定法進行檢測,分別記錄檢測結(jié)果,結(jié)果見表2。

    表2 大黃不同炮制品質(zhì)量檢測結(jié)果(,%)Tab 2 Results of quality test of different processed R.palmatum products(,%)

    表2 大黃不同炮制品質(zhì)量檢測結(jié)果(,%)Tab 2 Results of quality test of different processed R.palmatum products(,%)

    樣品生大黃酒大黃熟大黃大黃炭檢測指標(biāo)干燥失質(zhì)量6.52±0.416.40±0.346.12±0.185.41±0.24總灰分質(zhì)量分?jǐn)?shù)8.56±0.749.24±0.689.08±0.659.79±0.48酸不溶灰分質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.58±0.050.51±0.040.44±0.060.48±006浸出物質(zhì)量分?jǐn)?shù)47.02±4.3145.56±3.2145.42±2.9813.02±0.71

    由表2可知,生大黃、酒大黃、熟大黃、大黃炭總灰分及酸不溶灰分成分含量相差不多;酒大黃、熟大黃干燥失質(zhì)量及浸出物含量無明顯變化,大黃炭干燥失質(zhì)量及浸出物含量明顯降低。

    3 討論

    3.1 大黃飲片炮制前后一般項目檢測

    目前,相關(guān)部門沿用《中國藥典》中各飲片檢測標(biāo)準(zhǔn)對不同中藥飲片進行質(zhì)量檢測。規(guī)定炮制后干燥失質(zhì)量應(yīng)不超過15.0%;總灰分質(zhì)量分?jǐn)?shù)不得超過10.0%;酸不溶灰分質(zhì)量分?jǐn)?shù)不得超過0.8%;浸出物質(zhì)量分?jǐn)?shù)不得少于25.0%。本試驗中,生大黃、酒大黃、熟大黃及大黃炭4種大黃炮制品在干燥失質(zhì)量,總灰分含量、酸不溶灰分含量方面均同國家規(guī)定相符合。在浸出物檢測上,酒大黃及熟大黃浸出物含量變化不大,高于45%,符合《中國藥典》規(guī)定,但大黃炭浸出物含量為(13.02±0.71)%,低于《中國藥典》標(biāo)準(zhǔn),這應(yīng)該同大黃飲片在炒炭過程中因劇烈受熱,飲片內(nèi)成分被大量分解破壞相關(guān)。

    3.2 大黃飲片炮制前后化學(xué)組分含量及藥理作用改變

    多數(shù)學(xué)者實驗研究證明,大黃的瀉下作用同其中含有的鞣質(zhì)及蒽醌含量多少有密切關(guān)系[9]。生大黃飲片中鞣質(zhì)含量高,并含有多種苷類組分,因此其具有明顯的瀉下、解熱功效;熟大黃、大黃炭中以蒽醌苷元、沒食子酸等化分成分為主,而苷類組分的含量下降,因此其瀉下、解熱作用減弱,活血化瘀功能增強。這些都說明大黃瀉下、解熱作用與蒽醌含量是密切相關(guān)的。同時,瀉下解熱作用與鞣質(zhì)含量也呈正相關(guān)。傳統(tǒng)中醫(yī)理論中,生大黃苦寒,炮制后苦寒性質(zhì)得到緩和,且大黃炭苦寒之性基本消失,故大黃苦寒性質(zhì)強弱同其瀉下解熱作用呈正相關(guān)。因此,大黃中鞣質(zhì)及蒽醌含量同大黃苦寒之性相關(guān),為大黃苦寒性質(zhì)的物質(zhì)基礎(chǔ),且大黃中鞣質(zhì)及蒽醌含量變化同大黃藥性改變關(guān)系密切。

    在大黃不同炮制品中,熟大黃中游離蒽醌含量最多,生大黃中結(jié)合蒽醌含量最多,并且含量變化與炮制條件的強烈程度相關(guān)。生大黃中鞣質(zhì)含量最高,炮制過程中根據(jù)受熱程度而減少,其中大黃炭中鞣質(zhì)含量最低,幾乎檢測不到?,F(xiàn)代藥理研究證實,鞣質(zhì)中的沒食子酸及d-兒茶素是大黃發(fā)揮止血作用的有效成分。但是,在本試驗中生大黃中鞣質(zhì)含量最高,按照藥理實驗結(jié)論,生大黃止血效果應(yīng)該強于大黃炭及其他炮制品,而臨床應(yīng)用中,大黃炭止血效果最好,兩者在理論上相悖,今后還應(yīng)做進一步研究。大黃炭中總蒽醌含量最低,這應(yīng)該同炒炭炮制中,條件劇烈,各種化學(xué)組分被嚴(yán)重分解破壞有關(guān)。熟大黃因為受熱時間久,加熱溫度高,總蒽醌成分也受到顯著破壞,而結(jié)合蒽醌多分解為游離蒽醌,因此熟大黃中游離蒽醌含量最高。而酒大黃在制備過程中,加熱溫度低,因此被破壞程度低,蒽醌成分在結(jié)合及游離兩種類型間相關(guān)轉(zhuǎn)化,因此總量變化不大。

    總之,從炮制前后鞣質(zhì)及蒽醌類物質(zhì)基礎(chǔ)含量變化能夠顯示大黃不同炮制品間藥性及毒性差異,反映大黃飲片不同的苦寒性質(zhì),從而為不同炮制品臨床作用發(fā)揮提供科學(xué)理論基礎(chǔ),同時也可為制訂不同炮制品的質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)提供參考。

    [1]賓馳,顏棟林.高效液相色譜法測定中藥退黃外洗液中大黃酸、大黃素、大黃酚的含量[J].臨床合理用藥雜志,2011,4(17):48.

    [2]荊晶,陸小丹,周旭美.HPLC法測定大黃相關(guān)制劑中大黃素的含量[J].遵義醫(yī)學(xué)院學(xué)報,2010,33(4):83.

    [3]方既明,章懷奮.高效液相色譜法同時測定麻仁丸中大黃素、大黃酚、大黃酸、大黃素甲醚、蘆薈大黃素的含量[J].中南藥學(xué),2011,9(5):28.

    [4]張偉.大黃不同炮制品的功效研究與應(yīng)用[J].長春中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報,2010,26(6):156.

    [5]耿家玲,沈勇,康紹建.HPLC法測定栽培亞大黃中3種成分的含量[J].中國藥師,2011,14(5):78.

    [6]王坤,魯靜.中藥材中鞣質(zhì)含量測定方法的研究[J].中國藥事,2004,18(6),361.

    [7]劉素蘭.HPLC法測定三黃片中大黃素及大黃酚的含量[J].中國美容醫(yī)學(xué),2012,21(14):156

    [8]國家藥典委員會.中華人民共和國藥典:一部[S].2010年版.北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2010:附錄53、附錄51、附錄62.

    [9]戴曉燕,盛振華,郝云云.不同產(chǎn)地大黃中微量元素含量的主成分分析及聚類分析[J].中華中醫(yī)藥雜志,2012,27(5):231.

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