安映紅,賈 娜,李琳娜,韓 蘇,楊德宣,袁守軍
(1.空軍總醫(yī)院臨床檢驗中心生化室,北京 100142;2.軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院放射與輻射醫(yī)學(xué)研究所藥理毒理,北京 100850);3.南開大學(xué)藥學(xué)院,天津 300071)
Tuftsin是機(jī)體脾臟產(chǎn)生的一段生理活性肽[1],由蘇-賴-脯-精氨酸(Thr-Kys-Pro-Arg,TKPR)組成的一級結(jié)構(gòu),具有促吞噬活性,所以命名為促吞噬肽[2]。早期研究表明,Tuftsin具有一定的抗腫瘤活性[3]。然而,由于其較短的肽鏈及體內(nèi)半衰期使得其至今難以成藥并應(yīng)用于臨床。T肽(T peptide,TP)是本課題組和制藥公司共同研發(fā)的創(chuàng)新抗癌藥[4-5],結(jié)構(gòu)為由賴氨酸將4個Tuftsin樣結(jié)構(gòu)連接在一起組成。藥物代謝動力學(xué)研究表明,TP具有較長的體內(nèi)半衰期[5]。前期藥效評價結(jié)果證明,TP對術(shù)后殘瘤具有明顯的抗癌活性[6-8]。對TP作用機(jī)制的研究有助于深刻理解TP的術(shù)后抗癌過程。腫瘤間質(zhì)中浸潤的巨噬細(xì)胞即腫瘤相關(guān)巨噬細(xì)胞(tumor associated macrophages,TAMs)是腫瘤組織中浸潤的一群重要免疫細(xì)胞,在腫瘤微環(huán)境的調(diào)控下TAMs可以轉(zhuǎn)換表型,演變?yōu)橐种颇[瘤生長的M1型和促進(jìn)腫瘤進(jìn)程的M2型[9-10]。前期研究已經(jīng)證實TP能刺激巨噬細(xì)胞并轉(zhuǎn)化其在腫瘤微環(huán)境中的細(xì)胞表型發(fā)揮抗癌作用。巨噬細(xì)胞分泌產(chǎn)生巨噬細(xì)胞炎性蛋白-1α(macrophage inflammatory protein,MIP-1α),MIP-1α又名 CCL3,是趨化因子配體 3,參與炎癥及吞噬細(xì)胞的活化、趨化,參與組織修復(fù),腫瘤組織中常能檢測到其表達(dá)增加。有文獻(xiàn)報道[11],MIP-1α可促進(jìn)瘤細(xì)胞生長,增值,存活,在人軟骨肉瘤中MIP-1α在刺激劑的作用下還可誘導(dǎo)細(xì)胞遷移[12],是抗腫瘤研究的一個重要靶點。因此,TP既然能通過巨噬細(xì)胞發(fā)揮抗癌活性,那么也有可能對MIP-1α有調(diào)節(jié)作用,本研究旨在探討MIP-1α是否是TP抗癌過程中的一個重要靶點,從而為TP抗癌作用機(jī)制提供新的理論依據(jù)。
1.1 材料 昆明小鼠,♀,4~6周齡,體質(zhì)量18~22 g,購于軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院動物中心,并在軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院動物中心飼養(yǎng),小鼠食用專用飼料,自由飲水,每日光照12 h,實驗室溫度保持在25℃左右,相對濕度約40%-70%。小鼠巨噬細(xì)胞Ana-1細(xì)胞株由本實驗研究室傳代保存。TP為白色凍干粉末,純度>98%,由北京中天康泰生物科技有限公司提供,使用前生理鹽水稀釋。抗小鼠MIP-1α單克隆抗體購自武漢博士德公司。反轉(zhuǎn)錄(RT)反應(yīng)試劑盒購買于美國Promega公司。Ⅳ型膠原酶購于美國 In-vitrogen公司,透明質(zhì)酸酶,DNA酶Ⅰ購于華美生物工程有限公司。配制消化液:1 g·L-1Ⅳ型膠原酶,1%透明質(zhì)酸酶和0.25%DNA酶Ⅰ。
1.2 TAM s細(xì)胞分離 建立小鼠S180術(shù)后殘瘤模型,待腫瘤生長至500~800 mm3時,無菌分離新鮮殘瘤組織,生理鹽水清洗3~5次,剪成1~3 mm3的小塊。37℃用消化液消化腫瘤組織塊3 h,制備成單細(xì)胞懸液,PBS洗滌2~3次,接種到培養(yǎng)皿中,置于37℃,5%CO2培養(yǎng)箱2 h。然后將未貼壁細(xì)胞棄掉,PBS洗滌2~3次,貼壁細(xì)胞即為腫瘤相關(guān)巨噬細(xì)胞[14]。
1.3 RT-PCR實驗 收集Ana-1、TAM或不同濃度TP處理的Ana-1或TAM約500萬個細(xì)胞,提取細(xì)胞總RNA,測定RNA含量和純度。20μl的反轉(zhuǎn)錄體系為:1μg RNA加1μl OligodT,配相應(yīng)體積的無RNA酶水,70℃變性5 min后置于4℃,然后加入5×Prime Buffer 4μl,MgCl22.4μl,dNTP(2.5 mmol·L-1)4μl,Rnasin(20U)0.5μl,RTase 1μl,3.1μl無RNA酶水。反轉(zhuǎn)錄條件:37℃反應(yīng)15 min,85℃加熱5min滅活反轉(zhuǎn)錄酶,然后置于4℃。反轉(zhuǎn)錄的cDNA產(chǎn)物進(jìn)行PCR反應(yīng),反應(yīng)條件為:94℃變性5 min;然后經(jīng)94℃變性30 s,55℃退火30秒,72℃延伸1min,進(jìn)行30個循環(huán),再72℃延伸5min。1%瓊脂糖電泳檢測PCR產(chǎn)物。引物序列由美國Invitrogen公司合成。β-actin上、下游引物序列為5′-TCTACAATGAGCTGCGTGTG-3′和 5′-GGTCAGGATCTTCATGAGGT-3′;MIP-1α上、下游引物序列為 5′-TCACCTGCTCAACATCATG-3′和 5′-TCAGGCATTC AGTTCCAGCT-3′。
1.4 小鼠異種移植瘤雙瘤手術(shù)模型的建立 在小鼠左、右腋下均接種小鼠腹腔抽取的S180肉瘤腫瘤細(xì)胞,待小鼠皮下腫瘤生長至約250 mm3時,將其中一側(cè)手術(shù)切除部分腫瘤組織,建立術(shù)后殘瘤模型[4],左側(cè)腋下腫瘤不作處理。按照殘瘤瘤體積大小分組:對照組,陽性藥環(huán)磷酰胺(CTX)組及TP 8 mg·kg-1組,并于術(shù)后次日開始給藥,CTX劑量為30 mg·kg-1,給藥1次;TP隔天1次,共給藥4次。實驗結(jié)束時分離腫瘤組織。
1.5 免疫組化檢測術(shù)后殘瘤組織中M IP-1α的蛋白表達(dá) 手術(shù)剝離的腫瘤組織,用4%多聚甲醛固定,石蠟包埋制成病理切片,免疫組化染色檢測MIP-1α的表達(dá)。
2.1 Ana-1細(xì)胞和TAM s的M IP-1α的mRNA表達(dá)比較 將對數(shù)生長期的Ana-1細(xì)胞和原代分離的TAMs提取細(xì)胞總RNA,檢測并對比 MIP-1αmRNA的表達(dá)差別。實驗結(jié)果表明兩種來源的細(xì)胞MIP-1αmRNA表達(dá)量基本一致,差別沒有統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),如Fig 1所示。結(jié)果提示,無論巨噬細(xì)胞系,還是原代的巨噬細(xì)胞均能高表達(dá)MIP-1α。
Fig 1 mRNA expression of M IP-1αin Ana-1 cells and TAM s
2.2 TP對Ana-1細(xì)胞M IP-1αm RNA的影響不同濃度TP處理對數(shù)生長期的Ana-1細(xì)胞72 h后,提取細(xì)胞總 RNA,檢測 MIP-1αmRNA的表達(dá)。如Fig 2所示,與空白對照組相比,3個濃度(0.2、2和20μmol·L-1)的 TP對 Ana-1細(xì)胞的 MIP-1αmRNA表達(dá)無明顯影響,組間差異無統(tǒng)計學(xué)意義,P>0.05??梢奣P對建系的巨噬細(xì)胞系的MIP-1α的表達(dá)無明顯影響。
Fig 2 mRNA expression of M IP-1αin Ana-1 cells treated w ith TP
2.3 TP對TAM s的M IP-1αm RNA的影響 不同濃度TP處理原代分離的TAMs 72 h后,提取細(xì)胞總RNA,檢測MIP-1αmRNA的表達(dá)。如Fig 3所示,與空白對照組相比,TP明顯降低 TAMs的 MIP-1αmRNA的表達(dá),3個濃度(0.2、2和 20μmol·L-1)與空白組相比差異均有統(tǒng)計學(xué)意義,P<0.01,且呈劑量依賴性??梢妼τ谀[瘤組織中的巨噬細(xì)胞,TP有其作用的細(xì)胞位點,并能引起巨噬細(xì)胞生物學(xué)的改變,從而導(dǎo)致一些細(xì)胞因子表達(dá)發(fā)生變化。
Fig 3 m RNA expression of M IP-1αin TAM s treated w ith TP**P<0.01 vs Control.
2.4 TP對腫瘤組織中M IP-1α蛋白的表達(dá)影響為進(jìn)一步證實上述結(jié)果,本研究進(jìn)行了體內(nèi)試驗以驗證TP是否影響MIP-1α蛋白的表達(dá)。首先方法中所描述的建立小鼠S180肉瘤細(xì)胞雙瘤模型,并于腫瘤體積生長至約250 mm3時,在其中一側(cè)建立術(shù)后殘瘤模型后,然后給予CTX和TP。實驗結(jié)束時手術(shù)瘤和未手術(shù)瘤組織均做免疫組化染色,檢測MIP-1α蛋白在各個組的表達(dá)情況。實驗結(jié)果如Fig 4,TP處理組的荷瘤小鼠的腫瘤組織MIP-1α與對照組相比表達(dá)明顯降低,接近于陽性藥環(huán)磷酰胺組;而且對于同一只小鼠的手術(shù)后的殘瘤組織與未手術(shù)的瘤組織,TP均能降低MIP-1α蛋白的表達(dá)。
TAMs可被調(diào)控成M1或M2表型,M1型巨噬細(xì)胞呈現(xiàn)強(qiáng)的抗原呈遞能力,分泌IL-12/23,誘導(dǎo)Ⅰ型免疫應(yīng)答,產(chǎn)生NO、活性氧等,具有對腫瘤細(xì)胞的殺傷能力;M2型巨噬細(xì)胞釋放免疫抑制因子,促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的增殖,演進(jìn)以及輔助腫瘤細(xì)胞遠(yuǎn)端轉(zhuǎn)移[13]。而腫瘤微環(huán)境中浸潤的巨噬細(xì)胞大多數(shù)為M2型[9]。因而,調(diào)控腫瘤微環(huán)境中的 TAMs,誘導(dǎo)其成為M1型或者使其不被誘導(dǎo)活化為M2型成為研究者熱衷的課題。前期實驗研究已證實調(diào)控巨噬細(xì)胞是TP發(fā)揮抗癌作用的機(jī)制之一,TP可調(diào)控TAMs,增強(qiáng)巨噬細(xì)胞的吞噬、細(xì)胞毒功能,促使TAMs分泌 Th1相關(guān)的促炎因子(TNF-α、IL-12、NO、CXCL9、CXCL11等),使其向 M1型極化;還可逆轉(zhuǎn)M2巨噬細(xì)胞的表型,增加Th1相關(guān)的炎性細(xì)胞因子表達(dá)[14]。因此,研究TAMs能更深入理解TP抗癌機(jī)制。巨噬細(xì)胞可產(chǎn)生MIP-1α,其屬于趨化因子家族,參與細(xì)胞黏附和遷移,在腫瘤發(fā)展過程中具有重要作用。TP能夠降低腫瘤組織中巨噬細(xì)胞MIP-1α的表達(dá),并呈劑量依賴性,說明MIP-1α有可能是TP抗癌作用機(jī)制的又一新靶點,更加深入的研究有助于對TP體內(nèi)抗癌機(jī)制的深刻理解。
Fig 4 M IP-1αexpression in tumor tissues
目前,外科手術(shù)是實體癌患者的首選治療方式,但是手術(shù)只能最大限度的降低腫瘤負(fù)荷,完全消除腫瘤細(xì)胞的可能性較?。?5],預(yù)防手術(shù)后腫瘤復(fù)發(fā)是臨床腫瘤治療的關(guān)鍵問題。小鼠術(shù)后殘瘤模型正是在此臨床背景下建立的[4]。殘瘤模型不僅減輕了腫瘤負(fù)荷,而且打破了腫瘤微環(huán)境的平衡[16],打開了腫瘤深度免疫抑制區(qū),使得免疫藥物、免疫細(xì)胞或免疫因子可以突破腫瘤組織的免疫抑制屏障,從而發(fā)揮抗腫瘤作用[4]。小鼠的雙瘤模型是在小鼠術(shù)后殘瘤模型的基礎(chǔ)上建立的。雙瘤模型既包括了術(shù)后殘余腫瘤組織,也包括了未手術(shù)瘤組織(相當(dāng)于模擬了臨床實際中遠(yuǎn)端未發(fā)覺的微小瘤灶)[4]。利用雙瘤模型可以同時檢測到在同一生物個體中手術(shù)過的腫瘤組織和未手術(shù)的腫瘤組織的特點。本實驗中使用雙瘤模型對同一只小鼠給予TP進(jìn)行術(shù)后治療,比較未手術(shù)瘤和手術(shù)瘤的腫瘤組織MIP-1α蛋白的表達(dá)情況,能更加全面完整的說明TP對腫瘤組織中MIP-1α的表達(dá)影響。
探討藥物藥效的體外試驗,常使用細(xì)胞系作為藥物作用的對象,用以初步判定藥物作用的效應(yīng)、方式、環(huán)節(jié)等;是體內(nèi)試驗的前期預(yù)測試,可以節(jié)約實驗成本,避免不必要的浪費(fèi);在藥效學(xué)研究中也是慣用的操作流程,尤其是在腫瘤藥效學(xué)研究中可以利用現(xiàn)成的腫瘤細(xì)胞系去很好的判定一些細(xì)胞毒類藥物的藥效。然而建系的細(xì)胞系由于反復(fù)的多次傳代或者生長環(huán)境的改變,細(xì)胞本身的一些生物學(xué)特點與原代細(xì)胞相比可能已發(fā)生改變,對于一些刺激細(xì)胞活性或作用于細(xì)胞膜表面受體的藥物,如本文研究中的Tuftsin或TP,直接作用于細(xì)胞系就可能達(dá)不到預(yù)期的結(jié)果。本研究中Ana-1細(xì)胞是建系的巨噬細(xì)胞系,TAMs是原代巨噬細(xì)胞,TP作用于Ana-1細(xì)胞并不能影響MIP-1α的表達(dá),而對于TAMs,TP可明顯降低體內(nèi)、外TAMs的MIP-1αmRNA的表達(dá)。這些結(jié)果說明對于免疫增強(qiáng)劑TP,單純的體外細(xì)胞系試驗并不能反映其在體內(nèi)發(fā)生作用的真實情況,藥效學(xué)評價時,體外實驗的陰性研究結(jié)果需要慎重對待。TP在動物體內(nèi)的作用方式、環(huán)節(jié)較為復(fù)雜,涉及很多免疫調(diào)控,因此,關(guān)于TP抗癌機(jī)制還有待進(jìn)一步探索研究。
參考文獻(xiàn):
[1] Najjar V A,Constantopoulos A.A new phagocytosis-stimulating tetrapeptide hormone,tuftsin,and its role in disease[J].J Reticuloendothel Soc,1972,12(2):197-215.
[2] Najjar V A,Nishioka K.“Tuftsin”:a natural phagocytosis stimulating peptide[J].Nature,1970,228(5272):672-3.
[3] Nishioka K.Anti-tumour effect of the physiological tetrapeptide,tuftsin[J].Br JCancer,1979,39(3):342-5.
[4] 賈 娜.小鼠術(shù)后殘瘤模型的建立及T肽抑制術(shù)后殘瘤生長的初步研究[D].北京:軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院,2010.
[4] Jia N.Establishmentofpost-surgical residual tumormodeland primary research of TP inhibiting residual tumor growth.Beijing:Master′s degree thesis of Military Medical Science Academy of the PLA,2010.
[5] 賀艷琳,顧若蘭,韓 蘇,等.一種人工合成Tuftsin類似肽大鼠組織分布和排泄研究[J].解放軍藥學(xué)學(xué)報,2013,29:328-31.
[5] He Y L,Gu R L,Han S,et al.Biodistribution and excretion of a synthetic tuftsin-analog in rats[J].Pharm JChin People’s Liber Army,2013,29:328-31.
[6] An Y,Li L,Yang D,et al.Anticancer activity of tuftsin-derived T peptide in postoperative residual tumors[J].Anticancer Drugs,2014,25(8):857-67.
[7] 汪 瓊,胡亞歐,賈 娜,等.促吞噬肽衍生物T肽對裸鼠術(shù)后殘瘤VEGF表達(dá)的影響[J].生物技術(shù)通訊,2012,23(6):821-4.
[7] Wang Q,Hu Y O,Jia N,etal.Effects of T peptide on VEGF expression of post-operative tumors in nudemice[J].Lett Biotechnol,2012,23(6):821-4.
[8] 汪 瓊,賈 娜,楊德宣,等.促吞噬肽衍生物T肽抑制小鼠移植瘤和術(shù)后殘瘤生長的藥效學(xué)研究[J].軍事醫(yī)學(xué),2012,36(5):357-61.
[8] Wang Q,Jia N,Yang D X,et al.Evaluation of inhibition effects of T peptide on postsurgical residual tumor growth[J].MilitMed,2012,36(5):357-61.
[9] Mantovani A,Sozzani S,Locati M,et al.Macrophage polarization:tumor-associated macrophages as a paradigm for polarized M2 mononuclear phagocytes[J].Trends Immunol,2002,23(11):549-55.
[10]Mantovani A,Schioppa T,Porta C,et al.Role of tumor-associated macrophages in tumor progression and invasion.[J].Cancer Metastasis Rev,2006,25(3):315-22.
[11]趙 娟.巨噬細(xì)胞炎性蛋白-1α在多發(fā)性骨髓瘤發(fā)病機(jī)制中的作用[J].國際輸血及血液學(xué)雜志,2007,30(6):540-2.
[11]Zhao J.Effect ofmacrophage inflammatory protein-1 alpha in the pathogenesis ofmultiple yeloma[J].Foreign Med JBlood Transfus Heanatol,2007,30(6):540-2.
[12]Hsu C J,Wu M H,Chen C Y,et al.AMP-activated protein kinase activation mediates CCL3-induced cellmigration and matrix metalloproteinase-2 expression in human chondrosarcoma[J].Cell Commun Signal,2013,11(68):.
[13] Schoppmann SF1,Birner P,St?ckl J,et al.Tumor-associated macrophages express lymphatic endothelial growth factors and are related to peritumoral lymphangiogenesis[J].Am J Pathol,2002,161(3):947-56.
[14]汪 瓊,免疫增強(qiáng)劑 T肽抗癌作用及機(jī)理研究[D].北京:軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院,2012.
[14]Wang Q.Research of TPanti-cancer activity and mechanism[D].Beijing:Doctoral Dissertation of Military Medical Science Academy of the PLA,2012.
[15]O′Reilly M S,Holmgren L,Shing Y,et al.Angiostatin:a novel angiogenesis inhibitor thatmediates the suppression ofmetastases by a Lewis lung carcinoma[J].Cell,1994,79(2):315-28.
[16]李 璘,邱蓉麗,樂 巍,等.腫瘤微環(huán)境中的非腫瘤細(xì)胞[J].中國藥理學(xué)通報,2012,28(4):455.
[16]Li L,Qiu R L,LeW,etal.Non-tumor cells in tumormicroenviroment[J].Chin Pharmacol Bull,2012,28(4):455.