朱夏琴,孫正怡,郁琦,甄璟然,王雪,何方方
(中國醫(yī)學科學院,北京協(xié)和醫(yī)學院,北京協(xié)和醫(yī)院婦產(chǎn)科,北京 100730)
腫瘤放化療的性腺毒性是女性腫瘤患者生殖內(nèi)分泌功能喪失的主要原因,隨著腫瘤治愈率及生存率的提高,女性腫瘤患者的生育問題得到關(guān)注。卵巢組織獲取相對容易,且卵巢組織冷凍復蘇后除可以重建患者的內(nèi)分泌功能外,還可能獲得生育能力,因此卵巢組織冷凍復蘇在臨床上具有重要的應用前景。目前卵巢組織冷凍多采用慢速冷凍,玻璃化冷凍作為近期發(fā)展起來的新技術(shù),與慢速冷凍相比,不需要冷凍儀器、耗時更短,且本中心將玻璃化冷凍應用于卵裂球及囊胚凍存,其復蘇后的胚胎存活率及臨床妊娠率均處于國內(nèi)領(lǐng)先水平,我們前期的研究也顯示玻璃化冷凍可以較好地保存卵巢組織[1]。因此本實驗在既有的研究基礎之上,進一步評價不同的冷凍保存方法對卵巢組織內(nèi)分泌功能的影響。
由北京協(xié)和醫(yī)院動物實驗中心提供,6周齡ICR雌鼠,體重25~28g。經(jīng)動物中心培養(yǎng)1周后,行陰道脫落上皮涂片觀察小鼠動情周期,選擇動情周期正常的25只ICR雌鼠。
頸椎脫臼法處死ICR雌鼠,從下腹正中切口處獲取雙側(cè)卵巢,放入經(jīng)羥乙基哌嗪乙硫磺酸(HEPES)緩沖的擬人輸卵管液(HTF)(Sage,美國)試管內(nèi),夾于冰間,送回實驗室。37℃熱臺上用1ml針頭的切割面剔去卵巢血管結(jié)締組織,并將卵巢組織切成小塊,每塊大小約為1mm×1mm×1mm。操作于含有HEPES-HTF培養(yǎng)液的培養(yǎng)皿中進行。根據(jù)不同的冷凍方法,將卵巢組織隨機分為5組,每組5例:新鮮對照組、二甲亞砜(DMSO)慢速冷凍組(A組)、丙二醇(PROH)慢速冷凍組(B組)、冷凍管玻璃化冷凍5min組(C組)及冷凍管玻璃化冷凍8min組(D組)。
實驗所用試劑除標注外均購自美國Sigma公司。冷凍基礎液為含5mg/ml人血清白蛋白(HSA,Sage,美國)的 HEPES-HTF。
1.慢速冷凍方案:冷凍基礎液加入1.5mol/L DMSO(A組)或PROH(B組)作為冷凍保護液1,冷凍基礎液中加入1.5mol/L DMSO(A 組)或PROH(B組)+0.1mol/L蔗糖作為冷凍保護液2。
卵巢組織在含有冷凍保護液1的培養(yǎng)皿中停留5min,裝入含1.8ml冷凍保護液2的冷凍管(Nunclon,丹麥),4℃冰箱平衡30min。放入程序冷凍儀。
自4℃開始以2℃/min的速度降溫至-8℃,-8℃維持10min,人工植冰后再維持10min;以0.3℃/min的速度降溫至-40℃;以-30℃/min的速度降溫至-150℃后投入液氮。
2.玻璃化冷凍方案:冷凍基礎液中加入7.5%(體積/體積,v/v)DMSO 及 7.5% (v/v)乙二醇(EG)作為預平衡液;冷凍基礎液中加入15%(v/v)DMSO+15%(v/v)EG+5.8mg/ml聚蔗糖(Ficoll 400)+0.58mol/L蔗糖作為玻璃化液。
卵巢組織在含有預平衡液的培養(yǎng)皿中停留5min(C組)或8min(D組),轉(zhuǎn)移至含有玻璃化液的培養(yǎng)皿中停留5min(C組)或8min(D組),迅速轉(zhuǎn)移至含有液氮的冷凍管中后投入液氮。
3.復蘇方案:卵巢組織凍存2~10d后復蘇。將含有卵巢組織的冷凍管自液氮中取出,在空氣中停留5~10s后,于37℃水浴解凍至肉眼所見冰晶溶解。分別投入含有0.67、0.33、0.2、0mol/L蔗糖的復蘇液中,充分洗滌,平衡5min;最后移入添加了5%HSA的HTF中,放入5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
Transwell-24孔板(Corning,美國),隔孔放入一個嵌入式小室,每個小室底部鋪100μl經(jīng)α-最低必需培養(yǎng)基(α-MEM)以3∶1稀釋的 matrigel膠(BD,美國),待膠凝固后小室內(nèi)放入卵巢組織兩枚,加入培養(yǎng)液150μl,小室外室加入培養(yǎng)液650μl。培養(yǎng)液成分為α-MEM(中國醫(yī)學科學院基礎醫(yī)學細胞 中 心)中 加 入 50ml/l HSA、10ml/l ITS(10μg/ml胰島素、5.5μg/ml轉(zhuǎn)鐵蛋白和5.0ng/ml亞硒酸)、0.5U/ml人絕經(jīng)期促性腺激素(HMG,麗珠醫(yī)藥)、100U/ml青霉素和100μg/ml鏈霉素(中國醫(yī)學科學院基礎醫(yī)學細胞中心)。在37℃5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)14d。隔天從外室吸出培養(yǎng)液500μl裝入eppendorf試管內(nèi),-80℃保存至分析用;并同時補充入等量新鮮培養(yǎng)液。
冷凍復蘇方案同上。復蘇后卵巢組織放入5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24h,然后經(jīng)背部切口將卵巢組織塊移植入ICR小鼠腎包膜下,左右各移植2塊,移植同時去除受體鼠卵巢。為提高可比性,增加了未處理的自然對照組,以及去除卵巢后未移植卵巢組織的去勢未移植對照組。移植了卵巢組織的受體ICR小鼠常規(guī)飼養(yǎng)2周后,取血測定血清E2水平,比較各組間的差異。
體外培養(yǎng)隔天收集的培養(yǎng)液及移植小鼠的血清統(tǒng)一采用化學免疫發(fā)光法測定E2水平。試劑盒由Beckman Coulter(美國)提供,檢測按說明書要求進行,數(shù)值超出檢測上限時行α-MEM稀釋后檢測。
數(shù)據(jù)采用SPSS 17.0軟件進行統(tǒng)計。培養(yǎng)液及血清E2值各組比較分別采用重復測量數(shù)據(jù)方差分析及單因素方差分析。P<0.05表示差異有統(tǒng)計學意義。
體外培養(yǎng)14d,各組培養(yǎng)液中E2水平隨培養(yǎng)時間逐漸增加(F=14.146,P<0.001)。同一天的E2水平比較,A組、B組顯著高于對照組、C組及D組(P<0.05),A組與B組之間無顯著性差異,對照組、C組及D組之間無顯著性差異(P>0.05)(表1)。
新鮮對照組及各實驗組冷凍復蘇后移植入同種異體小鼠,14d后,比較各組小鼠血清E2平均水平,DMSO慢速冷凍復蘇移植組、PROH慢速冷凍復蘇移植組的平均E2水平顯著高于其他各組(P<0.05);新鮮移植對照組、玻璃化5min復蘇移植組、玻璃化8min復蘇移植組及去勢未移植對照組的平均E2水平顯著低于未處理的自然對照組(P<0.05);新鮮移植對照組、玻璃化5min復蘇移植組、玻璃化8min復蘇移植組比較,E2水平無顯著性差異(P>0.05)(表2)。
表1 體外培養(yǎng)各組培養(yǎng)液中E2濃度(±s)
表1 體外培養(yǎng)各組培養(yǎng)液中E2濃度(±s)
注:與對照組、C組及D組比較,*P<0.05
組 別 例數(shù)培養(yǎng)液中 E2 濃度(pmol/L)第2天 第4天 第6天 第8天新鮮對照組 10 283.98±8.42 405.53±13.09 690.69±31.87 1 269.45±210.02 A組 10 381.68±11.08* 914.93±47.95* 1 915.37±265.39* 5 420.59±369.20*B組 10 298.77±6.97* 456.55±13.89* 996.04±189.26* 3 937.91±279.34*C組 10 176.01±6.23 185.34±10.81 222.18±9.91 234.99±8.25 D組 10 175.83±7.83 179.90±8.75 183.06±4.38 187.32±5.76組 別 例數(shù)培養(yǎng)液中E2 濃度(pmol/L)第10天 第12天 第14天新鮮對照組 10 3 089.77±298.89 5 262.78±371.39 7 721.68±5 10 231.94±7.90 287.10±10.01 474.16±25.94 72.28 A組 10 13 223.01±1 128.06* 20 944.69±1 929.89* 24 970.68±2 019.27*B組 10 11 241.21±992.36* 23 954.09±1 893.45* 28 196.61±2 001.03*C組 10 376.91±10.47 617.29±40.92 1 521.58±390.79 D組
表2 復蘇移植各組第14天小鼠血清E2水平比較(±s)
表2 復蘇移植各組第14天小鼠血清E2水平比較(±s)
注:與其他各組比較,*P<0.05;與未處理的自然對照組比較,**P<0.05
組 別 例數(shù) 血清E2水平(pmol/L)新鮮組織移植對照組 5 30.06±5.38**DMSO慢速冷凍復蘇移植組 5 132.38±10.73*PROH慢速冷凍復蘇移植組 5 142.95±11.09*玻璃化5min復蘇移植組 5 27.01±3.91**玻璃化8min復蘇移植組 5 34.68±5.93**未處理的自然對照組 5 43.09±8.64去勢未移植對照組 5 19.63±2.85**
女性腫瘤患者經(jīng)過手術(shù)或放化療后生殖功能必然受到影響,在性腺功能受損前進行卵巢組織的冷凍適合于青春期前卵泡尚未發(fā)育成熟的患者、不能延誤腫瘤治療以及促排卵有禁忌或者有切除雙側(cè)附件風險的女性患者[2]。目前卵巢組織的冷凍保存尚處于研究階段。
卵巢皮質(zhì)內(nèi)具有大量的卵泡儲備,原始卵泡因體積小、代謝率低等特征能夠耐受低溫損傷,在皮質(zhì)冷凍中可以相對多地完好保存[3]。冷凍方法根據(jù)降溫方式的不同可以分為慢速冷凍和玻璃化冷凍。慢速冷凍是傳統(tǒng)的冷凍方法,采用低濃度的冷凍保護劑以降低細胞毒性;玻璃化冷凍因為降溫迅速,組織或細胞與冷凍劑接觸時間短,則需要更高濃度的冷凍保護劑和更快的降溫速率。目前卵巢組織的冷凍方案尚無統(tǒng)一意見,但多數(shù)采用慢速冷凍并取得了一定的臨床活產(chǎn)[4]。玻璃化冷凍因其較好的胚胎/卵母細胞存活率、操作耗時短、無需特殊儀器等特點逐漸受到青睞,也逐步應用至卵巢組織冷凍的研究中[4]。本中心玻璃化冷凍囊胚、卵母細胞的存活率較高[5],有較為成熟的臨床操作方案,因此,本研究比較現(xiàn)有的玻璃化冷凍方案用于卵巢組織冷凍相對于慢速冷凍的效果。
目前的研究顯示,慢速冷凍與玻璃化冷凍對卵巢組織保存效果的結(jié)果不盡一致:部分研究結(jié)果顯示慢速冷凍相對于玻璃化冷凍可以更好地保存卵泡;部分研究結(jié)果則相反。冷凍保護劑的選擇、組織塊的大小、降溫速率以及冷凍工具的選擇等是導致結(jié)果不同的主要因素。比如玻璃化冷凍采取了多種不同的改良:直接投入液氮、冷凍管、固相表面等方法。慢速冷凍多數(shù)采用DMSO或者PROH作為冷凍保護劑;最早Gosden等[6]采用DMSO進行羊的卵巢組織冷凍,自體移植后分娩了小羊;其后的多數(shù)研究表明DMSO的慢速冷凍可以保存竇前卵泡,移植后B超監(jiān)測顯示有卵泡的生長發(fā)育[7]。Castro等[8]的研究發(fā)現(xiàn),DMSO與蔗糖加或不加血清都可以在體外培養(yǎng)中見到較好的卵泡生長。PROH因其用于卵母細胞和胚胎的冷凍效果滿意,此后被應用至慢速冷凍的研究。研究發(fā)現(xiàn),PROH除可保存卵泡外,對前顆粒細胞的保存也有較好的效果。Fabbri等[9]的研究表明相對低的PROH與蔗糖可以獲得較好的慢速冷凍效果。本實驗中分別采用DMSO和PROH作為冷凍保護劑進行慢速冷凍,結(jié)果顯示均能較好地維持組織粒的內(nèi)分泌功能,統(tǒng)計學分析無顯著性差異。
玻璃化冷凍因保護劑的濃度高,常聯(lián)合采用多種保護劑以降低毒性損傷,因此各中心根據(jù)自己的條件所采用的冷凍方案各有區(qū)別,冷凍效果也有所差異[10]。近期的研究認為針灸針的應用可以獲得更好的玻璃化冷凍效果[11]。玻璃管冷凍是囊胚玻璃化冷凍的演變,直接將經(jīng)預平衡液和玻璃化液兩步平衡好的組織投入玻璃管中,迅速降溫,以期達到玻璃化的狀態(tài),更好地保護卵巢組織。整個操作耗時短,因此本實驗希望能夠通過對卵巢組織塊大小、冷凍、復蘇液中保護劑的濃度以及平衡時間的調(diào)整,摸索合適的冷凍方案。結(jié)果顯示,兩步平衡作用時間5min和8min相比,差異無統(tǒng)計學意義;無論是體外培養(yǎng)液還是同種移植小鼠血清E2水平比較,結(jié)果均提示本實驗中的兩種冷凍方法復蘇后的卵巢組織均具有內(nèi)分泌功能,且慢速冷凍效果可能優(yōu)于玻璃化冷凍效果。
體外培養(yǎng)通過構(gòu)建合適的氣體濃度和營養(yǎng)物質(zhì),提供卵巢組織體外生長的條件,并可通過培養(yǎng)液中的激素檢測分析、評價組織的內(nèi)分泌功能[12]。研究顯示,體外培養(yǎng)卵巢組織的E2分泌與卵泡直徑的大小相關(guān)[13]。本實驗中,體外培養(yǎng)液未添加E2合成相關(guān)物質(zhì),而培養(yǎng)液中E2水平在各組14d中均呈現(xiàn)出持續(xù)上升的趨勢,提示在培養(yǎng)過程中,原始卵泡可向初級卵泡發(fā)育,且不僅原始卵泡在冷凍過程中可以被保存,部分初級卵泡也可以一定程度地被保存。因培養(yǎng)時間相對較短,原卵巢組織中的前體物質(zhì)可提供E2的合成原料。本實驗中幾種冷凍方法與新鮮對照組比較,無顯著性差異。
卵巢組織的移植可分為同種自體移植、同種異體移植和異種移植;根據(jù)移植部位的不同可分為原位移植和異位移植。動物實驗中,裸鼠的移植部位常選擇皮下、肌肉或腹腔;其他移植部位包括腎包膜下等,這些部位移植均獲得較好的生長情況[14-15]。腎包膜提供了相對表淺的移植位置,且貼近腎組織,血供相對豐富;但手術(shù)操作亦容易引起腎出血。研究表明,即使卵泡數(shù)有所下降,移植后的卵巢組織仍具有良好的分泌激素的功能[15]。本實驗中,血清E2水平也提示卵巢組織具有分泌活性,其中慢速冷凍血清E2水平高于玻璃化冷凍組,提示慢速冷凍組對卵泡保存的效果優(yōu)于冷凍管玻璃化冷凍組,這一趨勢與前期研究結(jié)果類似[1]。慢速冷凍因降溫過程中細胞內(nèi)冰晶形成、物理損傷及冷凍保護劑的細胞毒性等對組織/細胞有一定程度損傷;但本實驗中慢速冷凍復蘇組培養(yǎng)液及移植組血清E2水平高于新鮮對照組,這一結(jié)果難以用單一的冷凍損傷解釋,可能與冷凍過程中,部分具有分泌功能的生長卵泡受到冷凍損傷,原本合成、未來得及分泌的E2進入培養(yǎng)液/血液;以及移植后這部分不完全受損的卵泡逐漸恢復分泌功能,與由原始卵泡發(fā)育而來的卵泡共同作用,顯示出持續(xù)的較高E2水平;以及本實驗樣本量較少,存在一定不可避免的偏倚有關(guān)。其具體原因尚需要進一步的研究驗證。
本研究結(jié)果提示慢速冷凍與玻璃化冷凍復蘇后的卵巢組織具有一定內(nèi)分泌能力,慢速冷凍效果可能優(yōu)于玻璃化冷凍。同種移植實驗成功為進一步獲卵等操作提供了可行性。實際操作中可根據(jù)不同的條件和要求選擇適當?shù)睦鋬龇椒?,且可以對冷凍方法進行改進,以獲得更好的冷凍保存效果。但本實驗樣本量較少,且培養(yǎng)液或血清E2水平僅僅是卵巢組織功能的一方面體現(xiàn),日后的研究應該完善樣本總量并結(jié)合其他指標綜合評價冷凍效果。
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