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      珍稀泌鹽植物長葉紅砂兩個WRKY轉(zhuǎn)錄因子的克隆及表達分析

      2014-03-26 08:38:14王佳鄭琳琳顧天培王學峰王迎春
      草業(yè)學報 2014年4期
      關(guān)鍵詞:紅砂長葉擬南芥

      王佳,鄭琳琳,顧天培,王學峰,王迎春*

      (1.內(nèi)蒙古大學生命科學學院,內(nèi)蒙古 呼和浩特010021;2.內(nèi)蒙古和信園蒙草抗旱綠化股份有限公司,內(nèi)蒙古 呼和浩特010021)

      植物在生長發(fā)育過程中時刻遭受著各種生物和非生物脅迫,如病蟲害、鹽堿、干旱、低溫等。為了適應復雜多變的環(huán)境,植物自身形成了一套復雜的脅迫應答機制,使其能夠在不同環(huán)境中正常生長[1-3]?;诜肿铀降拿{迫應答信號轉(zhuǎn)導在這一過程中起到了至關(guān)重要的作用,其中WRKY蛋白作為植物特有的轉(zhuǎn)錄因子超家族,具有瞬時性、多效性,廣泛參與多種生物或非生物脅迫反應[4],對探索植物的抗逆性具有重要價值[5]。

      WRKY蛋白由于其N端高度保守的WRKYGQK氨基酸序列及其特殊的鋅指結(jié)構(gòu)而命名,根據(jù)WRKY結(jié)構(gòu)域的數(shù)量和鋅指結(jié)構(gòu)的不同,可將WRKY轉(zhuǎn)錄因子分為三大類:I類通常含有2個WRKY結(jié)構(gòu)域;II類含有1個WRKY結(jié)構(gòu)域,鋅指結(jié)構(gòu)為Cx4-5Cx22-23HxH型;III類含有1個WRKY結(jié)構(gòu)域,鋅指結(jié)構(gòu)為Cx7Cx23HxC型[6]。WRKY轉(zhuǎn)錄因子首先在甘薯(Ipomoeabatatas)中發(fā)現(xiàn),隨后在野生燕麥(Avenasativa)、皺葉歐芹(Petroselinumcrispum)、擬南芥(Arabidopsisthaliana)等植物中得到克隆和鑒定[7-10]。目前WRKY轉(zhuǎn)錄因子家族成員在擬南芥、水稻(Oryzasativa)、毛果楊(Populustrichocarpa)等[11-13]植物中的成員數(shù)分別為74,102,104個。植物體內(nèi)的WRKY轉(zhuǎn)錄因子在植物生長發(fā)育及對外界環(huán)境的適應中發(fā)揮了重要的調(diào)控作用[14]。Dong等[15]采用Northern blotting方法,發(fā)現(xiàn)擬南芥49個WRKY轉(zhuǎn)錄因子的表達與多種環(huán)境因素(低溫、干旱、植物激素、機械損傷、病原體)有關(guān)。仇玉萍等[16]從4℃脅迫的水稻植株cDNA文庫中獲得了13個WRKY基因全長,其中10個基因的表達受到NaCl、PEG(聚乙二醇,polyethylene glycol)、低溫(4℃)和高溫(42℃)等非生物逆境因子的脅迫影響。Xie等[17]用外源激素ABA(脫落酸,abscisic acid)和GA(赤霉素,gibberellin)處理水稻葉片發(fā)現(xiàn)OsWRKY71的表達量顯著升高。目前對WRKY轉(zhuǎn)錄因子的相關(guān)研究主要集中在擬南芥等模式植物中,而自然界中許多野生植物在抵抗各種生物和非生物脅迫的表現(xiàn)更為突出,因此加強對野生植物資源的相關(guān)研究,獲得優(yōu)質(zhì)抗性基因具有非常重要的意義。

      長葉紅砂(Reaumuriatrigyna),屬于檉柳科(Tamaricaceae)琵琶柴屬(Reaumuria),又名黃花紅砂、黃花琵琶柴,起源于第三紀,為古地中海孑遺植物,所以被稱為“活化石”,被列為內(nèi)蒙古自治區(qū)重點保護植物,是荒漠草原和干草原地區(qū)的重要生態(tài)屏障和良好草場[18]。石蠟切片和掃描電鏡觀察發(fā)現(xiàn),長葉紅砂葉和幼莖上均布有鹽腺,其鹽腺結(jié)構(gòu)對于適應鹽漬環(huán)境具有重要作用[19]。同時發(fā)現(xiàn)其氣孔下陷,具有孔下室,體積較鹽腺?。黄浔Pl(wèi)細胞細胞壁明顯加厚,可有效抑制葉片水分的蒸發(fā);表皮內(nèi)柵欄組織發(fā)達,海綿組織退化,中央維管束周圍具有大型儲水細胞[20],因此長葉紅砂對鹽堿和干旱等極端環(huán)境具有極強的適應性,開展長葉紅砂WRKY33轉(zhuǎn)錄因子作用機制研究,將為進一步探索該植物抗逆分子調(diào)控機制奠定基礎。本實驗室利用Illumina測序技術(shù)對正常生長和鹽脅迫的長葉紅砂進行轉(zhuǎn)錄組測序[21],獲得了該植物的大量遺傳信息,通過數(shù)據(jù)分析發(fā)現(xiàn)64694條Unigenes在鹽脅迫后的表達量發(fā)生了變化,其中67條Unigene片段屬于WRKY轉(zhuǎn)錄因子家族。本研究選取兩個注釋為WRKY轉(zhuǎn)錄因子且在鹽處理后表達上調(diào)明顯的兩個基因片段(Unigene30408和Unigene14081),采用RACE技術(shù)克隆獲得了這兩個WRKY轉(zhuǎn)錄因子的全長序列,并利用半定量RT-PCR技術(shù)研究了其表達特性。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      本實驗所用長葉紅砂種子于2009年9月采自中國內(nèi)蒙古自治區(qū)東阿拉善-西鄂爾多斯地區(qū)(106°27′~111°28′E,39°13′~40°52′N,海拔1500~2100m),種子采回后于室外晾干,室溫下貯藏備用。

      RNA提取試劑盒(Plant Plus RNA Regent)購自北京天根生化科技有限公司;Taq DNA聚合酶、DNase I、RNase inhibitor、pMD19-T載體及DNA Marker購自TaKaRa公司;大腸桿菌DH5α感受態(tài)細胞,購自北京全式金生物技術(shù)有限公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒為Invitrogen公司的M-MLV Reverse Transcriptase Kit;cDNA全長擴增使用Clontech公司的SMARTTMRACEcDNA Amplification Kit;DNA凝膠回收試劑盒購自Axygen公司;其他試劑均為進口分裝或國產(chǎn)分析純。PCR引物合成及測序由北京六合華大基因科技股份有限公司完成。

      1.2 方法

      1.2.1 植物培養(yǎng)和脅迫處理 挑選籽粒飽滿的長葉紅砂種子,10%次氯酸鈉浸泡15min,滅菌水沖洗3~5遍,播種于裝有30mL MS(Murashige and Skoog)培養(yǎng)基的150mL三角瓶中。暗培養(yǎng)3d后,置于25℃、濕度70%、16h/8h光照/黑暗的條件下培養(yǎng)。待幼苗生長至10cm左右,將其轉(zhuǎn)移至約裝有30mL 1/2Hoagland營養(yǎng)液的大試管中,在相同條件下繼續(xù)培養(yǎng),期間每隔3d更換一次營養(yǎng)液。

      待幼苗長至20cm左右時選取長勢一致的幼苗,分別用30%PEG6000、100mmol/L NaCl、10μmol/L ABA及4℃處理0,1,3,6,12和24h,植物材料采集后用液氮速凍,存于-80℃?zhèn)溆谩?/p>

      1.2.2 RNA提取和cDNA合成 長葉紅砂總RNA的提取參照天根Plant Plus RNA Reagent說明書進行。所提總RNA在37℃下用RNase-free DNase I處理1h去除殘余DNA。用Nanovue plus微量紫外分光光度計檢測其濃度和質(zhì)量,1%瓊脂糖凝膠電泳檢測其完整性。

      RACE所用cDNA合成參照Clontech公司的SMARTTMRACE cDNA Amplification Kit說明書進行;半定量cDNA合成參照Invitrogen公司的M-MLV Reverse Transcriptase Kit說明書進行。

      1.2.3 長葉紅砂兩個WRKY基因全長cDNA序列的擴增 根據(jù)長葉紅砂高通量測序結(jié)果功能注釋為WRKY轉(zhuǎn)錄因子(Unigene30408和Unigene14081)的DNA序列,參照Clontech公司的SMARTTMRACE cDNA Amplification試劑盒要求設計RACE引物(表1)。以長葉紅砂cDNA為模板,結(jié)合試劑盒內(nèi)提供的錨定引物進行目的基因3′和5′末端的擴增。第一輪PCR反應體系為25μL,包含2mmol/L Mg2+、10mmol/L dNTPs、錨定引物10xUPM(試劑盒提供)2.5μmol/L、特異性引物 GSP5或 GSP3 0.5μmol/L,Taq DNA 聚合酶1.0U,模板cDNA 20ng。PCR擴增程序為95℃預變性5min;94℃變性30s,72℃延伸2min,循環(huán)5次;94℃變性30s,70℃退火30s,72℃延伸2min,循環(huán)5次;94℃變性30s,68℃退火30s,72℃延伸2min,循環(huán)25次,72℃延伸10min。選取第一輪PCR產(chǎn)物分別稀釋10,50,100倍,以1μL為模板,引物使用巢式引物NGSP5或NGSP3,進行巢式PCR,PCR體系和條件同上。巢式PCR產(chǎn)物經(jīng)切膠回收、連接至PMD-19T載體,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α感受態(tài)細胞,鑒定后進行測序。測序結(jié)果用vector NTI 11.5軟件拼接在一起,得到基因全長cDNA序列。

      1.2.4RtWRKY33-1和RtWRKY33-2基因的生物信息學分析 利用NCBI的ORF Finder(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gorf/gorf.html)識別開放閱讀框序列并翻譯推測出氨基酸序列;利用Ex-PASy數(shù)據(jù)庫(http://www.expasy.org)的 Prot-Param軟件分析蛋白的理論分子量和等電點,利用SOPMA軟件對蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)進行預測[22];蛋白序列比對用ClustalW軟件執(zhí)行;系統(tǒng)進化樹用MEGA 5.05軟件,鄰接法(neighbor-joining,N-J法)繪制系統(tǒng)進化樹。

      1.2.5 半定量RT-PCR表達分析 根據(jù)兩個基因的編碼序列和長葉紅砂β-actin序列信息設計用于半定量RT-PCR分析的特異引物及內(nèi)參基因引物(表1)。PCR反應體系為25μL,內(nèi)含2mmol/L Mg2+、200μmol/L dNTPs、引物各1.0μmol/L,Taq DNA 聚合酶1.0U,20ng模板cDNA。PCR反應程序為94℃預變性1min,94℃變性20s、55℃退火30s、72℃延伸30s,28個循環(huán),PCR產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳分離觀察。重復3次,通過比較目的條帶的亮度以判定基因表達的強弱。

      表1 實驗所用的引物列表Table 1 Primer sequences was used in this study

      2 結(jié)果與分析

      2.1 基因全長的克隆

      圖1 RACE-PCR產(chǎn)物凝膠電泳圖Fig.1 Products of RACE-PCR

      根據(jù)長葉紅砂錄組數(shù)據(jù)中兩個功能注釋為WRKY轉(zhuǎn)錄因子的基因序列(Unigene30408和Unigene14081)設計引物,利用RACE技術(shù)分別獲得兩個基因的3′和5′末端(圖1),利用vector NTI 11.5軟件將測序結(jié)果拼接獲得兩個分別為2163和2145bp的全長cDNA序列(GenBank登錄號分別為KF421158和KF421159),通過ORF finder軟件預測開放閱讀框分別為1681和1776bp,分別編碼573和591個氨基酸,在NCBI數(shù)據(jù)庫中比對發(fā)現(xiàn)這兩個基因與擬南芥AtWRKY33的同源相似度分別為79%和87%,因此將這兩個基因命名為Rt-WRKY33-1和RtWRKY33-2。

      2.2 RtWRKY33-1和RtWRKY33-2的生物信息學分析

      氨基酸序列分析顯示,這兩個基因均具有兩個典型的WRKYGQK保守結(jié)構(gòu)域,屬于I類WRKY轉(zhuǎn)錄因子(圖2)。其中RtWRKY33-1蛋白相對分子量62.85kDa,等電點為5.51。

      圖2 10種植物WRKY33氨基酸比對Fig.2 Comparison of the amino acid sequences of WRKY33in ten plants

      氨基酸比對分析表明同源性最高的為大豆(XP003544908)、黃瓜(XP004137368)和野草莓(XP004294758),同源性均為97%;其次為擬南芥(AAM34736)和琴葉擬南芥(XP002879748),同源性均為79%,以及葡萄(XP002272040),同源性為78%;同源性較低的為二穗短柄草(XP003577478)和烏拉爾圖小麥(EMS64237),分別為68%和58%。

      RtWRKY33-2蛋白相對分子量65.11kDa,等電點為6.48。氨基酸比對分析表明,同源性最高的為歐洲油菜(ACI14397),為91%;其次為大豆(XP003544908)、擬南芥(AAM34736)、野草莓(XP004294758)、黃瓜(XP004137368)和琴葉擬南芥(XP002879748),分別為88%,87%,86%,80%和79%。

      蛋白二級結(jié)構(gòu)預測結(jié)果表明,RtWRKY33-1蛋白(圖3A)的573個氨基酸中,473個為隨機卷曲,占76.27%;66個為α螺旋,占11.52%;57個為延伸鏈,占9.95%;13個為β轉(zhuǎn)角,占2.27%。RtWRKY33-2蛋白(圖3B)的591個氨基酸中,429個為隨機卷曲,占72.59%;73個為α螺旋,占12.35%;65個為延伸鏈,占11%;24個為β轉(zhuǎn)角,占4.06%。

      對這兩個基因編碼蛋白的二級結(jié)構(gòu)比對可以發(fā)現(xiàn)其保守結(jié)構(gòu)域隨機卷曲、α螺旋、β轉(zhuǎn)角和延伸鏈的構(gòu)成差異不大。然而在N末端(1~80aa之間)兩個蛋白中延伸鏈的數(shù)目相差雖然不大,出現(xiàn)位置卻存在很大差異,同時α螺旋和β轉(zhuǎn)角的數(shù)目和位置差異明顯;第1個WRKY結(jié)構(gòu)域之前(190~240aa之間)RtWRKY33-1的隨機卷曲中夾雜著7個α螺旋,而RtWRKY33-2中沒有;在兩個 WRKY結(jié)構(gòu)域之間(430~450aa之間)Rt-WRKY33-1有3個延伸鏈,而RtWRKY33-2中全部為隨機卷曲。

      系統(tǒng)進化樹分析顯示(圖4),長葉紅砂的兩個WRKY33轉(zhuǎn)錄因子與十字花科的琴葉擬南芥、擬南芥、薺菜和歐洲油菜親緣關(guān)系較近,與葫蘆科的黃瓜、葡萄科的葡萄、薔薇科的野草莓及豆科的大豆親緣關(guān)系次之,與禾本科的單子葉植物二穗短柄草、節(jié)節(jié)麥和烏拉爾圖小麥親緣關(guān)系較遠。

      圖3 RtWRKY33蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)預測Fig.3 Prediction of the secondary structure of RtWRKY33

      圖4 12種植物WRKY33氨基酸系統(tǒng)進化樹Fig.4 Phylogenetic tree based on amino acid sequence of WRKY33from ten plants

      2.3 RtWRKY33-1和RtWRKY33-2基因的表達特性分析

      通過半定量RT-PCR技術(shù)對兩個基因進行表達分析發(fā)現(xiàn),這兩個基因均受鹽(NaCl)、冷(4℃)、干旱(PEG)和ABA四種非生物脅迫的誘導(圖5)。RtWRKY33-1在鹽和冷脅迫下的表達趨勢基本一致(圖5A),處理1h后開始表達,3和6h基本不表達,在12和24h后表達量又升高,但低溫處理12h后對其誘導更明顯;在干旱脅迫下均有上調(diào)表達,呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢,在6h時表達量最高;在添加外源激素ABA的情況下均有表達,其表達呈現(xiàn)出先升高后降低然后又升高的趨勢。

      RtWRKY33-2在鹽、冷脅迫下均有明顯上調(diào)表達(圖5B),其表達呈現(xiàn)先升高后降低然后又升高的趨勢,在6 h表達量最低;干旱脅迫下持續(xù)表達,在1h表達最高,其后表達基本不變;施加外源激素ABA對其誘導明顯,開始1~12h階段表達量均比較高,但在24h后表達量迅速下降,基本不表達。

      通過對比兩個基因之間的表達趨勢分析發(fā)現(xiàn),在鹽和冷脅迫下RtWRKY33-2基因持續(xù)表達且上調(diào)明顯而RtWRKY33-1在3和6h基本不表達,因此鹽和冷對RtWRKY33-2的誘導更明顯;在干旱脅迫下兩個基因均持續(xù)表達,但RtWRKY33-1在6h表達量最高,而RtWRKY33-2在1h表達量最高;在施加外源激素ABA的條件下表達趨勢差異明顯,RtWRKY33-2處理24h后基本不表達,而RtWRKY33-1表達量雖然比較低,但是一直持續(xù)表達。

      圖5 RtWRKY33基因在不同脅迫處理下的表達分析Fig.5 Analysis of RtWRKY33gene expression in different stress

      3 討論

      植物體內(nèi)的WRKY轉(zhuǎn)錄因子參與多種生理生化反應,在高鹽、低溫、干旱等非生物脅迫及ABA響應信號轉(zhuǎn)導通路中有重要作用[23-24]。付乾堂和余迪求[25]采用 Northern blotting的方法,發(fā)現(xiàn)擬南芥 AtWRKY25、At-WRKY26和AtWRKY33轉(zhuǎn)錄因子受多種非生物脅迫因素的影響,其中低溫和高鹽對這3個轉(zhuǎn)錄因子的誘導尤為明顯。Jiang和Deyholos[26]對 NaCl脅迫下的擬南芥研究發(fā)現(xiàn)單突變體WRKY33和雙突變體WRKY25WRKY33能夠提高植株對NaCl的抗性。Li等[27]對WRKY25、WRKY26和WRKY33的擬南芥突變體和過表達擬南芥植株在高溫脅迫下的研究發(fā)現(xiàn),這3個轉(zhuǎn)錄因子在受乙烯激活的和熱激蛋白相關(guān)的信號通路中協(xié)同調(diào)節(jié)擬南芥對高溫的脅迫應答。因此WRKY33轉(zhuǎn)錄因子在擬南芥抵御非生物脅迫反應中發(fā)揮了重要作用。本研究中克隆到的長葉紅砂兩個WRKY33轉(zhuǎn)錄因子在4種非生物脅迫下均被誘導表達,但是鹽、冷和ABA對RtWRKY33-2誘導尤為明顯,同時RtWRKY33-2對干旱脅迫的響應更快,因此這兩個基因在長葉紅砂抵御非生物脅迫的應答反應中發(fā)揮的作用可能不同。

      蛋白質(zhì)的一級結(jié)構(gòu)中氨基酸的序列決定了高級結(jié)構(gòu),高級結(jié)構(gòu)決定了蛋白質(zhì)的功能,而其中的隨機卷曲經(jīng)常構(gòu)成蛋白質(zhì)活性部位和特異功能部位[28]。植物中的谷胱甘肽轉(zhuǎn)移酶(glutathione S-transferase,GST)是一類具有多種生理功能的蛋白質(zhì)超家族,三維結(jié)構(gòu)比較顯示,雖然所有植物的GST比較保守[29],但是在主要負責結(jié)合特異性底物的C末端結(jié)構(gòu)域有較大變異,不同的GST能結(jié)合特定底物而發(fā)揮不同的生理功能[30]。通過生物信息學分析我們發(fā)現(xiàn)RtWRKY33-1與RtWRKY33-2的一級結(jié)構(gòu)和二級結(jié)構(gòu)在WRKY結(jié)構(gòu)域的氨基酸序列和結(jié)構(gòu)特性的相似性較高,但是在非保守結(jié)構(gòu)域部分,尤其是N末端(1~80aa之間)、第1個WRKY結(jié)構(gòu)域之前(190~240aa之間)和兩個WRKY結(jié)構(gòu)域之間(430~450aa之間)等位置的差異明顯,可能對兩個基因功能有一定影響。這種差異是否會引起蛋白活性部位的空間結(jié)構(gòu)發(fā)生變化,從而使結(jié)合底物的特異性發(fā)生改變,還需要進一步的理論分析和實驗驗證。

      本研究克隆了長葉紅砂中兩個WRKY33轉(zhuǎn)錄因子,并對其進行了生物信息學分析與逆境脅迫下表達模式的初步探索,為長葉紅砂中研究WRKY33轉(zhuǎn)錄因子的功能和響應逆境應答的調(diào)控機制奠定了基礎。后續(xù)我們將對這兩個基因的拷貝數(shù)進行研究,并構(gòu)建植物表達載體,導入模式植物擬南芥,探索其在轉(zhuǎn)基因植株中的功能差異,為將來應用泌鹽植物長葉紅砂的WRKY33基因提高作物及牧草抗性提供參考。

      [1] Zhu J K.Cell signaling under salt,water and cold stresses[J].Current Opinion in Plant Biology,2001,4(5):401-406.

      [2] 鄭琳琳,張慧榮,賀龍梅,等.唐古特白刺質(zhì)膜Na+/H+逆向轉(zhuǎn)運蛋白基因的克隆與表達分析[J].草業(yè)學報,2013,22(4):179-186.

      [3] 張樂新,蘇曼,馬甜,等.羊草Δ1-吡咯琳-5-羧酸合成酶(LcP5CS1)基因的克隆與分析[J].草業(yè)學報,2013,22(4):197-204.

      [4] Rushton P J,Somssich I E,Ringler P,etal.WRKY transcription factors[J].Trends in Plant Science,2010,15(5):247-258.

      [5] 江騰,林勇祥,劉雪,等.苜蓿全基因組 WRKY轉(zhuǎn)錄因子基因的分析[J].草業(yè)學報,2011,20(3):211-218.

      [6] Eulgem T,Rushton P J,Robatzek S,etal.The WRKY superfamily of plant transcription factors[J].Trends in Plant Science,2000,5(5):199-206.

      [7] Ishiguro S,Nakamura K.Characterization of a cDNA encoding a novel DNA-binding protein,SPF1,that recognizes SP8sequences in the 5′upstream regions of genes coding for sporamin andβ-amylase from sweet potato[J].Molecular and General Genetics,1994,244(6):563-571.

      [8] Rushton P J,Macdonald H,Huttly A K,etal.Members of a new family of DNA-binding proteins bind to a conserved cis-element in the promoters ofα-Amy2genes[J].Plant Molecular Biology,1995,29(4):691-702.

      [9] Rushton P J,Tortes J T,Parniske M,etal.Interaction of elicitor-induced DNA-binding proteins with elicitor response elements in the promoters of parsley PR1genes[J].the EMBO Journal,1996,15(20):5690-5700.

      [10] De Pater S,Greco V,Pham K,etal.Characterization of a zinc-dependent transcriptional activator fromArabidopsis[J].Nucleic Acids Research,1996,24(23):4624-4631.

      [11] Rushton D L,Tripathi P,Rabara R C,etal.WRKY transcription factors:Key components in abscisic acid signalling[J].Plant Biotechnology Journal,2012,10(1):2-11.

      [12] Wu K L,Guo Z J,Wang H H,etal.The WRKY family of transcription factors in rice andArabidopsisand their origins[J].DNA Research,2005,12(1):9-26.

      [13] Pandey S P,Somssich I E.The role of WRKY transcription factors in plant immunity[J].Plant Physiology,2009,150(4):1648-1655.

      [14] 陳婷婷,楊青川,丁旺,等.紫花苜蓿 WRKY轉(zhuǎn)錄因子基因的克隆與亞細胞定位[J].草業(yè)學報,2012,21(4):159-167.

      [15] Dong J X,Chen C H,Chen Z X.Expression profiles of theArabidopsisWRKY gene superfamily during plant defense response[J].Plant Molecular Biology,2003,51(1):21-37.

      [16] 仇玉萍,荊邵娟,付堅,等.13個水稻 WRKY基因的克隆及其表達譜分析[J].科學通報,2004,49(18):1860-1869.

      [17] Xie Z,Zhang Z L,Zou X L,etal.Interactions of two abscisic-acid induced WRKY genes in repressing gibberellin signaling in aleurone cells[J].Plant Journal,2006,46(2):231-242.

      [18] 馬毓泉.內(nèi)蒙古植物志(第三卷)[M].呼和浩特:內(nèi)蒙古人民出版社,1989.

      [19] 薛焱,王迎春.鹽生植物長葉紅砂泌鹽特性的研究[J].中國沙漠,2008,28(3):437-442.

      [20] 薛焱.阿拉善特有植物長葉紅砂耐鹽機理的研究[D].呼和浩特:內(nèi)蒙古大學,2008.

      [21] Dang Z H,Zheng L L,Wang J,etal.Transcriptomic profiling of the salt-stress response in the wild recretohalophyteReaumuriatrigyna[J].BMC Genomics,2013,14:29.

      [22] 李劍,張金林,王鎖民,等.小花堿茅 HKT2;1基因全長cDNA的克隆與生物信息學分析[J].草業(yè)學報,2013,22(2):140-149.

      [23] He H,Dong Q,Shao Y H,etal.Genome-wide survey and characterization of theWRKYgene family inPopulustrichocarpa[J].Plant Cell Reports,2012,31(7):1199-1217.

      [24] 陶飛,馬江濤,唐益雄,等.抗逆轉(zhuǎn)錄因子在百脈根中的功能分析[J].草業(yè)學報,2013,22(3):250-258.

      [25] 付乾堂,余迪求.擬南芥AtWRKY25、AtWRKY26和AtWRKY33在非生物脅迫條件下的表達分析[J].遺傳,2010,32(8):848-856.

      [26] Jiang Y Q,Deyholos M K.Functional characterization ofArabidopsisNaCl-inducibleWRKY25andWRKY33transcription factors in abiotic stresses[J].Plant Molecular Biology,2009,69(1):91-105.

      [27] Li S J,F(xiàn)u Q T,Chen L G,etal.ArabidopsisthalianaWRKY25,WRKY26,and WRKY33coordinate induction of plant thermotole-rance[J].Planta,2011,233(6):1237-1252.

      [28] 王鏡巖,朱圣庚,徐長法.生物化學[M].北京:高等教育出版社,2002.

      [29] Thom R,Cummins I,Dixon D P,etal.Structure of a tau class glutathione S-transferase from wheat active in herbicide detoxification[J].Biochemistry,2002,41(22):7008-7020.

      [30] Basantani M,Srivastava A.Plant glutathione transferases-a decade falls short[J].Canadian Journal of Botany,2007,85(5):443-456.

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