史航,吳小濤
(1.東南大學(xué)醫(yī)學(xué)院,江蘇 南京 210009; 2.東南大學(xué)附屬中大醫(yī)院 骨科,江蘇 南京 210009)
椎間盤位于兩個相鄰的椎體之間,起連接作用,對人體的運(yùn)動、穩(wěn)定、平衡等有著重要的生物學(xué)意義。目前,椎間盤退行性病變的患病率顯著增加,它是一種與年齡相關(guān)的疾病,引起退變的因素有很多,其共同特點(diǎn)是髓核細(xì)胞(nucleus pulposus chondrocyte,NPC)數(shù)量減少和功能減退、細(xì)胞外基質(zhì)含量下降且比例失調(diào),這些都涉及到椎間盤細(xì)胞老化或凋亡。椎間盤細(xì)胞的老化和凋亡是組織退變過程中非常關(guān)鍵的因素[1]。通過對椎間盤退變的機(jī)制研究發(fā)現(xiàn),椎間盤退行性改變是從髓核細(xì)胞衰老開始,并進(jìn)行程序性退變的過程[2]。
20世紀(jì)60年代初,Hayflick等[3]在體外培養(yǎng)人成纖維細(xì)胞時發(fā)現(xiàn),在細(xì)胞連續(xù)分裂幾次后即失去增殖能力,他們將這一特殊的細(xì)胞生命活動狀態(tài)命名為細(xì)胞老化(senescence)。細(xì)胞發(fā)生老化時,仍具有一定的代謝活性,可分泌合成多種基質(zhì),但分泌表型已發(fā)生改變,細(xì)胞永久地停滯在G1期,無法進(jìn)行有絲分裂而增殖。研究表明,大量老化細(xì)胞的集聚將會導(dǎo)致組織器官內(nèi)功能細(xì)胞數(shù)目的減少及活性的降低,從而引起一系列如骨關(guān)節(jié)炎、皮膚衰老等退行性疾病,椎間盤的退行性變也不除外[4-5]。Evans等[6]研究發(fā)現(xiàn),退變的椎間盤內(nèi)存在細(xì)胞老化現(xiàn)象。Kim等[7]研究發(fā)現(xiàn),在椎間盤退行性變中,隨著年齡的增長,老化髓核細(xì)胞的數(shù)量逐漸增加,端粒酶活性降低,端粒的長度也隨之縮短。Roberts等[8]研究發(fā)現(xiàn),在突出的椎間盤組織中β-半乳糖苷酶(senescence associatedβ-galactosidase,SA-β-gal)陽性細(xì)胞數(shù)目增多,而且髓核細(xì)胞的陽性率比纖維環(huán)細(xì)胞的要高。Gruber等[9-10]研究發(fā)現(xiàn),隨著椎間盤退變程度(按Thompson分級)的加重,SA-β-gal陽性率顯著增加。
細(xì)胞老化是指體細(xì)胞在受到各種內(nèi)外環(huán)境因素刺激下,復(fù)制一定次數(shù)后失去了分裂增殖能力,功能減退,不可逆地停滯在G1/S期,進(jìn)入無法增殖的狀態(tài)[11]。細(xì)胞老化的一個重要機(jī)制是細(xì)胞連續(xù)性分裂后,染色體端粒進(jìn)行性縮短和端粒功能異常,后者模擬DNA損傷信號,上調(diào)p53基因表達(dá),隨后p53會激活其下游基因p21,從而抑制CDK2-Cyclin E的活性,降低了視網(wǎng)膜母細(xì)胞瘤(retinoblastoma,RB)蛋白的磷酸化程度,進(jìn)而失活主要負(fù)責(zé)細(xì)胞周期遞進(jìn)的核轉(zhuǎn)錄因子E2F,形成了由p53-p21-pRB信號介導(dǎo)的復(fù)制性老化(replicative senescence,RS)[12-13]。此外,在某些應(yīng)激因素(如異常應(yīng)力、氧化應(yīng)激、營養(yǎng)障礙等)刺激下,細(xì)胞在尚未經(jīng)歷過多的有絲分裂且維持一定端粒長度情況下能使p16表達(dá)上調(diào),后者通過取代細(xì)胞周期蛋白Cyclin D與CDK4/6結(jié)合,使Cyclin D-CDK4/6活性受到抑制,從而使pRB處于去磷酸化狀態(tài)而減少轉(zhuǎn)錄因子E2F的釋放,進(jìn)而阻止DNA的合成,使細(xì)胞停滯在G1/S期,從而阻礙了細(xì)胞的分裂增殖,最終形成了由p16-pRB信號介導(dǎo)的應(yīng)激誘導(dǎo)的過早老化(stress induced premature senescence,SIPS)[14-15]。
目前認(rèn)為,細(xì)胞老化的p53-p21-pRB與p16-pRB兩條信號通路之間存在著廣泛的重疊效應(yīng)。研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)使p16基因表達(dá)沉默后,細(xì)胞在某些應(yīng)激環(huán)境下同樣可發(fā)生過早老化,說明p53-p21-pRB信號通路也參與應(yīng)激誘導(dǎo)的過早老化的發(fā)生[16-17]。此外,p16的同源蛋白p14對p53具有調(diào)節(jié)作用,p14可通過一系列反應(yīng)抑制p53的降解,從而維持p53蛋白的穩(wěn)定與活性[18]。Han等[19]在人類成纖維細(xì)胞中發(fā)現(xiàn),p16能增加p21蛋白的穩(wěn)定性,p21則通過轉(zhuǎn)錄因子Sp1而激活p16的基因表達(dá),協(xié)同抑制細(xì)胞周期。
椎間盤是人體最大的缺血器官,在承受應(yīng)力負(fù)荷的同時,其內(nèi)的髓核細(xì)胞尚面臨著缺血缺氧、營養(yǎng)匱乏等不利環(huán)境。研究[6,9-10]顯示,在上述椎間盤環(huán)境的作用下,約30%的髓核細(xì)胞逐漸發(fā)生老化,且老化細(xì)胞所占比例隨椎間盤退變程度的加重而增大。Kim等[7]通過對人類椎間盤退變機(jī)制的研究發(fā)現(xiàn),在衰老的髓核細(xì)胞中均表達(dá)p53、p21和pRB,而且端粒進(jìn)行性縮短,端粒酶活性降低。Liang等[20]研究證實(shí),將端粒酶基因轉(zhuǎn)入髓核細(xì)胞內(nèi),端粒酶活性明顯增強(qiáng),其調(diào)節(jié)的p53表達(dá)水平降低。以上研究均提示由p53-p21-pRB信號通路介導(dǎo)的髓核細(xì)胞復(fù)制性老化在椎間盤退行性變過程中起著重要的作用。
然而,Dang等[21]研究發(fā)現(xiàn)青少年甚至兒童也會發(fā)生椎間盤退行性改變。Le Maitre等[1]研究發(fā)現(xiàn),在青少年退變的椎間盤中,老化的椎間盤細(xì)胞與年齡、端粒長度無明顯的相關(guān)性,而與p16的高表達(dá)有關(guān)。說明p16-pRB信號通路介導(dǎo)的應(yīng)激誘導(dǎo)的過早老化亦存在于椎間盤退變過程中。
細(xì)胞周期停滯是細(xì)胞老化的一個基本特征,也是用于體外鑒定細(xì)胞老化的一個重要指標(biāo)[22]。為了檢測細(xì)胞是否躍出了細(xì)胞周期,人們通常檢測增殖相關(guān)提示因子Ki-67的表達(dá)程度;或者通過將溴脫氧尿嘧啶摻入到細(xì)胞培養(yǎng)基中,觀察是否合成新的DNA。通過流式細(xì)胞術(shù)可以觀察到細(xì)胞群中處于不同周期細(xì)胞的比例:細(xì)胞老化主要表現(xiàn)為G1期阻滯,但也可以伴隨G2/M期阻滯或者直接由G2/M期阻滯誘導(dǎo)形成[23-24]。
雖然細(xì)胞周期阻滯,DNA停止了復(fù)制,但老化細(xì)胞中RNA與蛋白質(zhì)含量均比正常細(xì)胞中明顯增多[25]。這是因?yàn)殡m然細(xì)胞進(jìn)入老化階段后,蛋白質(zhì)的整體合成能力下降,但是蛋白質(zhì)的降解體系受到更加明顯的抑制,從而導(dǎo)致蛋白質(zhì)在細(xì)胞內(nèi)累積。同樣的情況應(yīng)該也發(fā)生在RNA的合成和分解過程中。這種生物大分子的積累使老化細(xì)胞的形態(tài)發(fā)生改變,如老化髓核細(xì)胞表現(xiàn)為細(xì)胞體積增大、胞質(zhì)變脆、胞漿空泡化明顯。然而,并不是所有的細(xì)胞老化都會出現(xiàn)上述所有類型的細(xì)胞形態(tài)學(xué)改變。例如,在一些由于基因突變或表達(dá)異常導(dǎo)致的細(xì)胞老化中,其細(xì)胞形態(tài)改變就不典型[22]。
通過細(xì)胞形態(tài)判定細(xì)胞老化存在主觀性,檢測細(xì)胞周期停滯缺乏直觀性,往往很難在組織中直接觀察到老化細(xì)胞。而與老化相關(guān)β-半乳糖苷酶(SA-β-gal)染色為檢測細(xì)胞老化提供了一種新的方法[26]。β-半乳糖苷酶主要存在于溶酶體內(nèi),該酶在pH 4.2~pH 4.6的條件下活性最高,在中性條件下檢測不到其活性。當(dāng)細(xì)胞發(fā)生老化時,溶酶體膨脹、數(shù)目增多,β-半乳糖苷酶在溶酶體中明顯累積,從而保證了即使在pH 6的條件下依然可以檢測到該酶的殘余活性[26-27]。因此,人們將在pH 6時仍可檢測到活性的β-半乳糖苷酶稱為SA-β-gal。然而,β-半乳糖苷酶的活性上調(diào)也可在一些非老化的腫瘤或永生化細(xì)胞內(nèi)出現(xiàn),目前仍缺乏能特異性反映細(xì)胞老化狀態(tài)的生化指標(biāo)。盡管如此,因?yàn)槠涿舾行?、特異性等?yōu)勢,SA-β-gal染色仍然是目前檢測細(xì)胞老化的多種方法中應(yīng)用最廣泛的一種方法。
SAHF形成是描述細(xì)胞老化狀態(tài)的一項(xiàng)特異指標(biāo),它的主要表現(xiàn)是常染色質(zhì)DNA凝集,并形成致密、大小不等的異染色質(zhì)顆粒[28-29],而每一個異染色質(zhì)顆粒大多來自一條單獨(dú)的染色體[30-31]。SAHF在不可逆的細(xì)胞周期停滯中發(fā)揮著重要作用[28]。在SAHF中,H3型組蛋白(histone H3)第9位賴氨酸(H3K9)三甲基化水平明顯增加,并以此為錨定點(diǎn)來吸引各亞型異染色質(zhì)蛋白1(heterochromatin protein 1,HP1)聚集[30];同時會出現(xiàn)染色質(zhì)上H1型組蛋白(histone H1)的剝離和高遷移率A族蛋白(high-mobility group A proteins,HMGA proteins)、非經(jīng)典組蛋白macroH2A的沉積[29,31-32]?,F(xiàn)在普遍認(rèn)為,SAHF是在p16-pRB通路和以組蛋白抑制蛋白A(histone repressor A,HIRA)為核心的組蛋白分子伴侶復(fù)合物協(xié)同作用下形成的[33]。當(dāng)p16表達(dá)水平上調(diào)時,E2F的轉(zhuǎn)錄因子活性受到明顯抑制,結(jié)合在E2F靶標(biāo)基因上的組蛋白甲基化水平隨之升高,從而為HP1的結(jié)合以及SAHF的形成提供了靶點(diǎn)[33-34]。由于SAHF的特征性結(jié)構(gòu),近年來它已經(jīng)作為新的標(biāo)志物用于判定細(xì)胞老化。
端粒是位于染色體末端的DNA重復(fù)序列,是由短的多重復(fù)的非轉(zhuǎn)錄序列(TTAGGG)及一些結(jié)合蛋白組成的特殊結(jié)構(gòu),它能保護(hù)染色體末端免于融合和退化,在染色體定位、復(fù)制、保護(hù)和調(diào)控細(xì)胞生長等方面具有重要作用[35]。然而,由于DNA聚合酶無法完全復(fù)制染色體的滯后鏈,導(dǎo)致端粒DNA重復(fù)序列隨著復(fù)制次數(shù)的增加而不斷縮短,當(dāng)端??s短到一定程度時,細(xì)胞便會開啟自發(fā)性老化程序[36]。人們可以通過檢測端粒序列的長度和端粒逆轉(zhuǎn)錄酶(telomerase reverse transcriptase,TERT)的酶活性來評估端粒的功能。因而,端粒功能異常也被認(rèn)為是一種可作為評判細(xì)胞老化的潛在標(biāo)志物。
隨著椎間盤退變的進(jìn)行性加重,老化的髓核細(xì)胞在體內(nèi)不斷聚集,為了進(jìn)一步了解椎間盤細(xì)胞老化在椎間盤退變中的機(jī)制,將來的研究可采用人正常髓核細(xì)胞系,通過體外連續(xù)培養(yǎng)傳代、氧化應(yīng)激干預(yù)分別建立髓核細(xì)胞復(fù)制性老化和應(yīng)激誘導(dǎo)的過早老化模型,探索p53-p21-pRB和p16-pRB通路在髓核細(xì)胞老化過程中的信號介導(dǎo)與交通,尋找髓核細(xì)胞老化的關(guān)鍵調(diào)控信號及老化過程中特異性的標(biāo)志物,為生物學(xué)治療更具針對性地選擇抗老化靶點(diǎn)來修復(fù)椎間盤退變打開嶄新思路。
目前廣泛應(yīng)用判定細(xì)胞老化基本特征的方法有細(xì)胞周期停滯、細(xì)胞形態(tài)學(xué)改變、SA-β-gal染色、SAHF形成、端粒功能異常等。我們認(rèn)為,目前尚無任何一種可以在體內(nèi)外單獨(dú)、可靠地鑒定細(xì)胞老化的有效方法,在缺乏老化特異性檢測指標(biāo)的情況下,上述多種方法的聯(lián)合應(yīng)用是評價細(xì)胞老化的較好選擇。
[1] Le MAITRE C L,FREEMONT A J,HOYLAND J A.Accelerated cellular senescence in degenerate intervertebral discs:a possible role in the pathogenesis of intervertebral disc degeneration[J].Arthritis Res Ther,2007,9(3):R45.
[2] FREEMONT A J,WATKINS A,Le MAITRE C,et al.Current understanding of cellular and molecular events in intervertebral disc degeneration:implications for therapy[J].J Pathol,2002,196(4):374-379.
[3] HAYFLICK L,MOORHEAD P S.The serial cultivation of human diploid cell strains[J].Exp Cell Res,1961,25:585-621.
[4] LOESER R F.Aging and osteoarthritis:the role of chondrocyte senescence and aging changes in the cartilage matrix[J].Osteoarthritis Cartilage,2009,17(8):971-979.
[5] DAVALOS A R,COPPE J P,CAMPISI J,et al.Senescent cells as a source of inflammatory factors for tumor progression[J].Cancer Metastasis Rev,2010,29(2):273-283.
[6] EVANS E H,KLETSAS D,URBAN J,et al.The use of SA-β-Gal to assess cell senescence in intervertebral disc cells[J].Int J Exp Pathol,2004,85(4):A61-62.
[7] KIM K W,CHUNG H N,HA K Y,et al.Senescence mechanisms of nucleus pulposus chondrocytes in human intervertebral discs[J].Spine J,2009,9(8):658-666.
[8] ROBERTS S,EVANS E H,KLETSAS D,et al.Senescence in human intervertebral discs[J].Eur Spine J,2006,15( Suppl 3):S312-316.
[9] GRUBER H E,INGRAM J A,NORTON H J,et al.Senescence in cells of the aging and degenerating intervertebral disc:immunolocalization of senescence associated beta-galactosidase in human and sand rat discs[J].Spine (Phila Pa 1976),2007,32(3):321-327.
[10] GRUBER H E,INGRAM J A,DAVIS D E,et al.Increased cell senescence is associated with decreased cell proliferationinvivoin the degenerating human annulus[J].Spine J,2009,9(3):210-215.
[11] HAYFLICK L.The limitedinvitrolifetime of human diploid cell strains[J].Exp Cell Res,1965,37:614-636.
[12] KNUDSEN E S,KNUDSEN K E.Tailoring to RB:tumor suppressor status and therapeutic response[J].Nat Rev Cancer,2008,8(9):714-724.
[13] BURKHART D L,SAGE J.Cellular mechanisms of tumor suppression by the retinoblastoma gene[J].Nat Rev Cancer,2008,8(9):671-682.
[14] 王軍,吳小濤,王運(yùn)濤.細(xì)胞老化與椎間盤退變關(guān)系的研究進(jìn)展[J].東南大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版,2011,30(4):621-625.
[15] 曹鵬飛,吳小濤,王運(yùn)濤.抗細(xì)胞老化治療椎間盤退變性病變的研究進(jìn)展[J].東南大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版,2013,32(4):479-482.
[16] BEN-PORATH I,WEINBERG R A.The signals and pathways activating cellular senescence[J].Int J Biochem Cell Biol,2005,37(5):961-976.
[17] D’ADDA di FAGAGNA F,REAPER P M,CLAY-FARRACE L,et al.A DNA damage checkpoint response in telomere-initiated senescence[J].Nature,2003,426(6963):194-198.
[18] QIAN Y,CHEN X.Tumor suppression by p53:making cells senescent[J].Histol Histopathol,2010,25(4):515-526.
[19] HAN X L,WU F G,ZHANG Z Y,et al.Posttranscriptional induction of p21Waf1 mediated by ectopic p16INK4 in human diploid fibroblast[J].Chin Med J (Engl),2007,120(5):405-409.
[20] LIANG W,YE D,DAI L,et al.Over expression of hTERT extends replicative capacity of human nucleus pulposus cells,and protects against serum starvation-induced apoptosis and cell cycle arrest[J].J Cell Biochem,2012,113:2112-2121.
[21] DANG L,LIU Z.A review of current treatment for lumbar disc herniation in children and adolescents[J].Eur Spine J,2010,19(2):205-214.
[22] KUILMAN T,MICHALOGLOU C,MOOI W J,et al.The essence of senescence[J].Genes Dev,2010,24(22):2463-2479.
[23] WADA T,JOZA N,CHENG H Y,et al.MKK7 couples stress signalling to G2/M cell-cycle progression and cellular senescence[J].Nat Cell Biol,2004,6(3):215-226.
[24] ABDALLAH P,LUCIANO P,RUNGE K W,et al.A two-step model for senescence triggered by a single critically short telomere[J].Nat Cell Biol,2009,11(8):988-993.
[25] De CECCO M,JEYAPALAN J,ZHAO X,et al.Nuclear protein accumulation in cellular senescence and organismal aging revealed with a novel single-cell resolution fluorescence microscopy assay[J].Aging,2011,3(10):955-967.
[26] DIMRI G P,LEE X,BASILE G,et al.A biomarker that identifies senescent human cells in culture and in aging skininvivo[J].Proc Natl Acad Sci USA,1995,92(20):9363-9367.
[27] YANG N C,HU M L.The limitations and validities of senescence associated-galactosidase activity as an aging marker for human foreskin fibroblast Hs68 cells[J].Exp Gerontol,2005,40(10):813-819.
[28] NARITA M,NUNEZ S,HEARD E,et al.Rb-mediated heterochromatin formation and silencing of E2F target genes during cellular senescence[J].Cell,2003,113(6):703-716.
[29] ZHANG R,POUSTOVOITOV M V,YE X,et al.Formation of MacroH2A-containing senescence associated heterochromatin foci and senescence driven by ASF1a and HIRA[J].Dev Cell,2005,8(1):19-30.
[30] ZHANG R,CHEN W,ADAMS P D.Molecular dissection of formation of senescence-associated heterochromatin foci[J].Mol Cell Biol,2007,27(6):2343-2358.
[31] FUNAYAMA R,SAITO M,TANOBE H,et al.Loss of linker histone H1 in cellular senescence[J].J Cell Biol,2006,175(6):869-880.
[32] NARITA M,NARITA M,KRIZHANOVSKY V,et al.A novel role for high-mobility group A proteins in cellular senescence and heterochromatin formation[J].Cell,2006,126(3):503-514.
[33] ADAMS P D.Remodeling of chromatin structure in senescent cells and its potential impact on tumor suppression and aging[J].Gene,2007,397(1/2):84-93.
[34] GONZALO S,GARCIA-CAO M,FRAGA M F,et al.Role of the RB1 family in stabilizing histone methylation at constitutive heterochromatin[J].Nat Cell Biol,2005,7(4):420-428.
[35] ROBLES S J,ADAMI G R.Agents that cause DNA double strand breaks lead to p16INK4a enrichment and the premature senescence of normal fibroblasts[J].Oncogene,1998,16(9):1113-1123.
[36] CHANG B D,BROUDE E V,DOKMANOVIC M,et al.A senescence-like phenotype distinguishes tumor cells that undergo terminal proliferation arrest after exposure to anticancer agents[J].Cancer Res,1999,59(15):3761-3767.