唐海雙 于晗 張晶
髓源抑制性細(xì)胞(myeloid-derived suppressor cells,MDSCs)是一類來源于骨髓前體細(xì)胞的異常分化體,由不同分化程度的未成熟巨噬細(xì)胞、粒細(xì)胞、樹突狀細(xì)胞以及其他分化早期階段的髓系細(xì)胞構(gòu)成[1-2]。前期大量研究發(fā)現(xiàn),MDSCs在荷瘤小鼠或腫瘤患者體內(nèi)由骨髓募集到外周大量擴(kuò)增,并進(jìn)一步誘導(dǎo)活化,發(fā)揮抑制機(jī)體抗腫瘤免疫的作用[3]。
腫瘤細(xì)胞產(chǎn)生的IL-6、環(huán)氧化物酶(COX2)、PG、SCF、M-CSF、GM-CSF、VEGF等細(xì)胞因子可誘導(dǎo)MDSCs的擴(kuò)增[4]。STAT3被認(rèn)為是調(diào)節(jié)MDSCs擴(kuò)增的主要轉(zhuǎn)錄因子。小鼠體內(nèi)的MDSCs通常表達(dá)髓系抗原CD11b和Gr1,但不表達(dá)成熟髓系抗原CD40、CD80、HLA-DR。小鼠體內(nèi)的大部分CD11b+/Gr1+細(xì)胞集聚在骨髓當(dāng)中,只有少量MDSCs(4%)在外周血和脾臟中檢測(cè)到。CD11b+/Gr1+細(xì)胞在不同內(nèi)環(huán)境下經(jīng)不同細(xì)胞因子誘導(dǎo),可以向樹突狀細(xì)胞、巨噬細(xì)胞、粒細(xì)胞分化[5]。在腫瘤生長(zhǎng)、炎癥感染時(shí)細(xì)胞因子的穩(wěn)態(tài)被打破,MDSCs的分化延遲,并聚集在外周淋巴器官、血液和腫瘤部位,最終向免疫抑制亞型分化。在多種小鼠模型中,MDSCs的免疫抑制效應(yīng)取決于其在外周淋巴器官和腫瘤部位的集聚。最近的研究顯示,癌癥患者外周血中的MDSCs為一群不成熟亞型細(xì)胞[6],它們普遍表達(dá)髓系抗原CD11b和CD33,但缺乏成熟髓系抗原的表達(dá)。MDSCs分為兩種亞型,單核細(xì)胞型,表達(dá)CD14;粒細(xì)胞型,表達(dá)CD15。大量研究發(fā)現(xiàn)腫瘤源性因子(tumor derived factors, TDFs)不僅促進(jìn)MDSCs在外周的募集而且促使其向免疫抑制亞型分化。
MDSCs的募集是多重因素共同的作用,其中慢性炎癥尤為關(guān)鍵。研究表明炎癥相關(guān)分子VEGF、GM-CSF與MDSCs的集聚密切相關(guān),炎癥可能促進(jìn)了免疫抑制。然而,直到發(fā)現(xiàn)促炎因子IL-1β、IL-6和生物活性酯PGE2能誘導(dǎo)MDSC的產(chǎn)生,炎癥與MDSCs募集的關(guān)系才被確定。后續(xù)研究又表明炎癥通過誘導(dǎo)MDSCs的產(chǎn)生,阻斷免疫監(jiān)視和抗腫瘤的免疫活動(dòng),起到保護(hù)腫瘤細(xì)胞,促進(jìn)腫瘤發(fā)展的作用。
1.IL-1β、IL-6誘導(dǎo)MDSCs的募集:高表達(dá)IL-1β的腫瘤細(xì)胞能通過MDSCs下調(diào)抗腫瘤的免疫活性,而且高表達(dá)IL-1β的腫瘤細(xì)胞具有更強(qiáng)的侵襲性和生長(zhǎng)、增殖能力;在加入IL-1βR抑制劑的小鼠或者IL-1βR基因敲除小鼠中,腫瘤生長(zhǎng)速度減慢。由此表明,IL-1β在MDSCs介導(dǎo)的免疫抑制中發(fā)揮著重要作用。盡管如此,研究發(fā)現(xiàn)MDSCs表達(dá)IL-6受體卻并不表達(dá)IL-1受體[7],這顯示IL-1β并不直接與MDSC作用,而IL-6是IL-1β炎癥反應(yīng)的下游通路分子,因此IL-1β誘導(dǎo)MDSCs的作用是由IL-6介導(dǎo)的。
IL-1β不僅誘導(dǎo)MDSCs的擴(kuò)增募集,而且能增強(qiáng)MDSCs與巨噬細(xì)胞的相互作用,抑制巨噬細(xì)胞的天然抗腫瘤作用[8]。研究表明,由高表達(dá)IL-1β的腫瘤誘導(dǎo)產(chǎn)生的MDSCs能產(chǎn)生更多的IL-10,且更能下調(diào)巨噬細(xì)胞IL-12的表達(dá)。通過TLR4基因敲除小鼠的實(shí)驗(yàn),表明IL-1β對(duì)MDSCs的調(diào)節(jié)作用是由LPS-TLR4通路介導(dǎo)的。TLR4敲除小鼠還可以集聚高水平的MDSCs,提示MDSC也可以通過不依賴TLR4的通路激活,這條替代通路很可能是由其他TLR配體介導(dǎo)的。因此,TLRs且以TLR4為主調(diào)節(jié)了MDSCs的集聚、活化,由此促進(jìn)腫瘤的發(fā)展[9]。
2.PGE2誘導(dǎo)MDSC的募集:研究表明,腫瘤微環(huán)境中過表達(dá)PGE2/COX-2,這在很大程度上形成了腫瘤的炎癥內(nèi)環(huán)境[10]。研究發(fā)現(xiàn), PGE2激動(dòng)劑促進(jìn)骨髓細(xì)胞向抑制性Gr+CD11b+MDSCs的分化,結(jié)果表明PGE2能夠誘導(dǎo)MDSCs的產(chǎn)生。COX-2抑制劑處理的荷瘤小鼠降低了MDSCs的水平并減慢了腫瘤的生長(zhǎng)進(jìn)程。用精氨酸酶作為衡量抑制活性的標(biāo)準(zhǔn),發(fā)現(xiàn)在腎癌患者當(dāng)中PGE2能夠上調(diào)MDSCs的表達(dá)。因此,PGE2的表達(dá)通過誘導(dǎo)更多MDSCs的產(chǎn)生來限制抗腫瘤的免疫活動(dòng),促進(jìn)腫瘤的發(fā)生和發(fā)展[11]。
3.CCL2/CCR2介導(dǎo)MDSCs的集聚:研究證實(shí)CCL2/CCR2在MDSCs中高表達(dá),并且該通路在MDSCs向腫瘤的遷移中發(fā)揮至關(guān)重要的作用。CCR2表達(dá)缺乏的MDSCs不能快速遷移到腫瘤部位或脾臟,因此CCL2/CCR2通路參與了MDSCs的遷移和MDSCs介導(dǎo)的腫瘤生長(zhǎng)[12]。
4.促炎S100蛋白調(diào)節(jié)MDSCs的集聚:S100A8/S100A9是一類與炎癥密切相關(guān)的蛋白,在多種炎癥疾病患者中表達(dá)都會(huì)增高,通過趨化白細(xì)胞釋放促炎因子增強(qiáng)炎癥反應(yīng)。很多研究報(bào)道S100A8/S100A9蛋白調(diào)節(jié)MDSCs的集聚和抑制活性。S100A8/S100A9的這種效應(yīng)主要通過兩種機(jī)制進(jìn)行:(1)通過STAT3依賴途徑阻斷骨髓前體細(xì)胞向正常DC和巨噬細(xì)胞分化[13]。(2)通過NF-κB依賴途徑促進(jìn)MDSCs向腫瘤部位的遷移[14]。
最新研究表明,MDSCs發(fā)揮免疫抑制功能不僅需要擴(kuò)增和募集,還需要活化,調(diào)節(jié)MDSCs活化的因子主要來自激活的T細(xì)胞和腫瘤基質(zhì)細(xì)胞及細(xì)胞因子IFN-γ、IL-4、IL-13和TGF-β,通過激活STAT6、STAT1和NF-кB等轉(zhuǎn)錄因子發(fā)揮作用。
MDSCs在體內(nèi)具有促腫瘤的免疫作用。用吉西他濱化學(xué)療法[15]等方式降低體內(nèi)MDSCs水平可恢復(fù)機(jī)體的腫瘤監(jiān)視、活化T細(xì)胞及NK細(xì)胞的功能,能夠提高腫瘤疫苗和其他免疫療法的功效。在體內(nèi),滅活調(diào)控MDSCs聚集的基因也可以恢復(fù)T細(xì)胞的活性并抑制腫瘤生長(zhǎng)、減少其遠(yuǎn)處轉(zhuǎn)移的可能性[16]。隨著年齡的增長(zhǎng),機(jī)體患有腫瘤的可能性大大增加,而在小鼠體內(nèi)的研究[17]顯示這一現(xiàn)象與體內(nèi)內(nèi)生MDSCs數(shù)量隨著年齡增長(zhǎng)而增加密切相關(guān)。MDSCs通過兩種方式參與了腫瘤免疫逃逸。
1.MDSCs對(duì)機(jī)體自然免疫應(yīng)答的作用機(jī)制:一些研究表明[18],MDSCs抑制NK細(xì)胞對(duì)腫瘤細(xì)胞產(chǎn)生的細(xì)胞毒性,并同時(shí)阻斷NK細(xì)胞產(chǎn)生IFN-γ,其機(jī)制是通過阻斷NKG2D的表達(dá)。但也有一些研究指出[19],MDSCs能夠表達(dá)NKG2D配體Rae-1進(jìn)而活化NK細(xì)胞,而活化的NK細(xì)胞反過來又減少M(fèi)DSCs的數(shù)量。以上這些研究結(jié)果的差異可能是MDSCs不同亞群所致,這些亞群在不同的微環(huán)境中發(fā)揮著不同的作用。
小鼠體內(nèi)的腫瘤免疫也與NK/T細(xì)胞和MDSCs的相互作用有關(guān)。Ⅰ型NK/T細(xì)胞抑制腫瘤生長(zhǎng),而Ⅱ型NK/T細(xì)胞通過分泌IL-13促進(jìn)腫瘤生長(zhǎng),Ⅱ型NK/T細(xì)胞的這一作用可誘導(dǎo)MDSCs的聚集,并促使巨噬細(xì)胞向促腫瘤M-2型細(xì)胞分化。NK/T細(xì)胞在病毒感染的小鼠體內(nèi)對(duì)MDSCs也具有調(diào)節(jié)作用,流感感染的小鼠體內(nèi)高水平的MDSCs在阻斷抗病毒免疫中發(fā)揮重要作用[20]。
2.MDSCs對(duì)適應(yīng)性免疫應(yīng)答的機(jī)制:MDSCs對(duì)T細(xì)胞的抑制作用既可為抗原特異性也可為抗原非特異性,取決于MDSCs不同的亞群。荷瘤小鼠體內(nèi)研究表明[21],MDSCs阻斷CD8+T細(xì)胞、CD4+T細(xì)胞的活化和增殖,對(duì)CD8+T細(xì)胞的抑制作用具有MHC限制性和抗原特異性。但也有研究表明[22],小鼠體內(nèi)MDSCs也抑制MHC異源的、抗原活化CD4+T細(xì)胞,表明MDSCs的抑制作用是非特異性的。
MDSCs通過攝取精氨酸[23]并通過胞內(nèi)高水平的精氨酸酶消耗大量精氨酸來對(duì)CD4+T細(xì)胞和CD8+T細(xì)胞發(fā)揮抑制作用。此外MDSCs產(chǎn)生的ROS和過(氧化)亞硝酸鹽通過硝化TCR阻斷CD8+T細(xì)胞,從而阻斷T細(xì)胞與MHC分子的相互作用。
大多數(shù)MDSCs的產(chǎn)生和功能的發(fā)揮都依賴于IFN-γ,其中包括單核細(xì)胞性MDSCs和粒細(xì)胞性MDSCs。單核細(xì)胞性MDSCs是通過NO發(fā)揮作用[24],而粒細(xì)胞性MDSCs是通過ROS發(fā)揮抑制作用。早期的一些研究表明[25],NO和ROS的產(chǎn)生具有IFN-γ依賴性。但I(xiàn)FN-γ并不是對(duì)所有的MDSCs都是必需的?;加欣w維瘤和結(jié)腸癌的小鼠[26]體內(nèi)一些表型為CD11b+/Gr1+的MDSCs在被活化之后會(huì)產(chǎn)生TGF-β。MDSCs也通過下調(diào)TCR相關(guān)蛋白的表達(dá)來發(fā)揮抑制作用,這一由炎癥引起的現(xiàn)象在大部分的癌癥患者體內(nèi)都能被觀察到。在缺少ξ鏈的情況下,CD4+和CD8+T細(xì)胞無法傳遞活化所需的信號(hào)。
兩種新的免疫抑制性機(jī)制共同參與MDSCs的抑制腫瘤免疫的作用。一方面是MDSCs下調(diào)初始T細(xì)胞歸巢所必須的膜分子CD62L[27],從而減少活化的CD4+和CD8+T細(xì)胞數(shù)量。另一方面是MDSCs通過消耗環(huán)境中T細(xì)胞活化必需分子半胱氨酸[28]來阻斷T細(xì)胞的活化。在健康狀態(tài)下,APC細(xì)胞通過蛋氨酸合成半胱氨酸,同時(shí)攝取細(xì)胞外的胱氨酸并將之轉(zhuǎn)化為半胱氨酸。在抗原提呈中半胱氨酸被T細(xì)胞攝取。當(dāng)機(jī)體內(nèi)存在高水平的MDSCs時(shí),MDSCs將攝取大部分可利用的半胱氨酸,消耗DC細(xì)胞和巨噬細(xì)胞產(chǎn)生的半胱氨酸。由于MDSCs自身并不產(chǎn)生半胱氨酸,因此細(xì)胞微環(huán)境中很快就會(huì)缺乏半胱氨酸,進(jìn)而使T細(xì)胞無法合成活化所必需的蛋白質(zhì),從而發(fā)揮抑制性作用。
參 考 文 獻(xiàn)
[1] Serafini P, Borrello I, Bronte V, et al. Myeloid suppressor cells in cancer recruitment, phenotype, properties, and mechanisms of immune suppression[J]. Semin Cancer Biol, 2006, 16(1): 53-65.
[2] Chandra D, Gravekamp C.Myeloid-derived suppressor cells: Cellular missiles to target tumors[J]. Oncoimmunology, 2013, 2(11): e26967.
[3] Eisenstein S, Coakley BA, Briley-Saebo K, et al. Myeloid-derived suppressor cells as a vehicle for tumor-specific oncolytic viral therapy[J]. Cancer Res, 2013, 73(16): 5003-5015.
[4] Chandra D, Gravekamp C. Myeloid-derived suppressor cells:Cellular missiles to target tumors[J]. OncoImmunology, 2013, 2(11): e26967.
[5] Bunt SK, Sinha P, Clements VK, et al.Inflammation induces myeloid-derived suppressor cells that facilitate tumor progression[J]. Immunol, 2006,176(1): 284-290.
[6] Khaled YS, Ammori BJ, Elkord E. Myeloid-derived suppressor cells in cancer: recent progress and prospects[J]. Immunol Cell Biol, 2013, 91(8): 493-502.
[7] Bunt SK, Yang L, Sinha P, et al.Reduced inflammation in the tumor microenvironment delays the accumulation of myeloid-derived suppressor cells and limits tumor progression[J]. Cancer Res, 2007, 67(20): 10019-10026.
[8] Ostrand-Rosenberg, Sinha P, Beury DW, et al. Cross-talk between myeloid-derived suppressor cells(MDSC), macrophages, and dendritic cells enhances tumor-induced immune suppression[J]. Semin Cancer Biol, 2012, 22(4): 275-281.
[9] Waldron TJ, Quatromoni JG, Karakasheva TA, et al. Myeloid derived suppressor cells: Targets for therapy[J]. Oncoimmuno-logy, 2013, 2(4): e24117.
[10] Obermajer N, Wong JL, Edwards RP, et al. PGE2-driven induction and maintenance of cancer-associated myeloid-derived suppressor cells[J]. Immunol Invest, 2012, 41(6-7):635-657.
[11] Rodriguez PC, Hernandez CP, Quiceno D, et al. Arginase I in myeloid suppressor cells is induced by COX-2 in lung carcinoma[J]. J Exp Med, 2005, 202(7): 931-939.
[12] Huang B, Zhang L, Zhao J, et al. CCL2/CCR2 pathway mediates recruitment of myeloid suppressor cells to cancers[J]. Cancer Letter, 2007, 252(1): 86-92.
[13] Cheng P, Corzo CA, Luetteke N, et al. Inhibition of dendritic cell differentiation and accumulation of myeloid-derived suppressor cells in cancer is regulated by S100A9 protein[J]. J Exp Med, 2008, 205(10): 2235-2249.
[14] Sinha P, Okoro C, Foell D,et al. Proinflammatory S100 proteins regulate the accumulation of myeloid-derived suppressor cells[J]. J Immunol, 2008, 181(7):4666-4675.
[15] Annels NE, Shaw VE, Gabitass RF, et al. The effects of gemcitabine and capecitabinecombination chemotherapy and of low-dose adjuvant GM-CSF on the levels of myeloid-derived suppressor cells in patients with advanced pancreatic cancer[J]. Cancer Immunol Immunother,2014, 63(2): 175-183.
[16] Li H, Han Y, Guo Q, et al. Cancer-expanded myeloid-derived suppressor cells induce anergy of NK cells through membrane-bound TGF-1[J]. J Immunol, 2009, 182(1): 240-249.
[17] Chandra D, Jahangir A, Quispe-Tintaya W, et al. Myeloid-derived suppressor cells have a central role in attenuated Listeria monocytogenes-based immunotherapy against metastatic breast cancer in young and old mice[J]. Br J Cancer, 2013,108(11): 2281-2290.
[18] Liu C, Yu S, Kappes J, et al. Expansion of spleen myeloid suppressor cells represses NK cell cytotoxicity in tumor-bearing host[J]. Blood, 2007, 109(10): 4336-4342.
[19] Jovanovic IP, Pejnovic NN, Radosavlievic GD, et al. Interleukin-33/ST2 axis promotes breast cancer growth and metastases by facilitating intratumoral accumulation of immunosuppressive and innate lymphoid cells[J]. Int J Cancer, 2014, 134(7): 1669-1682.
[20] De Santo C, Salio M, Masri SH, et al. Invariant NKT cells reduce the immunosuppressive activity of influenza A virus-induced myeloid-derived suppressorcells in mice and humans[J]. J Clin Invest. 2008, 118(12): 4036-4048.
[21] Sinha P, Clements VK, Ostrand-Rosenberg S. Reduction of myeloid-derived suppressor cells and induction of M1 macrophages facilitate the rejection ofestablished metastatic disease[J]. J Immunol, 2005, 174(2): 636-645.
[22] Sinha P, Clements VK, Ostrand-Rosenberg S. Interleukin-13-regulatedM2 macrophages in combination with myeloid suppressor cells block immune sur-veillance against metastasis[J]. Cancer Res, 2005, 65(24): 11743-11751.
[23] Zhu X, Pribis JP, Rodriguez PC, et al. The central role of arginine catabolism in T-cell dysfunction and increased susceptibility to infection after physical injury[J].Ann Surg, 2014, 259(1): 171-178.
[24] Youn JI, Nagaraj S, Collazo M, et al. Subsets of myeloid-derived suppressor cells in tumor-bearing mice[J]. J Immunol, 2008, 181(8): 5791-5802.
[25] Kusmartsev S, Gabrilovich DI. Immature myeloid cells and cancer-associated immune suppression[J]. Cancer Immunol Immunother, 2002, 51(6): 293-298.
[26] Fichtner-Feigl S, Terabe M, Kitani A, et al. Restoration of tumor immuno-urveillance via targeting of interleukin-13 receptor-2[J]. Cancer Res, 2008, 68(9): 3467-3475.
[27] Abe F, Younos I, Westphal S, et al. Therapeutic activity of sunitinib for Her2/neu induced mammary cancer in FVB mice[J]. Int Immunopharmacol, 2010, 10: 140-145.
[28] Srivastava MK, Clements VK, Sinha P, et al.Myeloid-derived suppressor cells inhibit T-cell activation by depleting cystine and cysteine[J]. Cancer Res, 2010, 70(1): 68-77.