劉 丹,廖順花,王莉新,王 易
(上海中醫(yī)藥大學(xué)免疫學(xué)與病原生物學(xué)教研室,上海 201203)
幽門螺桿菌(Helicobacter pylori,H.pylori)的致病性與其分泌的多種毒力因子有關(guān),包括:尿素酶(Ure)、鞭毛蛋白(Fla)、細(xì)胞毒素相關(guān)蛋白A(cytotoxin associated gene A,CagA)和空泡毒素A(vacuolating cytotoxin,VacA)等。其中VacA是一種單獨(dú)作用即可引起靶細(xì)胞發(fā)生空泡化、凋亡、骨架重排等病理改變,最終導(dǎo)致宿主細(xì)胞死亡的毒性蛋白,與胃、十二指腸的炎癥性疾病密切相關(guān)[1]。已有資料顯示并非全部的H.pylori都具有致病性,那些缺乏毒力因子(如VacA和CagA等)的細(xì)胞株常常是低毒株或無毒株,而不具有致病性[2]。且有文獻(xiàn)報(bào)道,經(jīng)藥物治療的H.pylori感染人群,其食管癌發(fā)病率增高(源于返流性食管炎的增加),提示非致病的H.pylori可能是人體潛在的正常菌群,完全清除并非善策[3-4]。故尋找非抗生素的其他治療策略或成為必要。
檳榔、大腹皮是臨床治療慢性活動(dòng)性胃炎、消化性潰瘍等消化道疾?。?]的常用中藥。氫溴酸檳榔堿(arecoline hydrobromide,AH)是此兩味中藥的主要藥理成分[6]。臨床使用雖不能獲得類似西藥二聯(lián)、三聯(lián)和四聯(lián)等方案聯(lián)合使用的根除效果。但對(duì)癥狀的緩解與改善卻十分肯定[7]。為解釋這一現(xiàn)象。本研究提出了中藥在非殺菌劑量下,可能通過抑制H.pylori毒力因子的形成與分泌來下調(diào)其毒性效應(yīng)的設(shè)想,故選擇VacA作為所選中藥成分氫溴酸檳榔堿的主要實(shí)驗(yàn)對(duì)象,在體外實(shí)驗(yàn)予以驗(yàn)證。
1.1 菌株、細(xì)胞株及中藥 H.pylori國際標(biāo)準(zhǔn)菌株NCTC11637購自于上海消化疾病研究所。胃癌細(xì)胞株BGC-823由上海中醫(yī)藥大學(xué)中藥學(xué)院贈(zèng)送。中藥活性成分氫溴酸檳榔堿購自Sigma公司。
1.2 培養(yǎng)基 混合抗生素:多粘菌素B(polymyxin B Sulfate)(Amerisco)2.5 ×107U· L-1,兩性霉素B(Amphotericin B)(Amerisco)5 g· L-1,萬古霉素(Vancomycin HCl)(Amerisco)10 g· L-1,磺胺增效劑(上海日初)5 g· L-1。混合抗生素添加于培養(yǎng)基中,用于抑制其它雜菌的污染,同時(shí)可為H.pylori生長提供所需的胸腺嘧啶脫氧核苷[8]。
哥倫比亞固體培養(yǎng)基:哥倫比亞瓊脂(Columbia Agar Base,CAB)(上海日初)39 g· L-1,1‰ (V/V)混合抗生素,10%(V/V)脫纖維羊血(上海青陽)。腦心浸液液體培養(yǎng)基:腦心浸液培養(yǎng)基(上海日初)39 g· L-1,1‰ (V/V)混合抗生素。
1.3 H.pylori的培養(yǎng)和鑒定 H.pylori菌株的固體培養(yǎng):將菌株接種于上述哥倫比亞瓊脂固體培養(yǎng)基上,L型棒均勻涂布,透明膠帶固定后放于充氣罐內(nèi)充入混合氣體(85%N2、10%CO2、5%O2),37℃恒溫培養(yǎng),更換氣體每天1次,3~5 d后進(jìn)行菌種鑒定。取對(duì)數(shù)期細(xì)菌,經(jīng)無菌 PBS洗滌后,測(cè)其OD600nm值,1OD 細(xì)菌濃度相當(dāng)于 1 ×1011· L-1,調(diào)細(xì)菌濃度為1×109· L-1,用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
H.pylori菌株的液體培養(yǎng):刮取已培養(yǎng)48 h的H.pylori菌苔,混懸于1 ml無菌生理鹽水,吸取200 μl接種于4 ml含混合抗生素的腦心浸液液體培養(yǎng)基中,置入?yún)捬豕?,充入混合氣體,37℃ 100 r·min-1振蕩培養(yǎng),每天更換氣體1次,待液體混濁后進(jìn)行鑒定。通過形態(tài)學(xué)和生化學(xué)方法加以鑒定,將具有典型菌落特征者進(jìn)行涂片和革蘭染色,油鏡觀察其典型形態(tài)特征,并進(jìn)行快速尿素酶試驗(yàn)、過氧化氫試驗(yàn)、氧化酶試驗(yàn)等一系列生化學(xué)鑒定。
1.4 中藥活性成分對(duì) H.pylori最低抑菌濃度(MIC)的測(cè)定[9]
1.4.1 固體法 將50 g· L-1氫溴酸檳榔堿倍比稀釋成不同的濃度梯度,每濃度取1 ml于無菌培養(yǎng)皿中,再加入9 ml哥倫比亞瓊脂,使氫溴酸檳榔堿的終濃度為 5、2.5、1.25、0.63、0.31、0.16、0.08 g·L-1。取50 μl上述對(duì)數(shù)期的 H.pylori菌液接種于制備好的含藥固體培養(yǎng)基上,培養(yǎng)3~5 d后觀察細(xì)菌的生長情況,每個(gè)濃度做3復(fù)板,無細(xì)菌生長的最小藥物濃度為MIC。
1.4.2 液體法 使用含混合抗生素的腦心浸液液體培養(yǎng)基對(duì)氫溴酸檳榔堿進(jìn)行倍比稀釋,使藥液終濃度與固體法一致,每個(gè)濃度做3復(fù)管,加入對(duì)數(shù)期菌液 100 μl,培養(yǎng)3 ~4 d 后,每管各取50 μl接種于不含中藥活性成分的哥倫比亞瓊脂固體培養(yǎng)基上,無細(xì)菌生長的最小濃度為MIC。
1.5 粗制VacA蛋白制備 將對(duì)數(shù)期細(xì)菌分別培養(yǎng)于含有0.15 g· L-1溴酸檳榔堿的液體培養(yǎng)基中,并設(shè)立不加藥物處理的對(duì)照組,每組3復(fù)管,培養(yǎng)至液體渾濁 (OD600=0.8)后,收集各組細(xì)菌菌液,按照文獻(xiàn)方法進(jìn)行粗制VacA蛋白制備[10],測(cè)蛋白濃度,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.6 VacA活性檢測(cè) 胃癌細(xì)胞BGC-823作為H.pylori分泌的VacA毒性作用的靶細(xì)胞,在本研究中用來評(píng)價(jià)VacA的細(xì)胞毒性效應(yīng)。BGC-823培養(yǎng)于含10%新生牛血清(Gibco)的RPMI 1640(Gibco)培養(yǎng)液中,對(duì)數(shù)期BGC-823細(xì)胞接種至24孔細(xì)胞板,1×105/孔,繼續(xù)培養(yǎng)24 h,至細(xì)胞貼壁并鋪滿大部分板底。根據(jù)文獻(xiàn)選擇1∶2毒素滴度,終體積1 ml,作用24 h[10]。分為 3 組:VacA 對(duì)照組加入上述未經(jīng)藥物處理的粗制VacA蛋白;AH處理組加入經(jīng)溴酸檳榔堿處理后的粗制VacA蛋白;細(xì)胞對(duì)照組加入不含VacA的細(xì)胞培養(yǎng)液1 ml。24 h后吸棄上清,倒置顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài)。每孔加入0.05%中性紅 PBS 溶液 200 μl,置室溫孵育 8 min,500 μl PBS洗3次,加入200 μl 75%酸化乙醇,酶標(biāo)儀測(cè)定570 nm 吸光值(A570)[10]。
1.7 半定量RT-PCR檢測(cè) 使用革蘭陰性細(xì)菌RNA提取試劑盒(OMEGA)進(jìn)行細(xì)菌RNA提取,測(cè)定各樣本的 OD260和 OD280,以定量 RNA濃度,OD260/OD280>1.8可用于實(shí)驗(yàn)。用10 μg RNA樣本,使用RevertAidTMFirst Strand cDNA Synthesis Kit(Fermentas)進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄,反應(yīng)體系和條件按照試劑盒說明書操作。用5 μl cDNA作為模板,以gyrB為內(nèi)參,按照PCR Master Mix試劑(Fermentas)使用說明,分別用VacA和gyrB引物,使用PCR Master Mix試劑(Fermentas)進(jìn)行PCR檢測(cè),分析VacA mRNA表達(dá)水平,VacA引物為 F 5'-CAATCTGTCCAA TCAAGCGAG-3',R 5'-GCGTCTAAATAATTCCAAGG-3',產(chǎn)物長度 570bp。gyrB引物為 F 5'-CGCTAAAGAAAGTGGCACGAC-3',R 5'-TGCGCGTTTCTTC ATCCAT-3',產(chǎn)物長度265bp。反應(yīng)條件為:94℃ 5 min預(yù)變性;94℃ 15 s,55℃ 30 s(gyrB)/52℃ 30 s(vacA),72℃ 1 min,35 個(gè)循環(huán)(gyrB)/40 個(gè)循環(huán)(vacA);72℃ 7 min延伸。5 μl PCR產(chǎn)物進(jìn)行2%瓊脂糖凝膠電泳,80V恒壓電泳30 min。用GBOX CHEMI圖像分析系統(tǒng)采集圖像,并使用smartview軟件讀取密度值。結(jié)果用目的基因/gyrB密度值表示。
1.8 細(xì)菌菌體蛋白和分泌蛋白樣本的制備 菌體蛋白制備:收集含藥物固體培養(yǎng)基上的細(xì)菌,PBS洗3次,沉淀加入1 ml細(xì)菌裂解液(8 mol· L-1脲素、4%CHAPS、1%pharmalyte(pH 3 ~10)、1%蛋白酶抑制劑混合物,用前加1%DTT。)懸浮。采用300W超聲粉碎細(xì)菌(工作10 s,間隔10 s)直至上清變清澈。4℃ 12 000 r·min-1離心 40 min,取上清。用考馬斯亮藍(lán)蛋白定量試劑盒(南京建成)定量蛋白濃度,-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>
分泌蛋白制備:收集在含藥物液體培養(yǎng)基中生長的細(xì)菌,將其高速離心,0.22 μm濾膜過濾,上清加入10%1 mol· L-1三氯乙酸,4℃放置3 h以上,直至看到沉淀。4℃ 80 000 r·min-1離心20 min,棄上清,沉淀加入1 ml丙酮洗滌3次,空氣中自然干燥。沉淀蛋白加入細(xì)菌裂解液溶解,定量蛋白濃度,-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.9 Western blot 取50 μg總蛋白進(jìn)行SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳,10%分離膠20 mA 15 min,3%堆積膠10 mA 1 h,200 mA 50 min轉(zhuǎn)膜,TTBS(100 mmol· L-1Tris-HCI,0.9%(W/V)NaCl,0.1%(V/V)Tween 20,pH 7.5)5 min洗3次,以5%脫脂奶粉TTBS封閉,常溫震蕩1 h。分別加入1∶250 VacA單抗(Santa Cruz)或1∶500 GAPDH單抗(Santa Cruz),4℃孵育過夜,TTBS洗 3次,加入1∶5 000稀釋的HRP標(biāo)記二抗 (上海聯(lián)科),RT震蕩1 h,TTBS 5 min洗3次,去除未結(jié)合二抗。取等量ECL發(fā)光劑(A液、B液各1 ml)混勻,浸膜3~5 min,曝光后顯影 5~60 s,定影 2 min。用 GBOX CHEMI圖像分析系統(tǒng)采集圖像,并使用smartview軟件讀取密度值。菌體蛋白中空泡毒素A的表達(dá)以GAPDH為內(nèi)參,結(jié)果用目的蛋白/GAPDH密度值之比表示,上清中空泡毒素A的表達(dá)直接以目的蛋白密度值表示。
1.10 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 使用SPSS 13.0專業(yè)統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以±s表示,各試驗(yàn)組與對(duì)照組間差異性采用t檢驗(yàn)。
2.1 細(xì)菌鑒定 肉眼可見直徑約為0.2~1.0 mm的圓形、半透明或透明的灰白色或無色的針尖樣細(xì)小菌落,典型菌落經(jīng)革蘭染色后,油鏡下可見革蘭陰性、弧形、S形或海鷗展翅狀的典型形態(tài),可判定為H.pylori(Fig 1)。進(jìn)一步生化學(xué)鑒定顯示,快速尿素酶試驗(yàn)、氧化氫試驗(yàn)、氧化酶試驗(yàn)均陽性者可確認(rèn)為 H.pylori菌株[11]。
Fig 1 Morph of H.pylori observed by high power with staining of Gram
2.2 中藥活性成分對(duì)H.pylori生長具有抑制作用 本研究首先使用平皿稀釋固體法和腦心浸液液體法測(cè)定中藥活性成分氫溴酸檳榔堿對(duì)H.pylori的最低抑菌濃度(MIC),以反映藥物對(duì)H.pylori的抑制作用。結(jié)果顯示二者均可以在體外抑制H.pylori的生長,其 MIC固體法為 1.25 g·L-1,液體法為 1.25 g·L-1。
2.3 中藥活性成分對(duì)H.pylori分泌的VacA活性的影響 本研究進(jìn)一步檢測(cè)了氫溴酸檳榔堿在體外對(duì)H.pylori分泌的VacA活性的影響。經(jīng)細(xì)胞毒實(shí)驗(yàn)篩選出對(duì)細(xì)胞無毒性作用的細(xì)胞濃度,且遠(yuǎn)低于相應(yīng)MIC藥物濃度的氫溴酸檳榔堿(0.15 g·L-1)干預(yù)處理的H.pylori培養(yǎng)上清,作用于BGC-823細(xì)胞,24 h后通過中性紅攝入法,檢測(cè)H.pylori分泌的VacA的細(xì)胞毒性,并以未經(jīng)藥物處理的H.pylori培養(yǎng)上清為VacA毒性對(duì)照組,和未加入VacA蛋白的細(xì)胞為細(xì)胞對(duì)照組。使用抑制率表示藥物對(duì)VacA活性的抑制能力。抑制率/%=[1-(處理組OD-細(xì)胞對(duì)照組OD)/(VacA毒性對(duì)照組OD-細(xì)胞對(duì)照組OD)]×100%。結(jié)果顯示,與細(xì)胞對(duì)照組相比較,未經(jīng)藥物處理的VacA蛋白對(duì)BGC-823細(xì)胞具有明顯的毒性作用(P<0.01),氫溴酸檳榔堿可明顯抑制VacA的活性,P<0.01(Fig 2A)。其對(duì)VacA活性的抑制率達(dá)100%(Fig 2B)。
2.4 氫溴酸檳榔堿對(duì)VacA mRNA和蛋白表達(dá)水平的影響 進(jìn)一步使用不抑制H.pylori生長的藥物濃度的氫溴酸檳榔堿(0.15 g· L-1)干預(yù)細(xì)菌24 h,收集細(xì)菌和培養(yǎng)上清,細(xì)菌菌體經(jīng)細(xì)胞裂解后,檢測(cè)細(xì)菌菌體中VacA mRNA和蛋白表達(dá)水平;并檢測(cè)細(xì)胞培養(yǎng)上清中VacA的蛋白水平,同時(shí)以藥物未干預(yù)細(xì)菌為對(duì)照。結(jié)果顯示:與對(duì)照組相比,氫溴酸檳榔堿可明顯抑制菌體內(nèi)空泡毒素A mRNA(P<0.05)和蛋白(P<0.01)水平(Fig 3A)。且可明顯抑制H.pylori上清中VacA蛋白的表達(dá)(P<0.01)(Fig 3B)。
目前針對(duì)H.pylori治療雖已建立相當(dāng)有效的根治措施[12]。但下列問題仍使臨床醫(yī)生感到棘手:①正在逐漸上升的H.pylori耐藥性;②降低的根除率和升高的復(fù)發(fā)率;③患者對(duì)治療方法的依順性[13]。這些問題都提示我們需要從新的視角去審視H.pylori的致病機(jī)制及其治療策略。且有關(guān)H.pylori作為潛在正常微生物群的觀點(diǎn)也使醫(yī)學(xué)界需要更審慎的考慮這個(gè)問題。
受此提示,本研究選取了中藥檳榔、大腹皮的主要活性成分氫溴酸檳榔堿(AH)觀察其對(duì)VacA是否具有設(shè)想中的抑制作用。結(jié)果顯示在低于最低抑菌濃度(MIC)近十分之一濃度時(shí),AH可以明顯抑制H.pylori分泌的VacA的細(xì)胞毒性作用,可以抑制VacA對(duì)細(xì)胞的空泡化毒性效應(yīng)。此結(jié)果與早期以中藥生藥水煎劑所進(jìn)行的同類研究結(jié)果吻合,證實(shí)檳榔、大腹皮中對(duì)VacA細(xì)胞毒性起抑制作用的藥理成分是AH。且經(jīng)換算,該劑量在臨床用藥的安全范圍之內(nèi)。而產(chǎn)生抑菌作用之濃度已大于該藥的安全范圍[14]。
Fig 2 Effects of AH on activities of VacA secreted by H.pylori in vitro
本研究繼續(xù)在VacA形成的mRNA及蛋白的表達(dá)和分泌水平上,分別對(duì)上述現(xiàn)象進(jìn)行了驗(yàn)證,結(jié)果顯示,AH對(duì)菌體內(nèi)VacA mRNA及蛋白表達(dá)的抑制作用具有較好的一致性。且同時(shí)具有對(duì)VacA蛋白分泌的抑制作用。但其具體的抑制機(jī)制尚有待進(jìn)一步研究。
Fig 3 Effects of AH on mRNA and protein level of VacA expressed in H.pylori or secreted by H.pylori
盡管AH已經(jīng)是一個(gè)臨床應(yīng)用久遠(yuǎn)的合成藥物,但其針對(duì)H.pylori毒素形成的抑制作用尚屬首次發(fā)現(xiàn),考慮到AH自身的藥物副作用和抑制H.pylori毒素形成的時(shí)效問題尚需進(jìn)一步研究,故其臨床應(yīng)用尚有待時(shí)日。不過,不以殺菌為目的,而以抑制毒素形成為手段的應(yīng)對(duì)策略,對(duì)于H.pylori所引起之疾病以及類似的機(jī)會(huì)性感染都是一個(gè)值得考慮的探索方向,也是臨床新的藥理作用(尤其是中藥)發(fā)現(xiàn)與開發(fā)的一條蹊徑。
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