• <tr id="yyy80"></tr>
  • <sup id="yyy80"></sup>
  • <tfoot id="yyy80"><noscript id="yyy80"></noscript></tfoot>
  • 99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

    基于酪氨酸酶的絲素蛋白膜的制備及其性能

    2013-11-19 03:44:12李新玥邢鐵玲
    絲綢 2013年10期
    關(guān)鍵詞:絲素多巴酪氨酸

    李新玥,邢鐵玲

    (蘇州大學(xué)紡織與服裝工程學(xué)院,江蘇蘇州215021)

    絲素蛋白具有良好的綠色環(huán)保性能,一直是人們研究的熱點(diǎn)。早期的絲素蛋白主要用于食品添加劑和化妝品中[1]。在目前的研究中,絲素蛋白由于與生俱來的無毒性、無刺激性,優(yōu)良的生物相容性和可降解性等優(yōu)勢,常被用于制備人工皮膚、人工骨骼、酶固定化材料、藥物緩釋載體、抗血凝性材料、細(xì)胞培養(yǎng)基質(zhì)等生物醫(yī)用材料的重要可選原料[2]。

    絲素蛋白溶液直接經(jīng)一般條件烘干、靜電紡或冷凍干燥等方法制得膜、無紡網(wǎng)和多孔支架等不同形態(tài)的材料,其聚集態(tài)結(jié)構(gòu)多以無規(guī)卷曲為主,分子間的結(jié)合力較弱,在水中溶失率大,限制了絲素蛋白材料的應(yīng)用[3]。當(dāng)前多采用各種物理和化學(xué)方法制備共混的絲素膜,從而得到耐水性好的材料。

    酪氨酸酶(Tyrosinase)是一種含銅的金屬酶,廣泛分布于微生物、動植物及人體中,它具有雙重的生物催化作用,既有單酚酶活性又有二酚酶活性,既能催化單酚類化合物生成鄰苯二酚,又能氧化鄰苯二酚脫氫生成鄰苯醌,能將酪氨酸羥化,產(chǎn)生L-多巴,然后再將多巴氧化成多巴醌,進(jìn)而生成一系列引起褐化的色素類物質(zhì)[4]。

    絲素蛋白中含有18種氨基酸,其中酪氨酸、絲氨酸、谷氨酸和酪氨酸等約占氨基酸總量的30%。將酪氨酸酶引入到絲素蛋白體系中,它能催化其中的酪氨酸發(fā)生酶促氧化反應(yīng),使得蛋白質(zhì)分子之間發(fā)生交聯(lián)[5-6]?;谶@樣的反應(yīng)原理,用酪氨酸酶作為交聯(lián)試劑,加入到絲素蛋白溶液中,在一定的條件下制成溶失率較低的交聯(lián)絲素膜。與現(xiàn)有的添加化學(xué)交聯(lián)劑成膜,如添加聚乙二醇縮水甘油醚形成不溶于水的絲素膜相比[7],本研究具有生態(tài)、環(huán)保的優(yōu)勢。

    1 實(shí)驗(yàn)材料與方法

    1.1 材料與儀器

    實(shí)驗(yàn)材料:桑蠶絲(江蘇蘇豪國際集團(tuán)股份有限公司),酪氨酸酶(Sigma),無水碳酸鈉,溴化鋰,透析袋。

    實(shí)驗(yàn)儀器:MP516型溶解氧分析儀(上海三信儀表廠),TU-1810紫外/可見分光光度計(jì)(北京普析有限責(zé)任公司),美國Instron3365萬能材料試驗(yàn)機(jī)、YG(B)141D數(shù)字式織物厚度儀(溫州市大榮紡織儀器有限公司)。

    1.2 絲素溶液的制備

    家蠶生絲用無水碳酸鈉完全脫膠,經(jīng)充分烘干后用9.3 mol/L的溴化鋰溶液溶解(60℃ ×30 min),經(jīng)透析、過濾之后得到絲素溶液,用稱重法計(jì)算絲素溶液的含固率。

    1.3 絲素膜的制備

    按照一定的比例將酪氨酸酶加入到絲素蛋白溶液中,在一定的工藝條件下反應(yīng),反應(yīng)結(jié)束后將溶液置于準(zhǔn)備好的盒子中風(fēng)干,制得絲素膜。

    2 實(shí)驗(yàn)測試

    2.1 酶促反應(yīng)的溶解氧分析

    用MP516型溶解氧分析儀在一定的條件下測試酶促反應(yīng)體系溶解氧的變化情況。

    2.2 絲素蛋白溶液吸光度測試

    用紫外/可見光分光光度計(jì)在200~400 nm測定不同條件下絲素溶液的吸光度,并優(yōu)化出最佳的反應(yīng)工藝。

    2.3 絲素膜的理化性能測試

    2.3.1 含水率

    將絲素膜在恒溫恒濕(25℃,相對濕度65%)下平衡24 h,每個稱取質(zhì)量w1(g)的樣品3塊,然后在烘箱中105℃烘至恒重,稱量得到w2(g)。則根據(jù)公式(1)計(jì)算出含水率。

    2.3.2 溶失率

    將絲素膜在同一室溫條件下平衡24 h,然后稱取w3(g),放入編過號的錐形瓶中,按浴比1︰100加入去離子水,在37℃的水浴恒溫震蕩器中預(yù)熱30 min后震蕩24 h,然后取出溶液。溶液離心后取上層清液,用紫外分光光度計(jì)測出各溶液在275 nm下的吸光度并記錄。由測出的吸光度,根據(jù)公式計(jì)算出溶解的絲素重量,即可得出絲素膜的蛋白溶失率。

    式中:C為絲素蛋白溶失率,%;K為絲素溶液的紫外吸光常數(shù),mL/g;A為吸光度;V為溶液體積,mL;w3為樣重品質(zhì)量,g。

    2.3.3 力學(xué)性能

    將絲素膜剪成60 mm×10 mm的長條狀,編號后測定每個樣片的厚度。于恒溫恒濕(25℃,相對濕度65%)下平衡24 h后在Instron3365萬能材料試驗(yàn)機(jī)上進(jìn)行拉伸測試,夾距為20 mm,拉伸速度為20 mm/min。按公式計(jì)算膜的斷裂強(qiáng)度。

    式中:P為膜的斷裂強(qiáng)度,MPa;F為膜的斷裂強(qiáng)力,N;d為膜的寬度,mm;h為膜的厚度,mm。

    按公式計(jì)算膜的初始模量。

    式中:E0為初始模量,MPa;Pa為拉伸負(fù)荷,N;l0為試樣的夾持長度,mm;Δla為試樣伸長值,mm;S為試樣橫截面積,mm2。

    2.4 氨基酸分析

    將待測絲素膜試樣置于水解管中,加入6.0 mol/L HCl溶液,與110℃下密封水解24 h,過濾,蒸干;再加入0.02 mol/L的HCl溶液,在真空中放置30 min,采用Hitachi 835-50氨基酸自動分析儀測定除色氨酸以外的其他氨基酸的質(zhì)量分?jǐn)?shù)。

    2.5 X射線衍射分析

    使用全自動X'PERT-PRO MPD射線衍射儀,CuKα射線,X射線波長:λ=1.5406?計(jì)數(shù)器:超能探測計(jì)數(shù)器,記錄得到絲素膜2θ=5°~50°的衍射強(qiáng)度曲線。

    3 結(jié)果與討論

    3.1 酶促反應(yīng)的溶解氧分析

    圖1為酪氨酸酶催化絲素蛋白上L-酪氨酸發(fā)生反應(yīng)的原理式,該反應(yīng)需要在氧氣存在的情況下才能正常進(jìn)行[8],如果不及時給反應(yīng)浴補(bǔ)充氧氣,反應(yīng)浴中的氧氣會逐漸減少。改變交聯(lián)反應(yīng)的溫度,采用溶解氧分析儀對密閉的絲素溶液體系的溶解氧進(jìn)行測試。測試結(jié)果如圖2所示,其溶解氧變化曲線可分為3個階段。反應(yīng)前10 min,反應(yīng)浴內(nèi)的溶解氧含量充足,主要進(jìn)行有氧反應(yīng),生成L-多巴和多巴醌。當(dāng)反應(yīng)進(jìn)行到30 min左右時,體系內(nèi)溶解氧含量逐漸降低,有氧反應(yīng)和不需氧氣的邁克爾加成反應(yīng)同時進(jìn)行,并且達(dá)到一個相對平衡,所以在這一個階段氧氣消耗量趨于平緩。在最后一個反應(yīng)階段,隨著反應(yīng)進(jìn)行,體系內(nèi)溶解氧逐漸消耗而且沒有新的氧氣補(bǔ)充進(jìn)來,體系內(nèi)的氧氣逐漸消耗,直至被消耗完反應(yīng)結(jié)束[9]。

    圖1 酪氨酸酶對絲素蛋白的催化反應(yīng)Fig.1 Catalytic reaction of silk fibroin by tyrosinase

    圖2又可見,隨著反應(yīng)溫度升高,體系內(nèi)的溶解氧量消耗速度逐漸變快。當(dāng)反應(yīng)溫度為25℃時,反應(yīng)進(jìn)行70 min時體系內(nèi)的溶解氧量只發(fā)生較小變化;當(dāng)溫度升到45℃,反應(yīng)進(jìn)行到30 min時,體系內(nèi)的溶解氧就降為零。即在同樣的反應(yīng)配比下,反應(yīng)浴溫度越高,酪氨酸酶越快發(fā)揮催化作用,使得酶促反應(yīng)速率加快,反應(yīng)浴內(nèi)的氧氣消耗也相應(yīng)加快,使得溶解氧曲線產(chǎn)生了如圖2所示的差異。因此,可以證明絲素上的酪氨酸殘基確實(shí)被酪氨酸氧化。

    圖2 反應(yīng)溫度對酶促反應(yīng)的溶解氧消耗的影響Fig.2 Effect of enzymatic reaction temperature on oxygen consumption

    3.2 酶促反應(yīng)條件對絲素溶液吸光度的影響

    3.2.1 酪氨酸酶用量對絲素-酪氨酸酶溶液吸光度的影響

    固定反應(yīng)溫度和反應(yīng)時間,改變酪氨酸酶的用量,用紫外分光光度計(jì)在200~400 nm對反應(yīng)后的溶液的吸光度進(jìn)行測試。

    絲素和酪氨酸酶在一定的溫度和時間下反應(yīng),反應(yīng)結(jié)束后,溶液由原來的無色透明變?yōu)榧t棕色,隨著酶用量的增多這種變色更加明顯。如圖3所示,與空白的酪氨酸酶溶液和絲素溶液組對照,添加酪氨酸酶的溶液在340~360 nm的吸收顯著增大,并且隨著酪氨酸酶用量增加,吸光度逐漸增大,在350 nm出現(xiàn)了一個較寬的吸收峰。并且蛋白質(zhì)在280 nm附近的吸收峰逐漸向300 nm移動。

    如圖1反應(yīng)機(jī)理所示,酪氨酸酶催化絲素蛋白反應(yīng)會生成L-多巴和多巴醌。有研究指出,酪氨酸酶催化絲素蛋白反應(yīng)后生成的300 nm和360 nm吸收峰分別是L-多巴和多巴醌的吸收峰[9-11]。當(dāng)?shù)孜餄舛认嗤瑫r,反應(yīng)后溶液的紅棕色越深,在340~360 nm的吸光度越大,則生成的L-多巴和多巴醌越多,即認(rèn)為絲素蛋白的交聯(lián)程度越高,所以在本組實(shí)驗(yàn)中4 000 U/g的酶量交聯(lián)效果最好(即每克絲素蛋白需要4 000 U的酪氨酸酶,下同)。

    對汾河流域節(jié)水灌溉發(fā)展水平的準(zhǔn)確評價,是正確認(rèn)識汾河流域節(jié)水灌溉發(fā)展水平、推動本區(qū)域節(jié)水灌溉發(fā)展的基礎(chǔ),是制定區(qū)域節(jié)水政策、方案和措施的科學(xué)依據(jù)。近年來,節(jié)水灌溉發(fā)展水平綜合評價已經(jīng)由最初的定性描述分析或定量數(shù)據(jù)比較發(fā)展到定性與定量相結(jié)合[1],由依靠主要指標(biāo)構(gòu)建簡單的評價體系發(fā)展到利用多指標(biāo)或多目標(biāo)構(gòu)建綜合評價體系。

    圖3 酪氨酸酶用量對絲素-酪氨酸酶溶液吸光度的影響Fig.3 Effect of tyrosinase dosage on absorption of silk-tyrosinase solution

    3.2.2 反應(yīng)溫度對絲素-酪氨酸酶溶液吸光度的影響

    固定酪氨酸酶用量和反應(yīng)時間,改變反應(yīng)溫度,對反應(yīng)后溶液的吸光度進(jìn)行測試。從圖4可以看出,改變反應(yīng)溫度后,溶液的吸光度發(fā)生較大變化。從25℃開始升高反應(yīng)溫度,反應(yīng)后溶液的吸光度逐漸增大,當(dāng)反應(yīng)溫度升高到60℃時,溶液的吸光度反而降低。

    圖4 反應(yīng)溫度對絲素-酪氨酸酶溶液吸光度的影響Fig.4 Effect of reaction temperature on absorption of silk-tyrosinase solution

    反應(yīng)溫度通過影響酪氨酸酶的活性影響反應(yīng)后溶液的吸光度值。在一定范圍內(nèi),反應(yīng)溫度太低,酪氨酸酶活性釋放較慢,反應(yīng)需要很長時間;反應(yīng)溫度太高,酪氨酸酶存在失活的可能。當(dāng)反應(yīng)溫度為25℃時酪氨酸酶緩慢釋放活力,相同時間內(nèi)催化交聯(lián)的L-酪氨酸含量少,生成的L-多巴和多巴醌的量也相應(yīng)較少,使得吸光度值也低。隨著溫度升高,酪氨酸酶活力釋放速度增大,交聯(lián)反應(yīng)速率增大,生成較多的有色物質(zhì),吸光度值增大。但當(dāng)溫度升高到60℃時,酪氨酸酶存在失活的可能,而且酪氨酸酶在較短的時間內(nèi)釋放較多的酶活,一部分酪氨酸酶還沒來得及發(fā)生催化交聯(lián)就已經(jīng)失去酶活,這對發(fā)揮酶的高效催化作用是不利的,導(dǎo)致最終反應(yīng)后溶液呈現(xiàn)偏黃的棕色,吸光度值反而降低。綜合以上分析,選擇45℃為酶促反應(yīng)的最佳溫度。

    3.2.3 反應(yīng)時間對絲素-酪氨酸酶溶液吸光度的影響

    固定酪氨酸酶用量和反應(yīng)溫度,改變反應(yīng)時間,對反應(yīng)后溶液的吸光度進(jìn)行測試。從圖5可以看出,隨著反應(yīng)時間延長,絲素溶液在350 nm附近的吸收峰逐漸抬高,并且峰形越來越明顯。反應(yīng)時間為0時,酶促反應(yīng)并未開始,溶液在350 nm左右的吸光度值接近于0。隨著反應(yīng)時間延長,酶促反應(yīng)生成的L-多巴和多巴醌的量逐漸積累,在350 nm附近的吸光度值逐漸增大。在反應(yīng)的前120 min內(nèi),350 nm附近的吸光度值快速增大,繼續(xù)延長反應(yīng)時間,吸光度值有較小增大,但反應(yīng)進(jìn)行到120 min時繼續(xù)延長時間,反應(yīng)后溶液的顏色從紅棕色向黃棕色變化,可能生成了其他更加復(fù)雜的催化產(chǎn)物,所以選定反應(yīng)時間為120 min。

    圖5 反應(yīng)時間對絲素-酪氨酸酶溶液吸光度的影響Fig.5 Effect of reaction time on absorption of silk-tyrosinase solution

    3.2.4 空氣和氧氣對絲素-酪氨酸酶溶液吸光度的影響

    從上述溶解氧分析中可知,在密閉條件下酪氨酸酶催化酪氨酸殘基發(fā)生反應(yīng),體系內(nèi)的氧氣會逐漸消耗直至殆盡。通過給反應(yīng)浴中通氧氣和空氣的方法給反應(yīng)浴中補(bǔ)充氧氣,用不通任何氣體作為對照,對反應(yīng)后溶液吸光度進(jìn)行測試。如圖6所示,通氧氣的絲素溶液反應(yīng)后在350 nm的吸光度值明顯大于通空氣和對照組的。

    圖6 空氣和氧氣對絲素-酪氨酸酶溶液吸光度的影響Fig.6 Effect of air and oxygen on absorption of silk-tyrosinase solution

    3.3 絲素膜的溶失率和力學(xué)性能

    在上述工藝條件下,改變酪氨酸酶的用量,用流延法制成絲素膜,并對所成絲素膜的溶失率膜的力學(xué)性能進(jìn)行測試。如圖7所示,純絲素膜的溶失率為24%,隨著酶用量增大,膜的溶失率逐漸降低,當(dāng)酶用量增大到2 000 U/g時,膜的溶失率降到了11.2%,當(dāng)酶用量繼續(xù)增大到1︰4 000 U/g時,溶失率只有3.2%。斷裂強(qiáng)度也有同樣的變化趨勢,在初始酶用量較少時,膜的斷裂強(qiáng)度只有較小程度的提高,當(dāng)酶用量增大到1︰2 000 U/g時,膜的斷裂強(qiáng)度達(dá)到了最大值,但是當(dāng)酶用量繼續(xù)增大到1︰4 000 U/g時,膜的斷裂強(qiáng)度反而降低。

    圖7 酪氨酸酶用量對絲素膜的溶失率和斷裂強(qiáng)度的影響Fig.7 Effect of tyrosinase dosage on water solubility and rupture strength of SF membrane

    當(dāng)?shù)孜餄舛认嗤瑫r,一定范圍內(nèi),隨著酪氨酸酶用量的增多,酶促交聯(lián)反應(yīng)進(jìn)行的更加充分,蛋白質(zhì)之間交聯(lián)程度更大,所以膜的溶失率和斷裂強(qiáng)度逐漸改善。

    表1為用不同量的酪氨酸酶交聯(lián)絲素蛋白所成絲素膜的初始模量和斷裂伸長率分析。隨著酪氨酸酶用量增多,絲素膜的初始模量逐漸增大,當(dāng)酪氨酸酶用量為4 000 U/g時,膜的初始模量迅速降低,幾乎等同于未交聯(lián)膜的初始模量。隨著酪氨酸酶用量增多,膜的初始模量增大,可認(rèn)為隨著交聯(lián)程度的增大,膜的斷裂由原來的韌性斷裂向脆性斷裂轉(zhuǎn)變。但當(dāng)酶用量增大到一定程度之后對膜的交聯(lián)沒有更大的改善,使其初始模量降低。從斷裂伸長率的數(shù)據(jù)可以看出,酪氨酸酶用量發(fā)生改變,膜的斷裂延伸率幾乎不發(fā)生變化。

    表1 酪氨酸酶用量對絲素膜的初始模量和斷裂伸長率的影響Tab.1 Effect of tyrosinase dosage on elongation and initial modulus of crosslinked SF membrane

    綜上所述可認(rèn)為,酪氨酸酶對絲素蛋白的交聯(lián)作用,較大程度地改善了膜的溶失率和斷裂強(qiáng)度,但是膜的韌性有所降低。

    3.4 絲素膜的氨基酸分析

    交聯(lián)與未交聯(lián)絲素膜的氨基酸含量分析如表2中所示。交聯(lián)反應(yīng)對絲素膜中氨基酸的種類無影響,但對各種氨基酸的含量有較大影響。未交聯(lián)絲素膜中酪氨酸的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為8.41%,交聯(lián)絲素膜中酪氨酸含量逐漸減少,并且隨著酪氨酸酶用量增多,其中酪氨酸含量逐漸降低(當(dāng)酪氨酸酶用量為4 000 U/g時,膜中的酪氨酸含量僅為6.36%)。

    已知酪氨酸酶可以特定的催化酪氨酸發(fā)生氧化反應(yīng),在本研究中當(dāng)絲素蛋白底物濃度不變時,在一定的范圍內(nèi)隨著酪氨酸酶用量增多,酪氨酸發(fā)生催化氧化的機(jī)率增多,則有更多的酪氨酸參與氧化反應(yīng),最終使得其中酪氨酸含量減少。這一結(jié)果與上述研究相吻合,進(jìn)一步驗(yàn)證了酪氨酸酶催化絲素蛋白中的酪氨酸,發(fā)生了氧化交聯(lián)反應(yīng)。

    表2 絲素膜的氨基酸含量分析Tab.2 Amino acid composition of silk membrane %

    3.5 絲素膜的X射線衍射分析

    如圖8所示,兩種絲素膜在12.2°(Silk I)和9.1°(Silk II)均無明顯吸收峰,說明純絲素膜和酪氨酸酶催化交聯(lián)絲素膜均以無歸卷曲結(jié)構(gòu)為主。只是絲素膜在20°的峰形稍為尖銳,這說明交聯(lián)前后絲素膜的結(jié)晶結(jié)構(gòu)沒有發(fā)生明顯變化。從膜的熱水溶解性分析可知,交聯(lián)后膜的熱水溶失率明顯降低,這說明在絲素蛋白結(jié)構(gòu)聚集態(tài)結(jié)構(gòu)未發(fā)生變化的情況下,絲素蛋白分子之間形成了交聯(lián),這種交聯(lián)使絲素分子結(jié)構(gòu)從線性向體型轉(zhuǎn)變,從而使其不溶于水。X射線衍射結(jié)果進(jìn)一步說明酪氨酸酶催化了絲素蛋白大分子的交聯(lián)反應(yīng)。

    圖8 絲素膜的X射線衍射分析Fig.8 X-ray diffraction curves of SF membrane

    4 結(jié)論

    通過交聯(lián)前后絲素溶液吸光度的變化,優(yōu)選出酪氨酸酶催化絲素蛋白溶液交聯(lián)反應(yīng)的最佳工藝為:酪氨酸酶用量4 000 U/g,反應(yīng)溫度45℃,反應(yīng)時間120 min。并用流延法制得了交聯(lián)絲素蛋白膜,對所成膜的24 h熱水溶失率和膜的力學(xué)性能進(jìn)行了測試,對照交聯(lián)與未交聯(lián)的絲素膜,膜的熱水溶失率和力學(xué)性能有較大改善。膜的氨基酸含量分析結(jié)果表明交聯(lián)前后絲素膜中的酪氨酸含量減少,證明酪氨酸酶可催化其發(fā)生反應(yīng)。X射線衍射結(jié)果表明交聯(lián)絲素膜仍以無規(guī)卷曲結(jié)構(gòu)為主,與未經(jīng)交聯(lián)的絲素膜相比,聚集態(tài)結(jié)構(gòu)無顯著變化。綜合以上分析可知,酪氨酸酶可以催化絲素大分子間的交聯(lián)反應(yīng)。

    [1]CHERT K,UMEDA Y,HIRABAYASHI K.Enzymatic hydrolysis of silk fibroin[J].J Seric Sci Jpn,1996,65(2):131-133.

    [2]KIM U J,PARK J,KIM H J,et al.Three-dimensional aqueous-derived biomaterial scaffolds from silk fibroin[J].Biomaterials,2005,26(15):2275-2785.

    [3]焦宇虹,李明忠.蠶絲絲素蛋白材料交聯(lián)方法的研究進(jìn)展[J].現(xiàn)代絲綢科學(xué)與技術(shù),2011,26(6):242-246.JIAO Yuhong,LI Mingzhong.The study advance in the crosslinking method of silk fibroin[J].Modern Silk Science&Technology,2011,26(6):242-246.

    [4]趙希榮,李松林.酪氨酸酶在殼聚糖生物改性中的應(yīng)用[J].化工進(jìn)展,2011,30(11):2509-2515.ZHAO Xirong, LI Songlin. Application of tyrosinase in chitosan's modification[J].Chemical Industry and Engineering Progress,2011,30(11):2509-2515.

    [5]孫寶山,郭成勛.多酚氧化酶對蛋白質(zhì)的修飾作用[J].食品與發(fā)酵工業(yè),1987(3):73-78.SUN Baoshan,GUO Chengxun.Polyphenol oxidase modifying function of protein[J].Food and Fermentation Industries,1987(3):73-78.

    [6]FAERGEMAND M,OTTE J,QVIST K B.Cross-linking of whey proteins by enzymatic oxidation[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,1998,46(4):1326-1333.

    [7]盧神州,李明忠,劉洋,等.聚乙二醇縮水甘油醚對絲素蛋白膜的改性[J].高分子材料科學(xué)與工程,2001,19(1):104-107.LU Shenzhou,LI Mingzhong,LIU Yang,et al.Modification of silk fibroin membrane polyethylene glycol diglycidyl ether[J].Polymer Materials Science & Engineering,2001,19(1):104-107.

    [8]王寧芳.酪氨酸酶的提取及其催化活性研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,37(20):9315-9316.WANG Ningfang.Research on the extraction of tyrosinase and determination of its catalytic activity [J].Journal of Anhui Agricultural Sciences,2009,37(20):9315-931.

    [9]KANG G D,LEE K H,KI CS,et al.Crosslinking reaction of phenolic side chains in silk fibroin by tyrosinase[J].Fibers and Polymers,2004,5(3):234-238.

    [10]ANGHILERI A,LANTTOR,KRUUSK,et al.Tyrosinasecatalyzed grafting of sericin peptides onto chitosan and production of protein-polysaccharide bioconjugates[J].Journal of Biotechnology,2007,127(3):508-519.

    [11]KUBOE Y,TONEGAWA H,OHKAWA K .Quinone crosslinked polysaccharide hybrid fiber[J].Biomacromolecules,2004,5(2):348-357.

    猜你喜歡
    絲素多巴酪氨酸
    觀察多巴胺聯(lián)合多巴酚丁胺治療新生兒肺炎的臨床療效
    絲素蛋白改性羧基化棉織物的制備與表征
    楊仲鴻《摩些文多巴字及哥巴字漢譯字典》審查經(jīng)過補(bǔ)說
    枸骨葉提取物對酪氨酸酶的抑制與抗氧化作用
    薔薇花總黃酮對酪氨酸酶的抑制作用及其動力學(xué)行為
    中成藥(2018年1期)2018-02-02 07:19:57
    PVC用酪氨酸鑭的合成、復(fù)配及熱穩(wěn)定性能研究
    中國塑料(2016年7期)2016-04-16 05:25:52
    絲素蛋白對重金屬離子吸附性能的研究
    絲素蛋白微針溶脹給藥系統(tǒng)的研究
    絲綢(2015年7期)2015-02-28 14:56:30
    顫止方聯(lián)合多巴絲肼片治療帕金森病40例
    N-月桂酰肌氨酸鈉/絲素蛋白水凝膠的研究
    絲綢(2014年7期)2014-02-28 14:55:23
    辽中县| 巴楚县| 湖州市| 尼玛县| 翁牛特旗| 巴南区| 郑州市| 繁昌县| 炎陵县| 阿拉善盟| 丽水市| 拜城县| 桓仁| 河曲县| 邯郸县| 阿图什市| 万安县| 兰考县| 茂名市| 灌阳县| 隆安县| 文昌市| 咸阳市| 海口市| 方山县| 油尖旺区| 衡东县| 固阳县| 林甸县| 库伦旗| 九台市| 隆化县| 托里县| 寻甸| 马关县| 保康县| 泽州县| 古浪县| 介休市| 潢川县| 东乌珠穆沁旗|