陳蓮惠,簡 易,曹洪斌
(1.川北醫(yī)學院化學教研室,四川 南充 637000;2.川北醫(yī)學院物理教研室,四川 南充 637000)
紅霉素屬大環(huán)內(nèi)酯類抗生素,作為青霉素過敏患者的替代用藥,對很多炎癥都有很好的療效,在高濃度時對某些細菌具殺菌作用,因此在臨床上應用極廣。已報道的紅霉素分析方法有微生物檢測法[1]、高效液相色譜法(HPLC)[2-3]、電化學方法[4]、荷移分光光度法[5-7]、比濁法[8-9]等。這些方法中,有的靈敏度較低不能滿足痕量分析的要求,有的操作繁瑣、儀器昂貴、成本高。因此開發(fā)簡單、快速、靈敏的測定方法有實際意義。本文提出了利用紅霉素在近中性條件下與甲基紫反應生成締合物,用分光光度計在535nm處測定其吸光度降低值,建立了新的分光光度法測定紅霉素,可用于紅霉素腸溶片中紅霉素含量的測定。
WFJ7200分光光度計(北京宏昌信科技有限公司);PHS-4C+酸度計(成都市方舟科技開發(fā)公司);ML104電子天平(杭州匯爾儀器設備有限公司)。
紅霉素(Erythromycin)標準品(中國藥品生物制品檢定所,批號30307-200716);甲基紫(Methyl Violet)標準品(成都科龍化工試劑廠);紅霉素腸溶片1(吉林省長恒藥業(yè)有限公司,國藥準字H22020606);紅霉素腸溶片2(輔仁藥業(yè)集團有限公司,國藥準字 H20073314);冰乙酸(A.R.)(成都市科龍化工試劑廠);磷酸(A.R.)(武漢市化學試劑廠);硼酸(A.R.)(中國四川成都化學試劑廠);氫氧化鈉(A.R.)(成都市科龍化工試劑廠);無水乙醇(成都市科龍化工試劑廠);實驗用水皆為二次石英蒸餾水。
1.2.1 試劑的配制
Britton-Robinson緩沖溶液:取2.47 g硼酸、2.36 mL冰乙酸和3.92g磷酸配制成1L的水溶液,與0.2mol/L的氫氧化鈉按照一定比例混合可配制一系列不同pH值的緩沖溶液,使用時用酸度計準確測定。
甲基紫溶液:準確稱取0.05g甲基紫標準品配制成250.00mL水溶液,此時濃度為5.08×10-4mol/L,使用時用水稀釋成5.08×10-5mol/L的標準工作溶液。
紅霉素貯備液:準確稱取200.4mg的紅霉素,用無水乙醇溶解、定容,配制成100.00mL的貯備液,使用時用水稀釋成0.1mg/mL的標準工作溶液。
1.2.2 實驗操作
準確移取5.00 mL紅霉素工作液于15.00 mL比色管中,加入5.00 mL甲基紫工作溶液和2.00 mL pH 6.8的B.R.緩沖溶液,用水稀釋至刻度,搖勻,室溫下靜置30 min,以試劑空白作參比,用1 cm比色皿在535nm處測定吸光度。
按照試驗方法顯色后,在分光光度計上分別對甲基紫-紅霉素溶液、甲基紫溶液和紅霉素溶液進行掃描,結(jié)果如圖1所示。甲基紫在可見光區(qū)有強烈的吸收,最大吸收波長在584nm;而紅霉素在可見光區(qū)無明顯吸收;在pH 6.8的B.R.緩沖溶液中,甲基紫和紅霉素生成穩(wěn)定的離子締合物,在可見光區(qū)吸光度較甲基紫有明顯增大,且增大最多時對應的波長在535nm附近,較甲基紫的最大吸收波長藍移了49nm;因此本文選擇測定波長為535nm。
2.2.1 稀釋劑
試驗研究了甲醇、乙醇、水作溶劑定容時對顯色反應的影響,結(jié)果表明,用甲醇、乙醇和水作稀釋劑對試驗結(jié)果沒有明顯的影響。本實驗選用水作稀釋劑。
2.2.2 緩沖溶液種類及pH
圖1 吸收光譜(pH 6.8)
試驗了 HAc-NaAc、B.R.、Tris-HCl等緩沖溶液對試驗體系的影響,結(jié)果如圖2所示。用HAc-NaAc和Tris-HCl作緩沖介質(zhì)時,緩沖范圍有限,且在可使用范圍內(nèi)檢測到體系吸光度值均比B.R.緩沖溶液體系中的測定值??;當選用近中性的B.R.緩沖溶液時,反應體系的吸光度值最大。本實驗選用pH 6.8的B.R.緩沖溶液。
圖2 緩沖溶液的影響
2.2.3 顯色劑用量
按試驗方法,加入 1.00,2.00,3.00,4.00,5.00,6.00,7.00mL等不同用量的甲基紫工作液,測定吸光度,結(jié)果顯示:當顯色劑用量為5.00mL以上時,吸光度不再明顯增加。因此,本實驗選用5.00mL。
2.2.4 溫度
按試驗方法,將配制好的溶液搖勻后,置于0,10,20,30,40,50,60,70,80,90,100℃等不同溫度的水浴中恒溫加熱20min,冷卻到室溫,用試劑空白作參比分別測定吸光度。結(jié)果表明,室溫下反應最完全,吸光度最大。
2.2.5 顯色時間和體系穩(wěn)定性
其他反應條件不變,按試驗方法,將配制好的溶液搖勻后,在室溫條件下放置 5,10,15,20,25,30,40,50,60,80,100min 后進行測定,結(jié)果顯示:反應 30min后吸光度不再有明顯的增加。其他條件不變,將配制好的溶液從30min起,相隔不同時間測定吸光度,直到誤差大于±5%。結(jié)果顯示:從最佳反應時間起,10h內(nèi)吸光度差值非常小,體系穩(wěn)定性好。
2.2.6 共存物質(zhì)的影響
按實驗方法考察了常見8種氨基酸、維生素、糖類和無機鹽離子等共存物質(zhì)對體系RRS的影響。試驗結(jié)果見表 1。較大倍數(shù)的 NH4+,Cl-、K+、Br-、K+、HCO3-等無機離子和一定量的氨基酸、糖類均不干擾,而Bi3+、Re3+、HPO42-和強力霉素等有一定干擾。加標回收試驗(表2)也顯示藥物中的輔料對測定無影響。
表1 共存物質(zhì)的影響(紅霉素腸溶片溶液0.067mg·mL-1)
表2 樣品分析及加標回收實驗結(jié)果(n=6)
準確移取一系列不同體積的紅霉素標準工作液于15.00 mL比色管中,按試驗方法測定吸光度,繪制標準曲線。結(jié)果表明:紅霉素的濃度在0.000 8~0.050 mg/mL范圍內(nèi)服從Beer定律,有很好的線性關系?;貧w方程為:A=12.336c+0.0173,r=0.9989;對15.00 mL 5.0×10-3mg/mL紅霉素連續(xù)測定6次,RSD=0.9%。方法的檢出限為0.18μg/mL(用空白加標的方法求得檢出限:將分析物紅霉素標準品配在空白溶劑中,用光度計重復測定,標準偏差的3倍所對應的濃度值為檢出限)。締合物的表觀摩爾吸光系數(shù)ε為1.63×104L/(mol/cm)。
按照2010版藥典[1],取兩個不同廠家的紅霉素腸溶片各4片,在研缽中研細,用50 mL無水乙醇,分次研磨使紅霉素腸溶片溶解,定量轉(zhuǎn)移到500 mL容量瓶中,用二次蒸餾水定容,搖勻,靜置。實驗時精密量取上清液適量,在最佳實驗條件下進行測定,同時采用在樣品中加入已知量的方法做回收試驗,結(jié)果見表2。由表2可知:用甲基紫作為顯色劑,用分光光度法可以測定紅霉素腸溶片中的紅霉素,用該法測得值與正規(guī)廠家生產(chǎn)和標示的含量基本一致;并且加標回收實驗也證明了方法可行,其穩(wěn)定性和重現(xiàn)性均比較好。
在醫(yī)學院或藥物研究單位,研究簡便、快速、高效、靈敏、選擇性好的檢測高效廣譜抗生素紅霉素的方法具有非常重要的現(xiàn)實意義,近年來有不少的科學研究工作者都為之付出了心血和汗水。本文基于甲基紫與紅霉素的反應建立了測定紅霉素的分光光度法,該方法簡單,靈敏度較高,選擇性較好,回收率符合要求,具有一定的實用價值。
[1]國家衛(wèi)生部藥典委員會.中華人民共和國藥典(二部)[S].北京:化學工業(yè)出版社,2010,301.
[2]Petr M S,Lymburn M,Clear M H.High-performance liquid chromatography determing erythromycin in plasma[J].J Assoc Off Anal Chem,1987(70):691.
[3]于慧娟,蔡友瓊,顧潤潤.高效液相色譜法測定紅霉素、甲紅霉素和羅紅霉素的研究[J].分析試驗室,2006,25(6):63-66.
[4]Helena T,Britt-maric E.Determination of erythromycin in gastric-juice and blood plasma by liquid chromatography and electrochemical detection[J].J Chromatogr B,1995,673:81.
[5]李春香,徐婉珍,閆永勝.結(jié)晶紫-紅霉素體系電荷轉(zhuǎn)移分光光度法測定紅霉素的研究[J].藥物分析雜志,2006,26(12):1737-1739.
[6]賈云宏,李華侃,李東輝.茜素紅的荷移反應測定紅霉素[J].數(shù)理醫(yī)藥學雜志,2003,16(1):69-70.
[7]江虹,劉艷,湛海粼.麥迪霉素、紅霉素與茜素的分光光度分析研究[J].分析實驗室,2007,26(5):19-22.
[8]譚俊,高勇生,郝玉有,等.比濁法測定紅霉素生物效價及其高通量測定方法探討[J].中國抗生素雜志,2009,34(3):170-172.
[9]劉珂.比濁法自動測定紅霉素及紅霉素腸溶片的效價[J].中國藥品標準,2010,1(3):204-206.