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    葡多酚對(duì)老齡大鼠抗氧化力及細(xì)胞增殖活性的影響

    2013-09-10 11:02:50邱霞姜永梅
    實(shí)用老年醫(yī)學(xué) 2013年8期
    關(guān)鍵詞:空白對(duì)照低劑量肝細(xì)胞

    邱霞 姜永梅

    葡多酚(grape procyanidins,GPC)是從新鮮葡萄籽中提取的一種天然植物多酚物質(zhì)[1]。國(guó)內(nèi)外研究證實(shí),GPC具有清除自由基、抗氧化和提高細(xì)胞增殖活性等多種生物學(xué)功效[2-3]。本實(shí)驗(yàn)采用GPC加入飼料喂養(yǎng)大鼠的方法,觀察GPC對(duì)老齡大鼠抗氧化能力及肝細(xì)胞增殖活性的影響。

    1 對(duì)象與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物與分組 自山東省魯抗醫(yī)藥實(shí)驗(yàn)中心購(gòu)清潔級(jí)健康雄性15月齡Wistar大鼠40只,體質(zhì)量310~485 g,隨機(jī)分為空白對(duì)照組和GPC低、中、高劑量組,每組10只。于本實(shí)驗(yàn)室適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后用于實(shí)驗(yàn)。

    1.2 飼料配制 葡多酚為本實(shí)驗(yàn)室制備,含量>99%,標(biāo)準(zhǔn)品由日本島田株式會(huì)社提供。大鼠飼料購(gòu)自中科院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物研究所。GPC低、中、高劑量組的飼料為每公斤普通飼料中分別加入10、100、200 mg的GPC。以上3組充分混勻后制成餅狀。

    1.3 試劑與儀器 大鼠超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽過(guò)氧物酶(GSH-Px)、丙二醛(MDA)試劑盒購(gòu)自南京建成生物工程研究所。RPMI-1640培養(yǎng)基、胎牛血清、四甲基偶氮噻唑藍(lán)(MTT)、二甲亞砜(DMSO)購(gòu)自美國(guó)GLBCD BRL公司。自動(dòng)酶標(biāo)儀為瑞典產(chǎn)RosysAnthos 2010型。

    1.4 實(shí)驗(yàn)方法 空白對(duì)照組喂飼普通飼料,GPC低、中、高劑量組分別喂飼加入前述不同劑量GPC的普通飼料。各組動(dòng)物均自由進(jìn)食,喂養(yǎng)50 d后次日清晨處死大鼠,腹主動(dòng)脈取血,分離血清備檢GSH-Px、SOD和MDA。無(wú)菌條件下取出肝臟剪碎,制成單細(xì)胞懸液用以檢測(cè)細(xì)胞增殖活性。

    1.5 檢測(cè)指標(biāo)

    1.5.1 抗氧化指標(biāo):取血清2 ml按說(shuō)明書(shū)方法采用還原法測(cè)定GSH-Px活力,黃嘌呤氧化酶法測(cè)定SOD活力,硫代巴比妥酸法測(cè)定MDA含量。

    1.5.2 細(xì)胞增殖活性(MTT法):取制備好的肝細(xì)胞懸液,調(diào)節(jié)細(xì)胞密度為1×106/ml,接種于96孔培養(yǎng)板,每孔加0.1 ml細(xì)胞懸液,每個(gè)樣本設(shè)3個(gè)平行孔,置37℃,5%CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)48 h,加入5 mg/ml MTT 液,10 μl/孔,繼續(xù)培養(yǎng) 4 h。每孔加入0.1 ml二甲亞楓(DMSO),吹打溶解,在酶標(biāo)儀上記錄492 nm波長(zhǎng)溶液的吸光值(A值)。計(jì)算不同劑量的GPC對(duì)肝細(xì)胞增殖的促進(jìn)率:促進(jìn)率(%)=(GPC組 -空白對(duì)照組)/空白對(duì)照組×100%

    1.6 統(tǒng)計(jì)方法 所有數(shù)據(jù)均使用SPSS 16.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,結(jié)果采用±s表示,組間差異采用單因素方差分析,兩兩比較采用SNK檢驗(yàn)。

    2 結(jié)果

    2.1 GSH-Px、SOD和MDA檢測(cè)結(jié)果 GPC中、高劑量組的SOD、GSH-Px和MDA與空白對(duì)照組相比差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)表1。

    表1 各組大鼠GSH-Px、SOD和MDA檢測(cè)結(jié)果±s,n=10)

    表1 各組大鼠GSH-Px、SOD和MDA檢測(cè)結(jié)果±s,n=10)

    注:與空白對(duì)照組比較,*P<0.05;與GPC低劑量組比較,△P<0.05

    組別 GSH-Px(U/ml) SOD(U/ml) MDA(nmol/ml)空白對(duì)照組*△1229.84±70.55 597.88±88.60 12.38±1.33 GPC低劑量組 1275.19±70.17 605.57±101.12 11.45±1.16 GPC中劑量組 1327.17±82.53* 658.95±12.30* 8.72±0.90*GPC高劑量組 1420.11±75.34*△ 729.70±12.04*△ 6.40±1.25

    2.2 肝細(xì)胞增殖活性檢測(cè)結(jié)果 GPC中、高劑量組的A值分別為1.18±0.13、1.29±0.10,均較空白對(duì)照組的增殖活性明顯升高(P<0.05);GPC高劑量組細(xì)胞增殖促進(jìn)率高于GPC低劑量組(P<0.05)。見(jiàn)表2。

    表2 各組大鼠肝細(xì)胞增殖活性檢測(cè)結(jié)果±s,n=10)

    表2 各組大鼠肝細(xì)胞增殖活性檢測(cè)結(jié)果±s,n=10)

    注:與空白對(duì)照組比較,*P<0.05;與GPC低劑量組比較,△P<0.05

    組別 A值 促進(jìn)率(%)0.98±0.12 -GPC低劑量組 1.08±0.11 31.91±9.27 GPC中劑量組 1.18±0.13* 46.65±10.34 GPC高劑量組 1.29±0.10*△ 58.49±12.02空白對(duì)照組△

    3 討論

    氧化應(yīng)激是反映機(jī)體抵抗氧化損傷的一個(gè)重要指標(biāo),人體內(nèi)的抗氧化系統(tǒng)對(duì)于消除機(jī)體高水平的氧化物,維護(hù)細(xì)胞及神經(jīng)元的正常生理功能有著重要的作用。隨著年齡增長(zhǎng),機(jī)體清除氧自由基的酶活性降低,產(chǎn)生氧化應(yīng)激損傷、神經(jīng)元DNA損傷和記憶神經(jīng)質(zhì)受體的興奮性神經(jīng)毒性作用,最終引起老年癡呆癥的發(fā)生和發(fā)展[4]。流行病學(xué)資料顯示膳食中補(bǔ)充某些植物化學(xué)物可增強(qiáng)機(jī)體抗氧化水平,降低衰老過(guò)程中對(duì)氧化應(yīng)激的易感性,改善運(yùn)動(dòng)及認(rèn)知行為功能,是預(yù)防老年癡呆癥的一個(gè)重要手段[5]。

    GSH-Px是機(jī)體內(nèi)廣泛存在的一種重要的過(guò)氧化物分解酶,能催化還原型谷胱甘肽變?yōu)檠趸凸入赘孰?,使有毒的過(guò)氧化物還原成無(wú)毒的羥基化合物,并防止過(guò)氧化物水解產(chǎn)生MDA。SOD可催化超氧陰離子(O2-)歧化為H2O2和O2,再經(jīng)過(guò)氧化氫酶催化生成水,從而消除自由基的損害。MDA是脂質(zhì)過(guò)氧化鏈?zhǔn)椒磻?yīng)終止階段產(chǎn)生的小分子產(chǎn)物,其含量反映了脂質(zhì)過(guò)氧化反應(yīng)程度的強(qiáng)弱[6]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,GPC高劑量組的SOD、GSH-Px活力較空白對(duì)照組顯著性升高,而MDA含量顯著性降低,表明GPC可增強(qiáng)老齡大鼠的抗氧化能力,其機(jī)制與GPC具有較強(qiáng)的自由基清除活性有關(guān)[7]。

    細(xì)胞增殖活性水平是反映細(xì)胞生命力強(qiáng)弱的一個(gè)重要指標(biāo),當(dāng)細(xì)胞受到生理病理因素?fù)p傷時(shí),首先表現(xiàn)出增殖活性的降低[8]。MTT法通過(guò)檢測(cè)吸光度值的變化反映細(xì)胞生長(zhǎng)及增殖活性。本次動(dòng)物實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,GPC中、高劑量組均較空白對(duì)照組的增殖活性明顯升高,且GPC高劑量組細(xì)胞增殖促進(jìn)率明顯高于低劑量GPC組。表明GPC對(duì)老齡大鼠肝細(xì)胞的增殖活性有促進(jìn)作用,這與文獻(xiàn)報(bào)道的結(jié)果相一致[3]。

    綜上研究結(jié)果認(rèn)為,GPC具有增強(qiáng)老齡大鼠清除自由基能力,促進(jìn)細(xì)胞增殖活性,提高機(jī)體抗氧化力等功效,在抗衰老和老年癡呆癥的預(yù)防和治療方面有較好應(yīng)用前景。

    [1]Puiggros F,Llopiz N,Ardevol A,et al.Grape seed procyanidins prevent oxidative injury by modulating the expression of antioxidant enzyme systems[J].J Agric Food Chem,2005,53(15):6080-6086.

    [2]Zhu QY,Schramm DD,Gross HB,et al.Influence of cocoa flavanols and procyanidins on free radical-induced human erythrocyte hemolysis[J].Clin Dev Immunol,2005,12(1):27-34.

    [3]鐘進(jìn)義,李杰,劉輝,等.葡多酚對(duì)肝細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度和增殖活性的影響[J].衛(wèi)生研究,2006,35(5):567-572.

    [4]王豪,瞿正萬(wàn),朱莉娜,等.阿爾茨海默病血漿總抗氧化狀態(tài)與同型半胱氨酸水平的臨床研究[J].實(shí)用老年醫(yī)學(xué),2011,25(1):50-55.

    [5]楊亞丹,蔣與剛.老年癡呆癥營(yíng)養(yǎng)干預(yù)的研究進(jìn)展[J].實(shí)用老年醫(yī)學(xué),2010,24(3):248-250.

    [6]Bagchi D,Ray SD,Bagchi M,et al.Mechanistic pathways of antioxidant cytoprotection by a novel IH636 grape seed proanthocyanidin extract[J].Indian J Exp Biol,2002,40(6):717-726.

    [7]Valko M,Leibfritz D,Moncol J,et al.Free radicals and antioxidants in normal physiological functions and human disease[J].Int J Biochem Cell Biol,2007,39(1):44-84.

    [8]Bader N,Bosy-Westphal A,Koch A,et al.Influence of vitamin C and E supplementation on oxidative stress induced by hyperbaric oxygen in healthy men[J].Ann Nutr Metab,2006,50(3):173-176.

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