王 嬌,熊 瑛,熊 彬,王宋平△
(1.四川省崇州市人民醫(yī)院呼吸內(nèi)科 611230;2.瀘州醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院呼吸內(nèi)科,四川 瀘州 646000)
支氣管哮喘(簡(jiǎn)稱(chēng)哮喘)是由多種細(xì)胞和細(xì)胞組份參與的氣道慢性炎癥性疾病,糖皮質(zhì)激素是目前治療哮喘的主要方法,可以多途徑抑制哮喘氣道炎癥,但無(wú)法治愈,長(zhǎng)期使用可產(chǎn)生不良反應(yīng),尋求更安全、有效的哮喘防治方法是當(dāng)前亟待解決的重要課題。麻黃作為治療咳喘病之要藥,具有發(fā)汗解表、宣肺平喘、利尿消腫之功效[1],但有關(guān)麻黃水提物霧化吸入對(duì)哮喘氣道炎癥的影響尚缺乏深入研究。本課題以哮喘小鼠模型為研究對(duì)象,觀察麻黃水提物霧化吸入對(duì)哮喘小鼠氣道炎癥和白細(xì)胞介素-13(IL-13)與嗜酸性粒細(xì)胞趨化因子(Eotaxin)表達(dá)的影響,為臨床拓寬麻黃治療哮喘的新途徑提供實(shí)驗(yàn)和理論依據(jù)。
1.1 材料
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 24只5~6周齡健康雌性BALB/c小鼠,體質(zhì)量16~20g(購(gòu)自重慶醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心),在瀘州醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院中心實(shí)驗(yàn)室動(dòng)物房飼養(yǎng)。
1.1.2 主要試劑與儀器 卵清清蛋白(OVA)購(gòu)自美國(guó)Sigma公司,免疫組化試劑盒、DAB顯色試劑購(gòu)自武漢博士德生物工程有限公司,小鼠IL-13、Eotaxin ELISA試劑盒購(gòu)自北京天根生化科技有限公司,兔抗小鼠IL-13、Eotaxin多克隆抗體購(gòu)自上海天呈科技有限公司。超聲霧化器:廣東汕頭光電醫(yī)療器械廠產(chǎn)品,電子天平:上海民橋精密科學(xué)儀器有限公司,酶標(biāo)儀:美國(guó)Thermo產(chǎn)品,低溫高速離心機(jī):上海安亭科學(xué)儀器廠產(chǎn)品,電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱:上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司產(chǎn)品,倒置相差顯微鏡:日本Olympus產(chǎn)品。
1.2 方法
1.2.1 麻黃水提物的制備 參照文獻(xiàn)[2]將麻黃50g(購(gòu)于瀘州圣杰藥房)加入500mL純凈水浸泡30min后,煎制1h,濃縮成濃度相當(dāng)于含生藥1g/mL的水煎劑,貯存于4℃冰箱備用。
1.2.2 動(dòng)物分組及建立哮喘模型 按照隨機(jī)數(shù)字表法將小鼠隨機(jī)分為3組:正常對(duì)照組、哮喘模型組、麻黃霧化吸入組(麻黃組),每組8只。哮喘模型的建立參考文獻(xiàn)方法[3-4]:除正常對(duì)照組外,哮喘模型組和麻黃組小鼠在第0、7天腹腔注射卵蛋白抗原液0.2mL(含100μg卵蛋白和1mg氫氧化鋁)致敏,致敏后第14天經(jīng)鼻吸入2%卵蛋白生理鹽水溶液激發(fā),每次30min,1次/天,連續(xù)7d。正常對(duì)照組用等量生理鹽水代替卵蛋白抗原液進(jìn)行腹腔注射和經(jīng)鼻吸入致敏和激發(fā)。
1.2.3 給藥方法 麻黃組小鼠在每次經(jīng)鼻吸入卵蛋白抗原液激發(fā)前1h予以麻黃水提液霧化吸入30min,2次/天,連續(xù)7 d。正常對(duì)照組和哮喘模型組小鼠用等量生理鹽水代替麻黃水提液霧化吸入,吸入方法和時(shí)間同麻黃組。
1.2.4 支氣管肺泡灌洗液(BALF)細(xì)胞計(jì)數(shù) 各組小鼠末次給藥結(jié)束后24h內(nèi)用戊巴比妥腹腔注射麻醉小鼠后,常規(guī)消毒固定,暴露氣管行氣管插管,用PBS緩沖液0.8mL灌洗雙肺,反復(fù)抽吸3次,回收灌洗液,回收率大于或等于80%為合格標(biāo)本。BALF經(jīng)4℃1 500r/min離心10min后,取細(xì)胞沉淀用PBS液重懸,細(xì)胞懸液注入計(jì)數(shù)池,在顯微鏡下計(jì)數(shù)細(xì)胞數(shù),再換算成每升BALF的白細(xì)胞(WBC)總數(shù);另取細(xì)胞懸液涂于載玻片上,經(jīng)姬姆莎染液染色后計(jì)數(shù)嗜酸性粒細(xì)胞(EOS)。
1.2.5 支氣管肺組織病理切片及HE染色 取左肺組織于4%多聚甲醛溶液固定,常規(guī)組織脫水、透明、浸蠟、包埋、切片,厚度5μm、HE染色,光鏡下觀察支氣管及其周?chē)M織的病理改變。
1.2.6 免疫組化法檢測(cè)支氣管肺組織IL-13、Eotaxin的表達(dá) 支氣管肺組織切片采用鏈霉菌抗生物素蛋白-過(guò)氧化物酶連結(jié)(SP)法行免疫組織化學(xué)染色,操作步驟按試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行,主要步驟如下:石蠟切片常規(guī)二甲苯脫蠟,梯度酒精脫水,3%H2O237℃孵育10min滅活內(nèi)源性過(guò)氧化物酶,置0.01mol/L枸櫞酸緩沖液(pH 6.0)中煮沸修復(fù)抗原,正常羊血清工作液封閉,37℃孵育10min,滴加1∶100兔抗鼠多克隆抗體(一抗)4℃孵育過(guò)夜(用PBS液代替一抗作陰性對(duì)照),PBS沖洗3次,每次5min,滴加生物素標(biāo)記羊抗兔血清(二抗),37℃孵育30min,PBS沖洗3次,每次5min,滴加辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記鏈霉素卵白素工作液,37℃孵育30min,PBS沖洗3次,每次5min,二氨基聯(lián)苯胺(DAB)染色,自來(lái)水沖洗蘇木素復(fù)染,常規(guī)脫水、透明、干燥、封片。染色結(jié)果判斷標(biāo)準(zhǔn)參考文獻(xiàn)[5]:在光鏡下觀察出現(xiàn)棕黃色或黃褐色染色的細(xì)胞判定為陽(yáng)性細(xì)胞,每張切片隨機(jī)選取5個(gè)高倍視野(×400)進(jìn)行平均光密度測(cè)定,取其平均值作為該片代表值,采用Image-pro plus 6.0圖像分析系統(tǒng)計(jì)算平均光密度值(AOD)。
1.2.7 酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)法測(cè)定IL-13、Eotaxin的濃度 取右側(cè)支氣管肺組織100mg加入1mL PBS液研磨勻漿后,3 000r/min離心20min后,取上清液,采用ELISA法測(cè)定上清液中IL-13、Eotaxin蛋白的濃度。操作步驟按試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行,在450nm波長(zhǎng)測(cè)量各孔樣品的吸光度(OD)值,根據(jù)OD值計(jì)算出各樣品中IL-13、Eotaxin蛋白的濃度。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS17.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,計(jì)量資料采用表示。組間均數(shù)比較采用單因素方差分析(方差不齊采用Games Howell法,方差齊同采用LSD法進(jìn)行兩兩比較),兩變量的相關(guān)分析采用Bivariate過(guò)程的等級(jí)Pearson相關(guān)法。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 小鼠一般狀況 哮喘模型組和麻黃組小鼠激發(fā)后可見(jiàn)其煩躁不安,呼吸急促,抓鼻,打噴嚏,行動(dòng)遲緩或俯臥不動(dòng),但麻黃組癥狀較輕,正常對(duì)照組無(wú)上述表現(xiàn)。
2.2 BALF中 WBC和EOS計(jì)數(shù) 哮喘模型組和麻黃組BALF中WBC、EOS計(jì)數(shù)明顯高于正常對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);但麻黃組BALF中 WBC、EOS計(jì)數(shù)均低于哮喘模型組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),見(jiàn)表1。
表1 3組小鼠BALF中WBC及EOS計(jì)數(shù)比較
表1 3組小鼠BALF中WBC及EOS計(jì)數(shù)比較
▲:P<0.01,與正常對(duì)照組比較;★:P<0.01,與哮喘模型組比較。
組別WBC EOS正常對(duì)照組3.75±0.43 0.03±0.01哮喘模型組 17.74±0.79▲ 1.81±0.05▲麻黃組 8.57±0.51▲★ 0.52±0.03▲★
2.3 支氣管肺組織病理形態(tài)學(xué)改變 正常對(duì)照組見(jiàn)氣道上皮完整,支氣管、細(xì)支氣管壁平滑肌層較薄,管腔規(guī)則,無(wú)明顯分泌物貯留,黏膜皺襞矮平,肺泡間隔正常,周?chē)鸁o(wú)明顯炎癥細(xì)胞浸潤(rùn);哮喘模型組支氣管上皮有脫落不完整,氣道上皮細(xì)胞增生肥大,管腔有明顯狹窄,平滑肌增厚,支氣管周?chē)罅垦装Y細(xì)胞浸潤(rùn),肺泡間隔增厚,管腔內(nèi)可見(jiàn)黏液栓;麻黃組支氣管周?chē)胺闻輩^(qū)炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)及管腔黏液栓均較哮喘模型組減少,支氣管壁肺泡間隔增厚及管腔狹窄均較哮喘模型組減輕,見(jiàn)圖1。
2.4 支氣管肺組織IL-13、Eotaxin免疫組化染色結(jié)果 IL-13、Eotaxin陽(yáng)性表達(dá)產(chǎn)物主要位于支氣管上皮細(xì)胞及間質(zhì)中炎癥細(xì)胞的細(xì)胞膜或細(xì)胞質(zhì),呈棕黃色或黃褐色顆粒樣分布。正常對(duì)照組可見(jiàn)氣道黏膜、黏膜下層有少量呈棕黃色的陽(yáng)性細(xì)胞;哮喘模型組可見(jiàn)氣道黏膜、黏膜下層、血管周?chē)?、肺泡區(qū)有大量呈棕黃色的陽(yáng)性細(xì)胞,以氣道黏膜上皮細(xì)胞、血管內(nèi)皮細(xì)胞、平滑肌細(xì)胞、炎癥細(xì)胞表達(dá)明顯。通過(guò)分析比較AOD,哮喘組表達(dá)均明顯高于正常對(duì)照組(P<0.01);麻黃組表達(dá)相對(duì)于哮喘模型組均有減輕,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),見(jiàn)圖2、3,表2。
圖1 3組支氣管肺組織病理形態(tài)學(xué)改變(HE×200)
圖2 3組支氣管肺組織IL-13蛋白表達(dá)(SP×200)
圖3 3組支氣管肺組織Eotaxin蛋白表達(dá)(SP×200)
表2 3組支氣管肺組織IL-13、Eotaxin蛋白表達(dá)比較
表2 3組支氣管肺組織IL-13、Eotaxin蛋白表達(dá)比較
▲:P<0.01,與正常對(duì)照組比較;★:P<0.01,與哮喘模型組比較。
組別IL-13 Eotaxin正常對(duì)照組0.198±0.091 0.188±0.068哮喘模型組 0.448±0.141▲ 0.419±0.103▲麻黃組 0.226±0.08 8★ 0.218±0.057★
2.5 ELISA法測(cè)定IL-13、Eotaxin濃度結(jié)果比較 哮喘模型組和麻黃組支氣管肺組織勻漿上清液中IL-13、Eotaxin濃度明顯高于正常對(duì)照組(P<0.01),但麻黃組上清液中IL-13、Eotaxin的濃度低于哮喘模型組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),見(jiàn)表3。
表3 3組支氣管肺組織勻漿上清液中IL-13、Eotaxin濃度比較
表3 3組支氣管肺組織勻漿上清液中IL-13、Eotaxin濃度比較
▲:P<0.01,與正常對(duì)照組比較;★:P<0.01,與哮喘模型組比較。
組別IL-13 Eotaxin正常對(duì)照組1 145.993±134.669 717.355±60.491哮喘模型組 3 489.909±235.925▲ 1 262.709±114.516▲麻黃組 2 470.610±138.882▲★ 918.608±58.127▲★
2.6 相關(guān)性分析 直線相關(guān)分析顯示,哮喘模型組EOS計(jì)數(shù)與IL-13、Eotaxin表達(dá)呈正相關(guān)(r=0.746、0.712,P=0.033、0.048);麻黃組 EOS計(jì)數(shù)與IL-13、Eotaxin表達(dá)也呈正相關(guān)(r=0.729、0.734,P=0.040、0.038);IL-13與 Eotaxin在哮 喘組(r=0.803,P=0.028)或麻黃組(r=0.761,P=0.016)的表達(dá)均呈正相關(guān)。
哮喘是由多種細(xì)胞參與的氣道炎癥和氣道高反應(yīng)性為特征的慢性炎癥性疾病[6]。EOS是參與氣道炎癥的主要細(xì)胞,EOS合成、釋放的各種炎癥介質(zhì)導(dǎo)致支氣管平滑肌收縮,微血管滲漏和黏液分泌增加[7-8]。Eotaxin可趨化EOS聚集到氣道上皮并活化、釋放各種炎癥介質(zhì)導(dǎo)致氣道上皮損傷[9-10]。IL-13是與哮喘發(fā)病直接相關(guān)的Th2細(xì)胞因子,與氣道黏液高分泌和氣道高反應(yīng)性密切相關(guān)[11-12],IL-13與 Eotaxin相互作用,共同調(diào)節(jié)EOS在氣道的募集、活化,使氣道炎癥的持續(xù)時(shí)間延長(zhǎng)[13-14]。
麻黃具有發(fā)汗解表、宣肺平喘、利尿消腫之功效。麻黃堿是其平喘的主要成分,可直接興奮支氣管平滑肌細(xì)胞的β受體,舒張支氣管平滑肌。我們先前的研究結(jié)果表明,給予麻黃水提物灌胃預(yù)處理哮喘豚鼠,氣道上皮損傷、脫落及炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)明顯減輕,提示麻黃灌胃具有抑制哮喘豚鼠氣道炎癥的作用[14],但麻黃口服給藥雖對(duì)支氣管平滑肌有舒張作用,但同時(shí)對(duì)橫紋肌也有興奮作用,使心率加快,外周血管收縮,血壓升高,劑量過(guò)大可導(dǎo)致失眠,心煩不安和顫抖[15]。吸入療法是治療呼吸系統(tǒng)疾病的常用方法,與口服給藥相比,霧化吸入給藥具有局部藥物濃度高、起效迅速、所需劑量小、全身不良反應(yīng)少等優(yōu)點(diǎn)[16]。
本研究中觀察到哮喘小鼠BALF中WBC、EOS計(jì)數(shù)較正常對(duì)照組明顯增高,氣道上皮細(xì)胞增生肥大,大量炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),管腔內(nèi)可見(jiàn)黏液栓,支氣管肺組織中IL-13、Eotaxin的表達(dá)量明顯高于正常對(duì)照組(P<0.01),與文獻(xiàn)報(bào)道一致[17]。給予麻黃水提物霧化吸入干預(yù)后,結(jié)果顯示BALF中 WBC、EOS計(jì)數(shù)較哮喘模型組小鼠明顯減少(P<0.01),氣道上皮炎癥程度減輕,支氣管及周?chē)装Y細(xì)胞浸潤(rùn)減少,支氣管肺組織中IL-13、Eotaxin蛋白表達(dá)減弱,其表達(dá)量明顯低于哮喘模型組小鼠(P<0.01),相關(guān)性分析顯示,BALF中EOS計(jì)數(shù)與支氣管肺組織中IL-13、Eotaxin的表達(dá)量呈正相關(guān)。本研究結(jié)果表明,哮喘小鼠支氣管肺組織中存在IL-13、Eotaxin蛋白表達(dá)上調(diào),麻黃水提取物經(jīng)霧化吸入途徑給藥可抑制哮喘小鼠的氣道炎癥和EOS浸潤(rùn),抑制IL-13與Eotaxin蛋白的表達(dá),這可能是其治療支氣管哮喘的作用機(jī)制之一。
[1] 馬勇,徐暾海,徐海燕,等.麻黃研究進(jìn)展[J].吉林中醫(yī)藥,2008,28(10):777-779.
[2] 魏鳳環(huán),羅佳波,沈群,等.麻黃湯及單味麻黃中麻黃堿與偽麻黃堿在小鼠組織中的藥動(dòng)學(xué)研究[J].中草藥,2004,35(7):781-784.
[3] 李睿,劉恩梅,楊錫強(qiáng),等.不同飼養(yǎng)環(huán)境、種屬、佐劑及激發(fā)方法對(duì)小鼠哮喘炎癥的影響[J].重慶醫(yī)學(xué),2006,35(1):43-44.
[4] 沈璐,賴(lài)克方,姜華,等.不同激發(fā)方式對(duì)小鼠過(guò)敏性支氣管哮喘模型的影響[J].中華哮喘雜志:電子版,2009,3(6):5-8.
[5] 黃英,張雷,劉國(guó)祥.地塞米松對(duì)支氣管哮喘大鼠模型肺內(nèi)EOTAXIN表達(dá)的影響[J].重慶醫(yī)學(xué),2004,33(10):1506-1507.
[6] Bateman ED,Hurd SS,Barnes PJ,et al.Global strategy for asthma management and prevention:GINA executive summary[J].Eur Respir J,2008,31(1):143-178.
[7] Nakagome K,Nagata M.Pathogenesis of airway inflammation in bronchial asthma[J].Auris Nasus Larynx,2011,38(5):555-563.
[8] Calderon C,Rivera L,Hutchinson P,et al.T-cell cytokine profiles are altered in childhood asthma exacerbation[J].Respirology,2009,14(2):264-269.
[9] Zietkowski Z,Skiepko R,Tomasiak-Lozowska MM,et al.Eotaxin in exhaled breath condensate of allergic asthma patients with exercise-induced bronchoconstriction[J].Respiration,2011,82(2):169-176.
[10]Zietkowski Z,Skiepko R,Tomasiak-Lozowska MM,et al.Airway inflammation and eotaxin in exhaled breath condensate of patients with severe persistent allergic asthma during omalizumab therapy[J].Adv Med Sci,2011,56(2):318-322.
[11]Woodruff PG,Modrek B,Choy DF,et al.T-h(huán)elper type 2-driven inflammation defines major subphenotypes of asthma[J].Am J Respir Crit Care Med,2009,180(5):388-395.
[12]Mitchell J,Dimov V,Townley RG.IL-13and the IL-13 receptor as therapeutic targets for asthma and allergic disease[J].Curr Opin Investig Drugs,2010,11(5):527-534.
[13]Nguyen TH,Casale TB.Immune modulation for treatment of allergic disease[J].Immunol Rev,2011,242(1):258-271.
[14]熊瑛,熊彬,王宋平,等.麻黃水提物對(duì)哮喘豚鼠氣道炎癥和氣道上皮細(xì)胞STAT1信號(hào)傳導(dǎo)影響[J].西部醫(yī)學(xué),2008,20(5):913-916.
[15]Lee MR.The history of Ephedra(ma-h(huán)uang)[J].J R Coll Physicians Edinb,2011,41(1):78-84.
[16]蘇遠(yuǎn)力,鄭勁平,高怡.我國(guó)醫(yī)院使用霧化吸入治療狀況的問(wèn)卷調(diào)查和分析[J].中華結(jié)核和呼吸雜志,2010,33(2):140-141.
[17]Yuk JE,Lee MY,Kwon OK,et al.Effects of astilbic acid on airway hyperresponsiveness and inflammation in a mouse model of allergic asthma[J].Int Immunopharmacol,2011,11(2):266-273.