鄧貴智 胡建新
[摘要] 目的 通過建立兔急性房顫的模型觀察伊布利特、參松養(yǎng)心膠囊及兩藥聯(lián)合用藥對兔心房肌L型鈣離子通道α1C、β1和鉀離子通道Ikr表達(dá)的影響。 方法 通過建立兔急性房顫模型,應(yīng)用RT-PCR、Western blot檢測正常組、刺激組、伊布利特組、參松養(yǎng)心膠囊組和聯(lián)合用藥組心房肌α1C、β1 、IKr基因和蛋白表達(dá)水平,并進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。結(jié)果 (1)與正常組比較,刺激組L型鈣離子通道α1C基因與蛋白表達(dá)及β1基因表達(dá)顯著降低(P<0.01);而Ikr基因及蛋白表達(dá)無明顯變化(P>0.05 )。(2)與刺激組比較,伊布利特組α1C基因與蛋白表達(dá)及β1基因表達(dá)高于刺激組(P <0.01),Ikr基因及蛋白表達(dá)低于刺激組(P<0.01);參松養(yǎng)心膠囊組α1C基因與蛋白表達(dá)及β1基因表達(dá)水平與刺激組無明顯差異(P>0.05),Ikr基因及蛋白表達(dá)水平無明顯差異(P>0.05);聯(lián)合用藥組α1C基因與蛋白表達(dá)及β1基因表達(dá)高于刺激組(P <0.01),IKr 基因及蛋白表達(dá)低于刺激組(P <0.01)。(3)與伊布利特組比較,伊布利特與參松養(yǎng)心膠囊聯(lián)合用藥組α1C基因與蛋白表達(dá)及β1基因表達(dá)水平無顯著差異(P >0.05);Ikr基因及蛋白表達(dá)水平無顯著差異(P >0.05);參松養(yǎng)心膠囊組α1C基因與蛋白表達(dá)及β1基因表達(dá)水平低于伊布利特組(P <0.01),Ikr基因及蛋白表達(dá)水平高于伊布利特組(P <0.01)。(4)參松養(yǎng)心膠囊組α1C基因與蛋白表達(dá)及β1基因表達(dá)水平低于聯(lián)合用藥組(P <0.01),Ikr基因及蛋白表達(dá)水平高于聯(lián)合用藥組(P <0.01)。 結(jié)論 (1)房顫誘發(fā)術(shù)后刺激組兔心房肌L型鈣離子通道α1C、β1 表達(dá)明顯下降,而IKr表達(dá)無明顯變化。(2)伊布利特可抑制L型鈣離子通道α1C、β1 表達(dá)下降及降低鉀離子通道IKr表達(dá)。參松養(yǎng)心膠囊對不能抑制L型鈣離子通道α1C、β1表達(dá)下降,對鉀離子通道Ikr的表達(dá)無明顯影響。(3)聯(lián)合用藥對比單用伊布利特對α1C、β1、IKr的表達(dá)無明顯影響。
[關(guān)鍵詞] 急性房顫;L型鈣離子通道;鉀離子通道
[中圖分類號(hào)] R965 [文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼] A [文章編號(hào)] 2095-0616(2013)05-30-05
心房顫動(dòng)(AF),簡稱房顫,是最常見的心律失常之一,全球約有3%~5%人群發(fā)生房顫。房顫的機(jī)制目前尚不明確,房顫發(fā)生時(shí),心房肌細(xì)胞離子通道會(huì)發(fā)生一系列的改變,從而產(chǎn)生電重構(gòu),主要表現(xiàn)為動(dòng)作電位時(shí)程(APD)、心房有效不應(yīng)期(AERP)的縮短,不應(yīng)期離散度增大、不應(yīng)期頻率適應(yīng)性下降以及傳導(dǎo)速度減慢。Bosch等[1]研究表明,房顫發(fā)生時(shí),心肌內(nèi)有多種離子流的改變,特別是L型鈣離子流及鉀離子流的改變,兩者可能是導(dǎo)致心肌電重構(gòu)的主要原因。本實(shí)驗(yàn)研究擬探討伊布利特、參松養(yǎng)心膠囊及伊布利特與參松養(yǎng)心膠囊聯(lián)合應(yīng)用對房顫的預(yù)防作用,及其對房顫誘發(fā)實(shí)驗(yàn)中兔心肌α1C、β1、IKr表達(dá)的影響。
1 材料與方法
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物分組
60只日本大耳兔隨機(jī)分正常組、刺激組[生理鹽水5 mL/(kg·d)灌胃]、伊布利特組[伊布利特(安徽豐原藥業(yè)股份有限公司,H20061029)0.1 mg/(kg·d)耳緣靜脈推注]、參松養(yǎng)心膠囊組[參松養(yǎng)心膠囊(石家莊以嶺藥業(yè)股份有限公司,Z20103032]0.2 g/(kg·d)灌胃]、伊布利特與參松養(yǎng)心膠囊聯(lián)合應(yīng)用組,簡稱聯(lián)合用藥組[耳緣靜脈推注伊布利特0.1 mg/(kg·d)及參松養(yǎng)心膠囊0.2 g/(kg·d)灌胃]。均在誘發(fā)房顫實(shí)驗(yàn)前用藥4周。除正常組外,其余各組均于用藥后4周進(jìn)行房顫誘發(fā)試驗(yàn)。
1.2 方法與步驟
1.2.1 房顫誘發(fā) 3%戊巴比妥1 mL/kg經(jīng)兔耳緣靜脈麻醉,頸部及左胸前區(qū)予NaS2脫毛備皮,行頸部氣管切開,氣管插管,動(dòng)物呼吸機(jī)輔助呼吸(呼吸頻率34~60次/min,潮氣量25~30 mL,吸/呼比3/1),同步記錄體表心電圖。胸骨正中開胸,逐層切開胸壁組織,分離出第3、4根肋骨,小心離斷(注意勿傷及肋間動(dòng)脈),剪開胸膜,暴露心臟,剪開并懸吊心包,充分暴露左心房,予自制電極一根固定于左心耳(電極頭端處可導(dǎo)電,其余處均不能導(dǎo)電),另一根電極固定于胸大肌。連接心電生理刺激儀,進(jìn)行程序期前刺激與Burst刺激相結(jié)合的方法誘發(fā)房顫,觀察心電圖,出現(xiàn)“丁”字形起搏信號(hào)表示刺激有效。多功能心電刺激儀設(shè)定:脈寬2 mv,輸出電壓為2倍舒張期閾值,S1/S2為8/1,步長-10 ms。S1S2固定于心房有效不應(yīng)期,引入第二個(gè)早搏刺激S3時(shí)加30 ms,S2S3從基礎(chǔ)周長的80%開始,以10 ms步長反掃至S3落入不應(yīng)期。以同樣的方法引入第三個(gè)早搏刺激S4直至誘發(fā)出房顫。上述方案不能誘發(fā),則以周長為100 ms的Brust刺激進(jìn)行誘發(fā)。如均不能誘發(fā),則房顫誘發(fā)不成功。刺激組、伊布利特組、參松養(yǎng)心膠囊組、聯(lián)合用藥組房顫誘發(fā)條件相同。
1.2.2 標(biāo)本采集 每組家兔于刺激結(jié)束后在麻醉狀態(tài)下取下心臟,用生理鹽水沖洗干凈,取少許左心耳組織放入液氮冷凍保存,以備提取組織RNA及蛋白。
1.2.3 RNA的提取與R-t PCR 取80 mg左心耳組織剪碎勻漿,采用Catrimox-Guanidinium一步法提取總RNA,提取物以40μL DEPC水溶解,采用紫外分光度儀測定溶度備用。逆轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng):RNA變性,逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA,以GAPDH為內(nèi)參照,在同一反應(yīng)體系中行PCR。L型鈣通道α1C亞基正義鏈:5-CTGGACAAGAACCAGCGACAGTGCG-3 ,反義鏈:50-ATCACGATCAGGAGGGCCACATAGGG-3。β1亞基正義鏈:5-AGCTTGCGCTGAGTTCTTGC-3,反義鏈:5-TCCCTTGCTTTGCTCTCTG-3。IKr正義鏈:5-TCGCACCATTAGCAAGATTC-3,反義鏈:5-GGATGAGCCAGTCCCACA-3。GAPDH正義鏈:5-GCTTTTAACTCTGGCAAAGTG-3,反義鏈:5-GATGATGACCCTTTTGGCTC-3。曲4μL PCR產(chǎn)物經(jīng)1.0%瓊脂糖凝膠電泳,120 V,100 mA,30 min,溴化乙錠染色,凝膠成像儀成像,用SnyGene凝膠成像分析系統(tǒng),根據(jù)條帶灰度和寬度自動(dòng)分析。
1.2.4 蛋白質(zhì)的提取與Western blot 取100 mg組織放入研缽剪碎研磨(在冰上進(jìn)行),加入蛋白提取液300μL、10%蛋白抑制劑30μL繼續(xù)研磨,吸取提取液冰浴放置30 min,4℃ 12 000 rpm離心10 min,吸取上清,按Bradford比色法測定蛋白濃度,加loading buffer煮沸5~10 min。聚丙烯酰胺凝膠(SDS-PAGE)電泳分離蛋白質(zhì),半干式電轉(zhuǎn)膜90 min,5%脫脂牛奶的TBST封閉液,室溫1 h,分別加α1C、Ikr單克隆抗體4℃封閉過夜,加入含有1∶2000稀釋辣根酶標(biāo)記的相應(yīng)二抗工作液,室溫下孵育1 h,X光片曝光顯影,用Sicon Image軟件對Western blot條帶進(jìn)行灰度分析,按:蛋白相對含量=該蛋白條帶的灰度值/上樣對照條帶的灰度值公式計(jì)算蛋白相對含量。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理
用SPSS17.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析,所有計(jì)量資料以()表示,檢驗(yàn)2個(gè)或2個(gè)以上樣本率用x2檢驗(yàn),多組間均數(shù)比較用方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2 結(jié)果
2.1 刺激組、伊布利特組、參松養(yǎng)心膠囊組、聯(lián)合用藥組房顫誘發(fā)情況
聯(lián)合用藥組、伊布利特組兩組房顫誘發(fā)率明顯低于刺激組(分別為x2=5.48,P=0.01;x2=4.84,P=0.02),伊布利特組與聯(lián)合用藥組比較無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(x2=2.12,P=0.34)。參松養(yǎng)心膠囊組與刺激組比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(x2=0.68,
2.2 α1C、β1、IKr基因表達(dá)水平
聯(lián)合用藥組、伊布利特組、參松養(yǎng)心膠囊組、刺激組L型鈣離子通道α1C、β1基因表達(dá)水平均低于正常組(t=6.47,P<0.01)。伊布利特組α1C、β1基因表達(dá)水平高于刺激組(t=5.86,P<0.01),伊布利特組α1C、β1基因表達(dá)水平高于參松養(yǎng)心膠囊組(t=8.26,P<0.01);伊布利特組與聯(lián)合用藥組比較α1C、β1基因表達(dá)水平無明顯差異(t=1.37,P>0.05)。參松養(yǎng)心膠囊組α1C、β1基因表達(dá)水平與刺激組比較無明顯差異(t=1.61,P>0.05)。聯(lián)合用藥組α1C、β1基因表達(dá)水平高于參松養(yǎng)心膠囊組(t=3.68,P<0.05)。見表2。α1C、β1、IKr基因表達(dá)見圖3、4、6。
2.3 α1C、IKr蛋白表達(dá)水平
聯(lián)合用藥組、伊布利特組、參松養(yǎng)心膠囊組、刺激組L型鈣離子通道α1C、蛋白表達(dá)水平均低于正常組(t=3.18,P<0.05),伊布利特組α1C蛋白表達(dá)水平高于刺激組(t=6.21,P<0.01),伊布利特組α1C蛋白表達(dá)水平高于參松養(yǎng)心膠囊組(t=7.56,P<0.01);伊布利特組與聯(lián)合用藥組比較α1C蛋白表達(dá)水平無明顯差異(t=2.01,P>0.05)。參松養(yǎng)心膠囊組α1C蛋白表達(dá)水平與刺激組比較無明顯差異(t=3.67,P>0.05)。聯(lián)合用藥組α1C、β1基因表達(dá)水平高于參松養(yǎng)心膠囊組(t=3.68,P<0.05)。見表3。α1C、IKr蛋白表達(dá)見圖5、6。
3 討論
3.1 經(jīng)房顫誘發(fā)實(shí)驗(yàn)后L型鈣離子通道α1C、β1的表達(dá)
眾多研究表明房顫可引起L型鈣離子通道α1C基因及蛋白表達(dá)下降,Ca2+內(nèi)流減少,動(dòng)作電位及有效不應(yīng)期縮短[2-3],Bosch等[1]研究亦發(fā)現(xiàn)房顫患者中β1亞基比竇性心律者表達(dá)降低,并指出在房顫患者及動(dòng)物模型中,L型鈣離子流密度明顯下降,α1C,β1亞基及蛋白表達(dá)水平較竇性心律者降低。本研究結(jié)果表明,在兔急性房顫誘發(fā)實(shí)驗(yàn)中,經(jīng)對兔心房刺激后,刺激組L型鈣離子通道α1C、β1基因及蛋白表達(dá)水平明顯低于正常組(P<0.01),提示心房經(jīng)過快速起搏時(shí),L型鈣離子通道活性降低。心肌細(xì)胞保持細(xì)胞內(nèi)Ca2+離子平衡主要通過電壓依賴方式和鈣依賴方式使鈣離子通道失活(CDI)[4],當(dāng)心房經(jīng)過快速起搏時(shí),進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)Ca2增多,并誘發(fā)肌漿網(wǎng)釋放更多Ca2+,使細(xì)胞Ca2+內(nèi)異常升高,觸發(fā)CDI,使LVDCC活性降低,L型鈣離子通道電流密度下降,這是α1C、β1基因及蛋白表達(dá)下降的可能機(jī)制。LVDCC活性降低,Ca2+內(nèi)流減少,平臺(tái)期Ca2+降低,動(dòng)作電位時(shí)程及心房有效不應(yīng)期進(jìn)行性縮短,心房傳導(dǎo)離散度增加,不應(yīng)期頻率適應(yīng)性降低[5-6],從而有利于房顫的發(fā)生和維持。因此,在房顫的形成過程中,α1C、β1亞基表達(dá)下降,L型鈣離子通道活性降低,動(dòng)作電位時(shí)程、心房有效不應(yīng)期縮短等都起著重要的作用。推測通過藥物干預(yù)使L型鈣離子通道活性升高,平臺(tái)期Ca2+增多,適當(dāng)延長動(dòng)作電位時(shí)程及心房有效不應(yīng)期,可以預(yù)防及減少房顫的發(fā)生,降低房顫的發(fā)生率。
3.2 經(jīng)房顫誘發(fā)實(shí)驗(yàn)后Ikr的表達(dá)
房顫時(shí),動(dòng)作電位時(shí)程及心房有效不應(yīng)期進(jìn)行性縮短,復(fù)極加速是其重要原因。在心肌的復(fù)極過程中,有多種離子流的參與,其中延遲整流鉀通道(IK)在心肌的復(fù)極過程中起著關(guān)鍵作用。心肌細(xì)胞上的延遲整流鉀離子通道包括三種鉀電流:快激活延遲整流鉀電流(IKr)和慢激活延遲整流鉀電流(IKs),以及超快激活延遲整流鉀電流(IKu),其中以延遲整流鉀電流(IKr)最為重要[7]。IKr編碼基因是HERG,其變異可致遺傳性長QT綜合征[8-9],EHRG表達(dá)增高,可使快激活延遲整流鉀電流增加,復(fù)極時(shí)間減少,動(dòng)作電位時(shí)程及心房有效不應(yīng)期縮短。Manios等[10]研究也表明IKr通道基因表達(dá)升高,可以使心肌細(xì)胞動(dòng)作電位2、3相外向鉀離子流增加,使心肌復(fù)極加快,動(dòng)作電位時(shí)程及有效不應(yīng)期縮短。但Yue等[11]在對犬房顫誘發(fā)實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),在經(jīng)快速起搏的犬心房及已成功誘發(fā)房顫的犬心房中,IKr表達(dá)與對照組比較并無差異。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,在經(jīng)快速起搏的兔心房中,刺激組Ikr通道基因及蛋白表達(dá)水平與正常組比較無明顯差異,與Yue等實(shí)驗(yàn)結(jié)果一致。因此,本研究認(rèn)為在房顫的發(fā)生過程中,心房快心率時(shí)IKr通道基因及蛋白不會(huì)升高,IKr可能沒有參與心房的電重構(gòu),房顫發(fā)生時(shí),APD及ERP縮短可能由L型鈣通道及其他離子通道功能失調(diào)所致。IKr通道基因表達(dá)異常升高,可以使細(xì)胞動(dòng)作電位2、3相外向鉀離子流增加,復(fù)極加快,動(dòng)作電位時(shí)程及有效不應(yīng)期縮短,可能有利于房顫的發(fā)生及維持,Li等[12]研究發(fā)現(xiàn)犬左房HERG蛋白表達(dá)高于右房,同時(shí)觀察到犬左房動(dòng)作電位時(shí)程及心房有效不應(yīng)期短于右房,考慮左心房IKr通道基因高表達(dá)是左心房好發(fā)房顫的因素之一,但在房顫發(fā)生的過程中,IKr基因及蛋白表達(dá)并無明顯變化。因此,可以推測應(yīng)用藥物干預(yù)使心房IKr通道基因表達(dá)適當(dāng)下降,可以減少房顫的發(fā)生。Lai等[13]發(fā)現(xiàn),在慢性房顫患者中,IKr通道基因表達(dá)水平低于竇性心律者,其表達(dá)水平降低可能是對長期房顫時(shí)縮短的動(dòng)作電位時(shí)程及心房有效不應(yīng)期的一個(gè)自身的反饋調(diào)節(jié),從而減輕房顫后心房的電重構(gòu),是一種保護(hù)機(jī)制。
3.3 經(jīng)房顫誘發(fā)實(shí)驗(yàn)后伊布利特、參松養(yǎng)心膠囊干預(yù)的效果
本實(shí)驗(yàn)表明伊布利特可以抑制兔心房快速起搏時(shí)L型鈣離子通道α1C、β1表達(dá)的下降。α1C、β1是LVDCC主要功能亞基,α1C、β1表達(dá)的降低,可使L型鈣通道活性降低,L型鈣電流(ICa-L)密度下降,Ca2+內(nèi)流減少,心肌細(xì)胞動(dòng)作2相平臺(tái)期縮短,APD及ERP縮短,ERP頻率適應(yīng)性降低,有利于折返的形成,使房顫得以發(fā)生及維持。伊布利特能夠抑制α1C、β1表達(dá)下降,促進(jìn)Ca2+內(nèi)流,有效延長APD及ERP,從而不利于心律失常的發(fā)生,可能是其具有預(yù)防兔急性房顫發(fā)生作用的機(jī)制之一。本研究實(shí)驗(yàn)表明,伊布利特可以降低鉀離子通道IKr基因及蛋白的表達(dá)。IKr是細(xì)胞復(fù)極的主要離子流,與Na+和Ca2+內(nèi)流的相對速率決定平臺(tái)期的長短。IKr通道基因的高表達(dá),可以使心肌細(xì)胞復(fù)極時(shí)外向鉀離子流增加,使復(fù)極加快,APD及ERP縮短。伊布利特可以降低IKr通道基因的表達(dá),使復(fù)極時(shí)外向鉀離子流減少,可以使復(fù)極時(shí)間延長APD及ERP,從而不利于房顫的發(fā)生及維持。因此,心臟瓣膜術(shù)后等房顫高發(fā)人群中,應(yīng)用伊布利特可能能起到很好的預(yù)防作用。伊布利特其副作用可過度延長有效不應(yīng)期及QT間期,部分患者可致尖端扭轉(zhuǎn)型室速(Tpd)[14-15],有報(bào)道伊布利特致Tpd發(fā)生率為4.3%,可能與其使鈣離子內(nèi)流增多,過度阻滯IKr,易誘發(fā)早期后除極有關(guān)。
該實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)參松養(yǎng)心膠囊組兔急性房顫誘發(fā)率41.7%明顯低于刺激組75.0%,但可能由于樣本數(shù)量偏少,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,其對房顫的發(fā)生可能有一定的影響,有待于進(jìn)一步的研究。本研究發(fā)現(xiàn)參松養(yǎng)心膠囊組α1C、β1的表達(dá)與刺激無明顯差異(P>0.05),但低于正常組(P<0.01)。提示參松養(yǎng)心膠囊不能抑制心房快速起搏時(shí)α1C、β1表達(dá)的下降,也不能使心房快速起搏時(shí)已表達(dá)下降的α1C、β1表達(dá)進(jìn)一步下降。因?yàn)樵谛姆靠焖倨鸩珪r(shí),L型鈣離子通道活性下降,α1C、β1的表達(dá)已有降低,所以尚不能提示其對鈣離子通道是否有阻滯作用。伊布利特與參松養(yǎng)心膠囊聯(lián)合用藥組與伊布利特組無明顯差異(P>0.05),提示參松養(yǎng)心膠囊不能協(xié)同伊布利特抑制α1C、β1表達(dá)的下降,也不能使伊布利特抑制α1C、β1表達(dá)的下降作用降低。李寧等[16]研究發(fā)現(xiàn)參松養(yǎng)心膠囊提取干粉對正常心肌細(xì)胞INa、ICa-L有阻滯作用,因此可以推測,參松養(yǎng)心膠囊對正常的L型鈣離子通道可能具有阻滯作用,但對房顫發(fā)生時(shí)活性已降低的L型鈣離子通道影響有限。
本實(shí)驗(yàn)表明參松養(yǎng)心膠囊組IKr表達(dá)與正常組、刺激組無明差異(P>0.05),提示參松養(yǎng)心膠囊對兔心房肌IKr表達(dá)沒有影響。聯(lián)合用藥組IKr表達(dá)與伊布利特組無明顯差異,提示參松養(yǎng)心膠囊不能影響伊布利特對IKr的阻滯作用。
[參考文獻(xiàn)]
[1] Bosch RF,Scherer CR,Rub N,et al.Molecular mechanisms of early electrical remodeling :transcriptional down regulation of ion channel subunits I(Ca,L)and I(to)in rapid atrial pacing in rabbits[J].J Am Coll Cardiol,2003,41(5):858-869.
[2] Mestroni L.Genomic medicine and atrial fibrillation[J].JAm Coil Cardiol,2003,41(12):2193-2196.
[3] Nakano Y,Niida S,Dote K,et al.Matrix metalloproteinase-9 contributes to human atrial remodeling during atrial fibrillation[J].J Am Coil Cardiol,2004,43(5):818-825.
[4] Sun H,Leblanc N,Nattel S.Mechanisms of inactivation of L-type calcium channels in human atrial myocytes[J].Am J Physiol,1997,272(4 Pt 2):1625-1635.
[5] Cohe M,Naccarelli GV.pathophysiology and disease progression of atrial fibrillation :importance of achieving and maintaining sinus rhythm[J]. J Cardiovase Electrophysiol,2008,19(8):885-890.
[6] Vest JA,Wehrens XH,Reiken SR,et al.Defective cardiac ryanodine receptor regulation during atrial fibrillation[J].Circulation,2005,111(16):2025-2032.
[7] Guo T,Massaeli H,Li W,et al.Identification of IKr and itstrafficking disruption induced by probucol in cultured neonatal rat cardiomyocytes[J]. J Pharmacol Exp Ther,2007,321(3):911-920.
[8] Wang Q,Curran ME,SplawskiI,et al.Positional cloning of a novel potassium channel gene:KVLQT1 mutations cause cardiac arrhythmias[J].Nat Genet,1996,12:17-53.
[9] Curran ME,Splawski I,Timothy KW,et al.A molecular basis for cardiac arrhythmia:HERG mutations cause long QT syndrome[J].Cell,1995,80(5):795-803.
[10] Manios EG,Kanoupakis EM,Chlouverakis GI,et al.Changes in atrial electrical properties following cardioversion of chronic atrial fibrillation:Relation with recurrence[J].Cardiovascular Research,2000,47(2):244-253.
[11] Yue L,F(xiàn)eng J,Gaspo R,et al.Ionic remodeling underlying action potential changes in a canine model of atrial fibrillation[J].Circ Res,1997,81(4):512-525.
[12] Li D,Zhang L,Kneller J,et al.Potential ionic mechanism for repolarization differences between canine right and left atrium[J].Circ Res,2001,88 (11):1168-1175.
[13] Lai LP,Su ML,Lin JL,et al,Changers in the mRNA levels of delayed rectifier potassium channels in human atrial fibrillation[J].Cardiology,1999,92(4):248-255.
[14] Ellenbogen KA,Stambler BS,Wood MA,et al.Efficacy of intravenous ibutilide for rapid termination of atrial fibrillation and atrial flutter:A dose-response study [J].J Am Coll Cardiol,1996,28(1):130-136.
[15] Stambleer BS,Wood MA,Ellenbogen KA,et al.Efficacy and safety of repeated intravenous doses of ibultlide for rapid conversion of atrial flutter or bibrillation[J].Circulation,1996,94(7):1613-1621.
[16] 李寧,霍有平,浦介麟,等.通絡(luò)藥物對心肌細(xì)胞鈉鈣離子通道的影響[J].中華醫(yī)學(xué)雜志,2007,87(14):995-998.
(收稿日期:2013-01-31)