孫慧君 胥 義 呂 婭
(上海理工大學(xué)生物系統(tǒng)熱科學(xué)研究所,上海 200093)
關(guān)節(jié)軟骨能為關(guān)節(jié)活動(dòng)提供低摩擦、低磨損和吸收力學(xué)沖擊等重要功能。由于關(guān)節(jié)軟骨沒(méi)有血管、淋巴管提供營(yíng)養(yǎng),其自身修復(fù)能力很差,所以一旦損傷后,常常引發(fā)各種關(guān)節(jié)疾病,嚴(yán)重影響著人們的生活質(zhì)量[1]。軟骨移植是修復(fù)關(guān)節(jié)軟骨損傷的一種非??煽康闹委熓侄危邢薜年P(guān)節(jié)軟骨供體來(lái)源及其保存問(wèn)題,一直是制約關(guān)節(jié)軟骨移植手術(shù)得以推廣的主要原因。近年來(lái),國(guó)內(nèi)外許多學(xué)者都在探索關(guān)節(jié)軟骨的低溫保存技術(shù)[2-7],期望能成功建立關(guān)節(jié)軟骨低溫保存組織庫(kù),為臨床應(yīng)用提供豐富的材料來(lái)源,同時(shí)也便于醫(yī)生有足夠的時(shí)間進(jìn)行術(shù)前更準(zhǔn)確的尺寸和形狀匹配,以及充分的病毒學(xué)和細(xì)菌學(xué)檢測(cè)等工作[8]。但有研究發(fā)現(xiàn),低溫冷凍軟骨移植后出現(xiàn)了軟骨組織纖維化、軟骨基質(zhì)斷裂以及機(jī)械力學(xué)性能顯著降低等問(wèn)題,這很可能是冷凍關(guān)節(jié)軟骨解凍過(guò)程中造成的結(jié)果[9-11]。與此同時(shí),采用低溫保存的方法需要用到液氮,其相應(yīng)的設(shè)備和運(yùn)行成本較高。而冷凍干燥技術(shù)用于生物組織的保存具有如下優(yōu)越性[12]:一是制品在真空的環(huán)境下升華干燥后體積、形狀基本不變,呈海綿狀,無(wú)干縮,復(fù)水時(shí)能夠迅速還原成原來(lái)的性狀;二是能夠除去物料中90%以上的水分,能在常溫長(zhǎng)期保存,不需要昂貴的低溫儲(chǔ)存設(shè)備及復(fù)雜的保存條件;三是凍干后質(zhì)量很輕,方便長(zhǎng)途運(yùn)輸。
鑒于此,本研究采用冷凍干燥法來(lái)保存關(guān)節(jié)軟骨,探索凍干保護(hù)劑的種類、濃度以及預(yù)凍結(jié)速率等對(duì)冷凍干燥關(guān)節(jié)軟骨楊氏模量的影響,有助于深入認(rèn)識(shí)關(guān)節(jié)軟骨冷凍干燥保存過(guò)程中的生物力學(xué)性能保護(hù)情況。
1.1.1 動(dòng)態(tài)機(jī)械熱分析儀(DMA)實(shí)驗(yàn)采用的動(dòng)態(tài)機(jī)械熱分析儀為DMA-Q800(TA,美國(guó))。根據(jù)試驗(yàn)需要,采用靜態(tài)壓縮模式,預(yù)載荷為0.01 N,在37℃恒溫的環(huán)境下,將經(jīng)過(guò)預(yù)處理后的關(guān)節(jié)軟骨樣品以2 N/min 的速率加載至17 N 即停止測(cè)試。在得出應(yīng)力應(yīng)變曲線后,由DMA 自動(dòng)處理數(shù)據(jù)得到楊氏模量。
1.1.2 程序降溫裝置
實(shí)驗(yàn)采用的程序降溫裝置為升降式程序降溫儀[13],其工作原理是利用液氮容器中液氮蒸汽的縱向溫度梯度,用微機(jī)控制微電機(jī)的轉(zhuǎn)向和轉(zhuǎn)速,再通過(guò)牽引繩來(lái)調(diào)節(jié)樣品在液氮蒸汽中的位置,使樣品處于程序所設(shè)置的溫度(– 60℃)。本研究以1、10、20℃/min 等 3 種 預(yù) 凍 結(jié) 速 率 從 室 溫 降至-60℃。
1.1.3 Virtis 凍干機(jī)
實(shí)驗(yàn)采用的凍干機(jī)為Advantage 2.0(Virtis,USA)。根據(jù)試驗(yàn)要求,將預(yù)凍溫度設(shè)置在-60℃,恒溫1 h 后開(kāi)始升華干燥。將凍干機(jī)的擱板溫度設(shè)置在-50℃,真空度10 ~13 Pa,恒溫16 h 后開(kāi)始解析干燥。將凍干機(jī)的擱板溫度設(shè)置在-20℃,真空度10 ~13 Pa,恒溫4 h。再將凍干機(jī)的擱板溫度設(shè)置在0℃,真空度10 ~13 Pa,恒溫4 h。最后,將凍干機(jī)的擱板溫度設(shè)置在20℃,真空度10 ~13 Pa,恒溫2 h。
選取上海本地成年豬,取整根有兩瓣半月板覆蓋的白色軟骨的豬大骨。用手術(shù)剪將半月板剪去,并用專用工具(沖頭)制備直徑為5 mm 的軟骨測(cè)試樣品。用格林氏液將樣品表面的滑液沖洗掉,先取出6 個(gè)樣品均分放置在兩個(gè)裝有PBS 溶液(pH =7.4)的容器中,再將其余取出的樣品分別置于體積濃度為10 %、20%、30%、40%、50%、60%、80%(V/V)的二甲基亞砜(DMSO)(分析純,上海國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司),甘油(分析純,上海國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司)以及1,2-丙二醇(分析純,上海國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司,以下簡(jiǎn)稱“丙二醇”)中進(jìn)行2.5 h 的充分滲透,使凍干保護(hù)劑和軟骨內(nèi)的水分充分置換。每個(gè)PBS 溶液中的樣品在進(jìn)行2.5 h 的充分滲透后(作為空白對(duì)照組),可直接用于DMA 儀器測(cè)量。經(jīng)凍干保護(hù)劑充分滲透后,將樣品用程序降溫儀以1、10、20℃/min 等3 種不同的預(yù)凍結(jié)速率降溫至-60℃,再將樣品與放置在另外一個(gè)PBS 溶液中的樣本快速轉(zhuǎn)移到凍干機(jī)內(nèi)進(jìn)行冷凍干燥。將冷凍干燥好的樣品浸泡在PBS(pH =7.4)中1.5 h,復(fù)水后再用于DMA儀器測(cè)量。在預(yù)凍結(jié)速率相同的條件下,分析凍干保護(hù)劑的種類和濃度對(duì)凍干關(guān)節(jié)軟骨楊氏模量的影響。為了確保實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)的有效性,每一實(shí)驗(yàn)條件做3 個(gè)平行樣。文中的數(shù)據(jù)是以“平均值+標(biāo)準(zhǔn)差”的形式給出的。
將對(duì)照組和以1、20℃/min 預(yù)凍結(jié)速率冷凍到-60℃的樣品進(jìn)行掃描電鏡觀察(放大倍數(shù)為500 000倍),可以觀察到在圖1 對(duì)照組樣品的膠原纖維主要有粗細(xì)兩類,粗纖維由若干條細(xì)纖維聚集而成,多呈束帶狀或條索狀;粗細(xì)纖維相互編織,形成層次分明、立體的膠原網(wǎng)絡(luò)。圖2 是預(yù)凍結(jié)速率為1℃/min 凍干樣品的膠原纖維部分的斷裂現(xiàn)象,圖3 是預(yù)凍結(jié)速率為20℃/min 凍干樣品的膠原纖維的斷裂現(xiàn)象加劇。但是這些斷裂現(xiàn)象只是在冷凍過(guò)程中生成的冰晶刺破膠原纖維而造成的,對(duì)于生物力學(xué)研究的影響不大,即研究其楊氏模量在某種程度上來(lái)說(shuō)是有意義的。圖4 ~圖5 均為DMSO 40%處理過(guò)的樣品的掃描電鏡圖,可以看出在凍干保護(hù)劑的處理下,膠原纖維的破壞程度均有所降低,說(shuō)明對(duì)膠原纖維的結(jié)構(gòu)起到了一定程度的保護(hù)作用。
圖1 對(duì)照組樣品的掃描電鏡圖Fig.1 Control sample(SEM)
圖2 預(yù)凍結(jié)速率為1℃/min 樣品的掃描電鏡圖Fig.2 Sample treated with 1℃/min cooling rate(SEM)
圖3 預(yù)凍結(jié)速率為20℃/min 樣品的掃描電鏡圖Fig. 3 Sample treated with 20℃/min cooling rate (SEM)
圖4 預(yù)凍結(jié)速率為1℃/min DMSO40%處理樣品的掃描電鏡圖Fig. 4 Sample treated with DMSO40% (1℃/min)(SEM)
如圖6 所示,在預(yù)凍結(jié)速率為1、10 以及20℃/min 下,經(jīng)不同濃度DMSO 處理的凍干樣品的楊氏模量隨著濃度變化而變化??梢钥闯?空白對(duì)照組的楊氏模量最大,添加凍干保護(hù)劑凍干樣品的楊氏模量次之,新鮮未加保護(hù)劑的凍干樣品的楊氏模量最小;當(dāng)DMSO 的濃度在小于40% (V/V)范圍內(nèi),楊氏模量隨著濃度的增大而增大。例如,在預(yù)凍結(jié)速率均為1℃/min 時(shí),添加10%(V/V)DMSO 凍干樣品的楊氏模量為1.423 MPa,40% (V/V)DMSO凍干樣品的楊氏模量為2.356 MPa,在大于40%(V/V)范圍內(nèi)楊氏模量隨著濃度的增大而減小。例如,預(yù)凍結(jié)速率為1℃/min 時(shí),添加50% (V/V)DMSO 凍干樣品的楊氏模量為2.143 MPa,80%(V/V)DMSO 的凍干樣品的楊氏模量為1.93 1 MPa。
圖5 預(yù)凍結(jié)速率為20℃/min DMSO40%處理樣品的掃描電鏡圖Fig. 5 Sample treated DMSO40% (20℃/min)(SEM)
圖6 凍干保護(hù)劑濃度對(duì)楊氏模量的影響(DMSO)Fig.6 Effects of concentrations of DMSO on Young’s modulus
在預(yù)凍結(jié)速率為1℃/min 的情況下,經(jīng)不同濃度DMSO 處理的凍干樣品的楊氏模量影響的方差分析結(jié)果見(jiàn)表1。根據(jù)表1 的方差分析結(jié)果,F(xiàn) >F0.05,即P≤0.01。由該表中的顯著性水平可見(jiàn),濃度對(duì)凍干樣品的楊氏模量的影響是極其顯著的。
表1 凍干保護(hù)劑濃度對(duì)楊氏模量影響的方差分析(DMSO)(α=0.05)Tab.1 The analysis of variance of effects of concentrations of DMSO on Young’s modulus(α=0.05)
如圖7 所示,經(jīng)10、40、80%(V/V)DMSO 處理后,預(yù)凍結(jié)速率為1、10 和20℃/min 時(shí)的凍干樣品的楊氏模量??梢钥闯?經(jīng)中低濃度DMSO 處理過(guò)的樣品隨著預(yù)凍結(jié)速率的增大楊氏模量減小。
DMSO 的濃度為40%(V/V),經(jīng)不同預(yù)凍結(jié)速率處理的凍干樣品的楊氏模量影響的方差分析結(jié)果見(jiàn)表2。根據(jù)表2 方差分析結(jié)果,F(xiàn) >F0.05,即P≤0.01。由該表中的顯著性水平可見(jiàn),預(yù)凍結(jié)速率對(duì)凍干樣品的楊氏模量的影響是極其顯著的。
表2 預(yù)凍結(jié)速率對(duì)楊氏模量影響的方差分析(DMSO)(α=0.05)Tab.1 The analysis of variance of effects of cooling rates on Young’s modulus (with DMSO)(α=0.05)
圖7 預(yù)凍結(jié)速率對(duì)楊氏模量的影響(DMSO)Fig.7 Effects of cooling rates on Young’s modulus(with DMSO)
分別經(jīng)濃度為 10%、40%、80% (V/V)的DMSO、丙二醇、甘油處理,并經(jīng)過(guò)1、10、20℃/min 預(yù)凍結(jié)速率的處理凍干關(guān)節(jié)軟骨樣品的楊氏模量如圖8 所示??梢钥闯?在中低濃度范圍內(nèi),經(jīng)一定濃度的甘油、丙二醇處理,在相同的預(yù)凍結(jié)速率下,凍干樣品的楊氏模量隨著甘油、丙二醇濃度的增大而增大;在高濃度范圍內(nèi),其楊氏模量隨著甘油、丙二醇濃度的增大而減小??梢?jiàn),這點(diǎn)和DMSO 在不同濃度下對(duì)凍干樣品的保護(hù)效果是一樣的。
在中低濃度范圍內(nèi),在不同預(yù)凍結(jié)速率下,經(jīng)一定濃度的甘油、丙二醇處理,凍干樣品的楊氏模量隨著預(yù)凍結(jié)速率的增大而減小;在高濃度范圍內(nèi),其楊氏模量隨著預(yù)凍結(jié)速率的增大而增大??梢?jiàn),這點(diǎn)和DMSO 在不同預(yù)凍結(jié)速率下對(duì)凍干樣品的保護(hù)效果是一樣的。
在中間濃度范圍內(nèi),當(dāng)保護(hù)劑的濃度相同時(shí),經(jīng)DMSO 處理的凍干樣品的楊氏模量最大,甘油的楊氏模量次之,丙二醇的楊氏模量最小;而在高濃度下,3 種保護(hù)劑的保護(hù)效果差不多。究其原因,主要是由3 種保護(hù)劑的官能團(tuán)決定的[22-23]。
圖8 不同溫度下不同凍干保護(hù)劑對(duì)楊氏模量的影響。(a)1℃/min (b)10℃/min (c)20℃/minFig.8 Effects of CPAs on Young’s modulus.(a)1℃/min(b)10℃/min(c)20℃/min
圖9 3 種凍干保護(hù)劑的分子式。(a)DMSO;(b)甘油;(c)1 -2 丙二醇Fig.9 Formula of the three CPA.(a)DMSO;(b)Glycerin;(c)Propylene glycol 1 -2
從圖6 中可以看出,空白對(duì)照組的楊氏模量最大,添加凍干保護(hù)劑凍干樣品的楊氏模量次之,新鮮的未加保護(hù)劑凍干樣品的楊氏模量最小。當(dāng)DMSO 的濃度在小于40%(V/V)范圍內(nèi),楊氏模量隨著濃度的增大而增大;在大于40% (V/V)范圍內(nèi),楊氏模量隨著濃度的增大而減小。DMSO 作為凍干保護(hù)劑,屬于低分子中性物質(zhì),在溶液中易結(jié)合水分子發(fā)生水合作用,使溶液的黏性增加,從而弱化了水的結(jié)晶過(guò)程,達(dá)到了保護(hù)的目的。一般認(rèn)為,這些化合物中的官能團(tuán)(羥基)與水之間以氫鍵的形式鍵合,使得溶液變得黏稠,從而使水溶液中受擴(kuò)散制約的冰晶生長(zhǎng)變得緩慢,玻璃化形成趨勢(shì)增強(qiáng),從而對(duì)膠原纖維的合理排列分布的破壞減少[14]。所以,添加凍干保護(hù)劑的樣品的楊氏模量大于新鮮的未加入保護(hù)劑凍干樣品的楊氏模量。但是,由于在冷凍干燥過(guò)程中會(huì)產(chǎn)生熱應(yīng)力[15],導(dǎo)致膠原纖維和蛋白多糖的結(jié)構(gòu)破壞,導(dǎo)致凍干樣品的楊氏模量小于空白對(duì)照組的楊氏模量。課題組以前的研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)DMSO 滲透到組織細(xì)胞內(nèi)部時(shí),高濃度的低溫保護(hù)劑可以將基質(zhì)內(nèi)部大量的分子替換成結(jié)合水,而低濃度的低溫保護(hù)劑只能將小部分水分子轉(zhuǎn)換成結(jié)合水,還有大部分水分子是自由水[16-17]。隨著DMSO 濃度的增加,溶液中的甲基和羥基的個(gè)數(shù)也會(huì)增加,結(jié)合水也越多,凍干保護(hù)劑在滲透過(guò)程中也置換了一部分在凍結(jié)時(shí)會(huì)產(chǎn)生相變的水的份額。所以在低濃度范圍內(nèi)隨著凍干保護(hù)劑濃度的增加,楊氏模量是逐漸增大的;在高濃度范圍內(nèi),楊氏模量卻是減小的??赡艿脑蚴?在高濃度范圍內(nèi),軟骨樣品在本研究的預(yù)凍結(jié)溫度環(huán)境(-60℃)下并沒(méi)有處于凍結(jié)狀態(tài)。這個(gè)原因可以從文獻(xiàn)[13]等的研究中得到解釋:在溶質(zhì)濃度很低時(shí),溶質(zhì)-溶劑之間的相互作用對(duì)整個(gè)溶液的影響很弱,溶液較多地表現(xiàn)出純水的性質(zhì);隨著濃度的升高,溶質(zhì)-溶劑的相互作用開(kāi)始加強(qiáng),并開(kāi)始對(duì)過(guò)冷度產(chǎn)生明顯的影響。在高濃度區(qū)間,過(guò)冷度隨著濃度的增加而單調(diào)增加。Rios 等的研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)保護(hù)劑的濃度為60% (V/V)時(shí)所有的保護(hù)劑基本上不會(huì)形成冰晶[18]。由此看來(lái),此時(shí)進(jìn)行冷凍干燥,既沒(méi)有冰晶生成,也沒(méi)有出現(xiàn)玻璃化凍結(jié),就相當(dāng)于在本研究的干燥過(guò)程中的風(fēng)干,這對(duì)凍干軟骨的生物力學(xué)性能可能破壞較大。
從圖7 可以看出,經(jīng)中低濃度DMSO 處理過(guò)的樣品,隨著預(yù)凍結(jié)速率的增大,楊氏模量減小。這可能的原因是在關(guān)節(jié)軟骨冷凍干燥期間,細(xì)胞內(nèi)外的水分凍結(jié)成冰,冰晶生長(zhǎng)產(chǎn)生了機(jī)械力量,會(huì)引起細(xì)胞損傷,這種損傷叫做“機(jī)械損傷”[19]。關(guān)節(jié)軟骨是種特殊的組織,是由少量的軟骨細(xì)胞和大量的細(xì)胞外基質(zhì)組成。細(xì)胞的主要作用是合成和分泌基質(zhì)蛋白,維持軟骨基質(zhì)的新陳代謝,而細(xì)胞外基質(zhì)是軟骨的主要力學(xué)承載者。降溫速率越大,成核率也越大,形成數(shù)量很多的小冰晶。但是,冰晶生長(zhǎng)率相對(duì)較低,而降溫速率越小則相反,首先中低濃度DMSO,結(jié)合水太少。在快速預(yù)凍結(jié)過(guò)程中,軟骨細(xì)胞內(nèi)外冰晶體形成速度較快,細(xì)胞內(nèi)的水分尚未轉(zhuǎn)移到細(xì)胞外,細(xì)胞內(nèi)外同時(shí)結(jié)晶[20-21]。細(xì)胞內(nèi)冰晶對(duì)細(xì)胞的損傷體現(xiàn)在細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞核,影響的是軟骨細(xì)胞的分裂能力;而細(xì)胞外降溫時(shí)的成核率較低,冰晶生長(zhǎng)速度較快,形成的大量冰晶迅速引起宏觀體積的膨脹,破壞了膠原纖維的合理排列分布,使軟骨的支架結(jié)構(gòu)受到破壞,大大降低了軟骨的力學(xué)承載能力。從圖4 ~圖5 的掃描電鏡觀察結(jié)果可以看出,在快速預(yù)凍結(jié)的影響下,原本合理排布的膠原纖維聚集在一起,出現(xiàn)了明顯的纖維斷裂現(xiàn)象,而慢速預(yù)凍膠原出現(xiàn)斷裂現(xiàn)象較為輕微。所以,在中低濃度范圍內(nèi),預(yù)凍結(jié)速率越快,楊氏模量越小。
從圖8 可以看出,在中間濃度范圍內(nèi),當(dāng)保護(hù)劑的濃度相同時(shí),經(jīng)DMSO 處理的凍干樣品的楊氏模量最大,甘油的楊氏模量次之,丙二醇的楊氏模量最小。而在高濃度下3 種保護(hù)劑的保護(hù)效果差不多,這主要是由不同保護(hù)劑的官能團(tuán)決定的[22-23]。如圖9 所示,DMSO 的分子式中有2 個(gè)甲基,甘油有3 個(gè)羥基,丙二醇有2 個(gè)羥基和1 個(gè)甲基。從實(shí)驗(yàn)結(jié)果可以看出,在相同濃度下,DMSO 的楊氏模量大于甘油的楊氏模量,大于丙二醇的楊氏模量。這種現(xiàn)象的原因:一方面,是因?yàn)镈MSO 結(jié)合水的能力最強(qiáng),甘油結(jié)合水的能力次之,丙二醇結(jié)合水的能力最差;另一方面,也是因?yàn)镈MSO 滲入細(xì)胞的速率比甘油和丙二醇快,這無(wú)疑會(huì)使細(xì)胞受到更好的保護(hù)。Hey 等用DMSO 和丙三醇進(jìn)行了多組對(duì)照實(shí)驗(yàn)[24],發(fā)現(xiàn)45% (V/V)DMSO 和50% (V/V)甘油在玻璃化轉(zhuǎn)變和反玻璃化趨勢(shì)方面有很多共性,這說(shuō)明在相同的濃度下,DMSO 的結(jié)合水能力可能比甘油的結(jié)合水能力要強(qiáng)。在給定的凍干保護(hù)劑中,除了含羥基化合物,還有含甲基化合物和既含羥基又含甲基的化合物。文獻(xiàn)[22 -23]的研究認(rèn)為,低溫保護(hù)效果甲基要好于羥基,因?yàn)榧谆c甲基之間沒(méi)有相互作用,只與水鍵合,而羥基除了與水鍵合外,自身也有鍵合,從而會(huì)弱化對(duì)冰晶的抑制效果。DMSO 的分子式中有2 個(gè)甲基,甘油的分子式中有3個(gè)羥基。雖然甘油中羥基的數(shù)目為3 個(gè),但是羥基自身也有鍵合作用,所以與水的結(jié)合能力比DMSO要小,導(dǎo)致了楊氏模量不如DMSO 的大。但是,丙二醇有2 個(gè)羥基和1 個(gè)甲基,甘油只有3 個(gè)羥基。所以籠統(tǒng)的通過(guò)比較羥基和甲基的數(shù)目是不行的[25]??赡艿脑蚴歉视痛孀杂伤姆蓊~比丙二醇要高,所以,在相同濃度下,含有甘油的基質(zhì)內(nèi)的自由水比含有丙二醇的基質(zhì)內(nèi)的自由水少,導(dǎo)致甘油的楊氏模量大于丙二醇的楊氏模量。但是在低濃度和高濃度范圍內(nèi)楊氏模量的大小和凍干保護(hù)劑的種類之間沒(méi)有表現(xiàn)出這樣一一對(duì)應(yīng)的關(guān)系。產(chǎn)生這種情況的原因可能是:在濃度范圍內(nèi)凍干保護(hù)劑的作用效果不明顯,主要受預(yù)凍結(jié)速率的影響。在高濃度范圍內(nèi),凍干保護(hù)劑水溶液的凍結(jié)溫度低于-60℃,加入凍干保護(hù)劑的樣品并沒(méi)有實(shí)現(xiàn)完全凍結(jié),導(dǎo)致冷凍干燥失敗,沒(méi)有實(shí)現(xiàn)真正意義上的凍干,估計(jì)對(duì)關(guān)節(jié)軟骨的膠原纖維的合理排列分布造成大的破壞,大大降低了軟骨的力學(xué)承載能力。
本實(shí)驗(yàn)研究了3 種凍干保護(hù)劑、7 種凍干保護(hù)劑濃度以及3 種預(yù)凍結(jié)速率對(duì)關(guān)節(jié)軟骨楊氏模量的影響,結(jié)果表明:
1)空白對(duì)照組的楊氏模量最大,添加凍干保護(hù)劑凍干樣本的楊氏模量次之,新鮮的未加保護(hù)劑凍干樣品的楊氏模量最小。
2)凍干保護(hù)劑在中低濃度范圍內(nèi),楊氏模量隨著濃度的增大而增大;而在高濃度范圍內(nèi),楊氏模量隨著濃度的增大而減小。
3)對(duì)于在中低濃度區(qū)間同一濃度的同一凍干保護(hù)劑,慢速預(yù)凍結(jié)更有利于保護(hù)其力學(xué)性能。
4)當(dāng)保護(hù)劑的濃度在中濃度區(qū)間時(shí),相同濃度下DMSO 的楊氏模量最大,甘油的楊氏模量次之,丙二醇的楊氏模量最小。
[1] 衛(wèi)小春. 關(guān)節(jié)軟骨[M]. 北京:科學(xué)出版社,2007:120 -154.
[2] Seddighi MR,Griffon DJ,Schaeffer DJ,et al. The effect of chondrocyte cryopreservation on cartilage engineering [J]. The Veterinary Journal,2008,178(2):244 -250.
[3] Pegg DE, Wusteman MC, Wang LH. Cryopreservation of articular cartilage. Part 1:Conventional cryopreservation methods[J]. Cryobiology,2006,52(3):335 -346.
[4] Song YC,An YH,Kang QK,et al. Vitreous preservation of articular cartilage grafts[J]. J Invest Surg,2004,17(2):65 -70.
[5] Leila L,Ken F,McGann LE,et al. Cryopreservation of porcine articular cartilage :MRI and biochemical results after different freezing protocols[J]. Cryobiology,2007,54(1):36 -43.
[6] 陳百成,陳競(jìng)清,高石軍,等. 低溫保護(hù)凍存的異體骨軟骨移植修復(fù)關(guān)節(jié)軟骨缺損的研究[J]. 中國(guó)骨腫瘤骨病,2003,2(6):336 -339.
[7] 李軍政,成詩(shī)銀,崔鵬程,等. 深低溫凍存軟骨細(xì)胞構(gòu)建組織工程化軟骨[J]. 中國(guó)誤診學(xué)雜志,2004,4(10):1587 -1589.
[8] 曹誼林. 組織工程學(xué)[M]. 北京:科學(xué)出版社,2008.
[9] Muldrew K,Novak K,Studholme C,et al. Transplantation of articular cartilage following a step-cooling cryopreservation protocol[J]. Cryobiology,2001,43(3):260 -267.
[10] Fishbein KW,Canuto HC,Bajaj P,et al. Optimal methods for the preservation of cartilage samples in MRI and correlative biochemical studies[J]. Magn Reson Med,2007,57,866 -873.
[11] Zheng SK,Xia Y,Bidthanapally A,et al. Damages to the extracellular matrix in articular cartilage due to cryopreservation by microscopic magnetic resonance imaging and biochemistry[J]. Magnetic Resonance Imaging,2009,27,648 -655.
[12] 華澤釗.冷凍干燥新技術(shù)[M]. 北京:科學(xué)出版社,2006.
[13] 陳兒同,趙林,等. 低溫生物降溫控制裝置[P]。中國(guó)專利:91215370.9,1992 -01 -01.
[14] 高才,周國(guó)燕,胥義,等. 乙二醇和丙三醇水溶液凍結(jié)特性的研究[J].物理化學(xué)學(xué)報(bào),2004,20(2):123 -128.
[15] Bhowmick S,Zhu L,McGinnk L. et al Desiccation tolerance of spermatozoa dried at ambient temperature:Production of fetal mice[J].Biology of Reproduction 2003;68(5):1779 -1786.
[16] 胥義,周國(guó)燕,高才,等. 兔胸主動(dòng)脈凍結(jié)相變膨脹過(guò)程的TMA 實(shí)驗(yàn)研究[J]. 中國(guó)生物醫(yī)學(xué)工程學(xué)報(bào),2005,26(6):1013 -1015.
[17] 胥義,華澤釗,周國(guó)燕.兔主動(dòng)脈凍結(jié)過(guò)程中未凍水份額的研究[J].工程熱物理學(xué)報(bào),2006,27(3):478 -480.
[18] Rios JL,Rabia Y. Thermal expansion of blood vessels in low cryogenic temperatures,Part II:Vitrification with VS55,DP6,and 7.05 M DMSO[J]. Cryobiology,2006,52(2006):284 -294.
[19] 朱琳,劉寧,張英華,等. 乳酸菌細(xì)胞膜的凍干損傷[J]. 食品科學(xué),2006,27(2):266 -269.
[20] 胥義,周國(guó)燕,高才。兔主動(dòng)脈凍結(jié)膨脹行為及其影響因素的研究[J]。工程熱物理學(xué)報(bào),2005,26(6):1013 -1015。
[21] Xu Yi,Hua Zechao,Sun Dawen,et al. Effects of freezing rates and dimethyl sulfoxide concentrations on thermal expansion of rabbit aorta during freezing phase change as measured by thermomechanical analysis[J].Journal of Biomechanics,2007,40(14):3201 -3206.
[22] 徐海峰,高志新,劉寶林,等. 納米微粒對(duì)低溫保護(hù)劑溶液結(jié)晶性質(zhì)的影響[J].低溫與超導(dǎo)2010,38(11):53 -57.
[23] 何培青,李江,王昉,等. 南極細(xì)菌胞外多糖溶液凍結(jié)特性的差示掃描量熱研究[J].生態(tài)學(xué)報(bào)2009,29(11):5766 -5772.
[24] Hey MJ,Macfarlane DR. Crystallization of ice in aqueous solutions of glycerol and dimethyl sulfoxide[J]. Cryobiology,1996,33(2):205 -216.
[25] Macfarlane DR,F(xiàn)orsyth Maria,et al. Recent insights on the role of cryoprotective agents in vitrification[J]. Cryobiology,1990,27(4):345 -358.